楊曉艷,馬 驥,彭 飛,陸 洋,馬吉福,習(xí)偉佳,張 婷(陜西師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,教育部藥用植物資源及天然藥物化學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,陜西西安710062)
大孔樹脂法分離純化莢果蕨總?cè)?/p>
楊曉艷,馬驥*,彭飛,陸洋,馬吉福,習(xí)偉佳,張婷
(陜西師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,教育部藥用植物資源及天然藥物化學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,陜西西安710062)
目的:篩選出分離純化莢果蕨總?cè)频淖罴汛罂讟渲吞柤肮に嚄l件。方法:以莢果蕨總?cè)茲舛葹橹笜?biāo),通過靜態(tài)和動態(tài)實(shí)驗(yàn),篩選最佳大孔吸附樹脂并初步確定總?cè)萍兓に嚒=Y(jié)果:AB-8型大孔樹脂吸附解析效果最好,吸附條件:溶液濃度1.96mg/mL,pH為6,流速1.5mL/min,吸附體積5BV;洗脫條件:60%乙醇,流速2.0mL/min,洗脫體積4BV,其回收率為86.27%,純度82.32%,精制倍數(shù)為2.88。結(jié)論:AB-8大孔樹脂較適合分離純化莢果蕨總?cè)?。該工藝簡單可行,純化效果好,可為工業(yè)生產(chǎn)中分離純化莢果蕨總?cè)铺峁├碚撝笇?dǎo)和參考依據(jù)。
莢果蕨,總?cè)?,大孔吸附樹脂,分離,純化
莢果蕨[Matteuccia struthiopteris(L.)Todaro]是球子蕨科(Onocleaceae)莢果蕨屬(MatteucciaTodaro)多年生草本植物,含有多種藥用成分,如:黃酮類、甾酮類、多糖、萜類等有效成分,為我國主要的五種貫眾之一,可全草入藥,具有清熱解毒、殺蟲、止血等功效[1]。近年來作為營養(yǎng)價(jià)值極高的綠色山野菜出口,是藥食兩用的蕨類植物[2]。三萜類化合物為莢果蕨的主要有效成分之一[3],三萜類化合物在抗癌[4]、保肝、降血糖、抗腫瘤、抗病毒[5-7]等方面已有文獻(xiàn)報(bào)道。
莢果蕨總?cè)频奶崛∫褐杏休^多雜質(zhì),需要進(jìn)行選擇性分離,以提高總?cè)频募兌?。大孔吸附樹脂具有穩(wěn)定性高、吸附選擇性獨(dú)特、吸附解析條件溫和快捷、再生能力強(qiáng)、使用周期長等諸多優(yōu)點(diǎn),廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)藥、環(huán)保等方面,同時用于生化物質(zhì)的分離純化,尤其適用于中草藥有效成分如皂苷類、黃酮類、多酚等的分離純化及工業(yè)化生產(chǎn)[8-11]。目前莢果蕨總?cè)频难芯窟€處于提取階段,缺乏對其分離純化的系統(tǒng)研究,本實(shí)驗(yàn)以莢果蕨總?cè)茷椴牧线M(jìn)行純化研究,考察不同樹脂對總?cè)频奈浇馕鲂阅埽瑸榍v果蕨的進(jìn)一步開發(fā)利用提供參考。
1.1材料與儀器
莢果蕨采自陜西省寧陜縣旬陽壩鎮(zhèn),經(jīng)陜西師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院馬驥副教授鑒定;齊墩果酸標(biāo)準(zhǔn)品,中國藥品生物制品檢定所;無水乙醇、冰乙酸、高氯酸均為分析純;實(shí)驗(yàn)用水超純水;HPD-100、HPD-300、S-8、D101、AB-8均購自西安藍(lán)深特種樹脂有限責(zé)任公司。
HL-2電腦數(shù)顯恒流泵上海滬西有限公司;HH-6B數(shù)顯恒溫水浴鍋江蘇常州國華電器有限公司;KQ-300DE型數(shù)控超聲波清洗器昆山超聲儀器有限公司;SHB-循環(huán)水式多用真空泵、RE-52AA旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器上海亞榮生化儀器廠;MicroBench PH600TRANS-WIGGENS;超微量微孔板分光光度計(jì)美國BioTek。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1總?cè)拼痔嵋旱闹苽鋵⑶v果蕨粉碎,過60目篩,稱2g材料,30mL石油醚脫脂兩次,以60%乙醇,料液比1∶30,在300W,63℃的水浴中超聲39min,提取兩次合并提取液旋蒸揮去乙醇,冷凍干燥成粉末,放于冰箱中儲存?zhèn)溆茫?2]。
1.2.2標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制準(zhǔn)確稱取干燥恒質(zhì)量的齊墩果酸標(biāo)準(zhǔn)品2mg置于10mL的容量瓶中,加入無水乙醇定容,制得0.2mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液。吸取系列梯度的標(biāo)品溶液置于10mL的具塞試管中,在60℃恒溫水浴鍋中揮干,流水冷卻后加5%的香草醛-冰乙酸0.2mL,高氯酸0.8mL,搖勻,60℃水浴鍋加熱15min,流水冷卻,加5mL冰乙酸,搖勻后在550nm處測定吸光值[13-14]。以齊墩果酸質(zhì)量為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。得回歸方程為:Y=8.1738x-0.0174,相關(guān)系數(shù)R2=0.9995。
1.2.3總?cè)坪繙y定準(zhǔn)確稱取1.2.1中樣品粉末1g于試管中,加入蒸餾水10mL溶解,再按1.2.2中方法顯色,測吸光值,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算莢果蕨總?cè)坪俊?/p>
1.2.4樹脂的預(yù)處理[15]稱取一定不同型號大孔吸附樹脂,用2BV的無水乙醇浸泡樹脂并攪拌,待充分溶脹24h后,繼續(xù)用乙醇洗滌,洗至洗出液無白色渾濁,再用蒸餾水洗盡乙醇,至無醇味。進(jìn)行酸堿處理,用2BV的5%HCl溶液浸泡3h后,用蒸餾水沖洗至中性;用2BV的5%NaOH溶液浸泡3h,而后用蒸餾水洗至中性,蒸餾水浸泡備用。
1.2.5樹脂的篩選[16-17]根據(jù)莢果蕨總?cè)频睦砘匦院痛罂讟渲奈叫阅?,選用AB-8、HPD-100、HPD-300、D101、S-85種型號樹脂進(jìn)行實(shí)驗(yàn),以大孔樹脂對莢果蕨總?cè)频撵o態(tài)吸附量、吸附率、解析量、解析率指標(biāo)評價(jià)樹脂。稱取2g預(yù)處理好的樹脂(濕重),置于100mL的三角瓶中,分別加入1.52mg/mL的溶液20mL,各三個重復(fù)。于25℃,1200r/min的搖床中振蕩10h,測定吸附前后的總?cè)瀑|(zhì)量濃度的變化,按下列公式(1)、(2)計(jì)算各樹脂的靜態(tài)吸附量和吸附率。同理,將吸附飽和的樹脂用蒸餾水沖洗,加入20mL 70%的乙醇洗脫,放入同樣條件的搖床中解吸10h,按公式(3)、(4)計(jì)算解析量和解析率。
式中:E:吸附量(mg/g);Q:吸附率(%);C0:初始濃度(mg/mL);Ce:吸附后的濃度(mg/mL);V:初始溶液體積(mL);W:濕態(tài)樹脂質(zhì)量(g)。
式中:M:解析量(mg/g);N:解析率(%);V1:解析液的體積(mL);C1:解析后的濃度(mg/mL)。
1.2.6AB-8大孔樹脂靜態(tài)吸附與解析
1.2.6.1靜態(tài)吸附動力學(xué)曲線準(zhǔn)確稱取2g樹脂(濕重)置于100mL三角瓶中,加20mL總?cè)迫芤红o態(tài)吸附。分別在0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0、4.0、5.0、6.0h取80μL溶液于60℃水浴揮干。以時間為橫坐標(biāo),吸附量為縱坐標(biāo)繪制吸附曲線。
1.2.6.2靜態(tài)解析動力學(xué)曲線準(zhǔn)確稱取2g吸附飽和的樹脂置于100mL的錐形瓶中,加入70%的乙醇20mL洗脫,分別在0.5、1.0、1.5、2.0、3.0、4.0h取80μL于60℃水浴揮干。以時間為橫坐標(biāo),解析量為縱坐標(biāo)繪制解析曲線。
1.2.7AB-8大孔樹脂的動態(tài)吸附與解析
1.2.7.1上樣濃度將不同濃度的總?cè)迫芤阂?mL/min流速,提取液的初始pH為5.77(pH計(jì)測定)上樣,吸附3h后,分別取吸附后的溶液測吸附率,以確定最佳濃度。
1.2.7.2上樣流速用濃度為1.96mg/mL,pH為5.77的樣品溶液以不同流速各上樣20mL。吸附3h后取吸附后的溶液測吸附率,確定最佳上樣流速。
1.2.7.3樣液pH用濃度1.96mg/mL,流速1.5mL/min,分別用NaOH、HCl溶液將樣液調(diào)至不同的pH上柱。3h后取吸附液測總?cè)坪?,確定最佳上樣pH。
1.2.7.4洗脫曲線的繪制取20g樹脂裝柱,以濃度1.96mg/mL、流速1.5mL/min、pH為5.77的樣液上樣,每隔10mL收集一管,測流出液中總?cè)茲舛?,一般?dāng)流出液的濃度達(dá)到上樣液濃度的1/10時,認(rèn)為此處是總?cè)频男孤c(diǎn),以流出液體積為橫坐標(biāo),流出液中總?cè)坪繛榭v坐標(biāo)繪制洗脫曲線,計(jì)算飽和動態(tài)吸附量。
1.2.7.5洗脫劑濃度的選擇考慮到洗脫劑的毒性大小及回收和后處理等因素,選擇乙醇為洗脫劑。樹脂吸附飽和后,先用3BV蒸餾水將多糖等水溶性雜質(zhì)洗脫,再分別用30%、40%、50%、60%、70%、80%的乙醇以2mL/min的流速進(jìn)行梯度洗脫3BV,分別測定各洗脫液的解析量,以確定最佳的洗脫劑的體積分?jǐn)?shù)。
1.2.7.6洗脫流速將吸附飽和的樹脂用蒸餾水洗脫3BV,再用60%的乙醇以不同的流速洗脫3BV,測洗脫液的解析量,確定最佳洗脫流速。
1.2.7.7洗脫體積將吸附飽和的樹脂用蒸餾水洗脫3BV,再用60%以2mL/min進(jìn)行洗脫,每10mL收集一管洗脫液,共收集100mL溶液。測各管洗脫液總?cè)茲舛?,確定最合適的洗脫體積。
1.2.7.8莢果蕨總?cè)频募兌扰c回收率測定[18]
式中:C:樣液中總?cè)频臐舛龋╩g/mL);V:樣液的體積(mL);M:總?cè)品勰┑母芍兀╩g)。
式中:Ca:純化前的濃度(mg/mL);Cb:純化后的濃度(mg/mL);Va:上柱的溶液體積(mL);Vb:純化后洗脫液的體積(mL)。
1.2.8數(shù)據(jù)處理采用SPSS 16.0軟件對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)分析處理。
2.1大孔樹脂的篩選
在相同實(shí)驗(yàn)條件下,各樹脂的靜態(tài)吸附解析結(jié)果如表1所示,從表1中可看出,與其他型號樹脂相比,AB-8型樹脂對莢果蕨總?cè)凭哂休^好的吸附和解析效果。影響大孔樹脂吸附解析性能的因素很多,如:樹脂的顆??讖健⒈砻娣e、極性、被吸附物質(zhì)的極性等。因此不同型號的樹脂對總?cè)频奈浇馕鲂阅芨饔胁町?,?shí)驗(yàn)結(jié)果表明,吸附量較大的多為非極性或弱極性樹脂,如AB-8、HPD-100、D101。五種樹脂中,綜合考慮以上4個指標(biāo),AB-8樹脂的吸附解析效果最好,本實(shí)驗(yàn)選擇AB-8作為莢果蕨總?cè)频姆蛛x純化樹脂。
表1 不同樹脂對總?cè)频奈浇馕鼋Y(jié)果Table 1 Adsorption and desorption performance ofdifferent resins towards triterpenes
2.2AB-8大孔樹脂的靜態(tài)吸附解析曲線
2.2.1靜態(tài)吸附動力學(xué)曲線由圖1可知,0~3h之間樹脂吸附速率較快,吸附量隨時間延長增大,至3h后吸附量基本趨于飽和,變化平緩,說明AB-8大孔樹脂對莢果蕨總?cè)频奈綖榭焖倨胶庑停?9],省時高效,具有良好的靜態(tài)吸附特性,適用于工業(yè)生產(chǎn)中的分離純化。
圖1 總?cè)旗o態(tài)吸附動力學(xué)曲線Fig.1 The static adsorption kinetic curve of total triterpenes
2.2.2靜態(tài)解析動力學(xué)曲線由圖2可知,在0.5h解析時間內(nèi),總?cè)频慕馕鏊俾瘦^快,解析量隨之增大,超過1h后,隨著時間的延長,解析量達(dá)到平衡。即當(dāng)靜態(tài)解析時間達(dá)1h時就基本解析完全,表明吸附飽和的樹脂解析時間較短,可降低成本,更適于工業(yè)化生產(chǎn)。
圖2 總?cè)旗o態(tài)解吸時間動力學(xué)曲線Fig.2 The static desorption kinetic curve of total triterpenes
2.3AB-8樹脂對莢果蕨總?cè)频膭討B(tài)吸附
2.3.1上樣濃度對樹脂的吸附效果的影響由圖3可知:以不同濃度的總?cè)迫芤荷蠘樱珹B-8樹脂的吸附率隨濃度先遞增后趨于平衡。若總?cè)茲舛容^小,樹脂不能被充分利用而造成浪費(fèi);若濃度太大,溶質(zhì)不易溶解且吸附率趨于飽和,會使樹脂堵塞,為后續(xù)的解析及樹脂再生造成困難[20],綜合考慮各因素,選擇最佳上樣濃度為1.96mg/mL。
圖3 濃度對吸附率的影響Fig.3 The effect of concentration of triterpenes on adsorption
圖4 流速對吸附率的影響Fig.4 The effect of the sample flow velocity on adsorption
2.3.2上樣流速對樹脂吸附效果的影響由圖4知,吸附率隨上樣速度的增大而降低,其原因是流速越慢,總?cè)圃跇渲型A舻臅r間越久,利于二者的吸附;反之,流速較大時,停留時間變短不利于互相吸附,從而降低了吸附率。但流速太小會使操作周期延長,生產(chǎn)效率降低,不利于工業(yè)中大批量純化,綜合吸附率和工作效率,1.5mL/min的流速上樣最佳。
2.3.3樣液pH對樹脂吸附效果的影響由圖5可知,樣液的不同pH對吸附率的影響較大。pH對大孔樹脂的吸附效果與被吸附物質(zhì)的酸堿性有關(guān),酸性物質(zhì)在酸性溶液中易吸附,堿性化合物在堿性溶液中易吸附[21]。圖5可見莢果蕨總?cè)迫芤涸趐H為6左右時吸附最好,因?yàn)榭側(cè)铺崛∫撼嗜跛嵝裕╬H= 5.77)時,三萜皂苷以分子形勢存在,利于樹脂的吸附,在中性或堿性溶劑中則吸附降低,因此選擇pH為6適宜。
圖5pH對吸附率的影響Fig.5 The effect of pH value of triterpenes on adsorption
2.3.4洗脫曲線的繪制由圖6可知,以1.96mg/mL上樣,樹脂的吸附效果隨上樣體積的增加而降低。在50mL之前,吸附效果較好,流出液的總?cè)茲舛群苄 ?00mL時流出液的濃度為0.195mg/mL,達(dá)到初始濃度的1/10,即此處為泄漏點(diǎn),表明該樹脂吸附性能較好,最多可上樣100mL(5BV)溶液。
圖6 吸附洗脫曲線Fig.6 The curve of adsorption leak of triterpenes
2.4AB-8樹脂的動態(tài)解析效果
2.4.1乙醇濃度對解析效果的影響由圖7所示,不同體積分?jǐn)?shù)的乙醇解析效果不同,體積分?jǐn)?shù)在30%~60%之間時,解析量不斷增加,而高于60%時,解析量隨之逐漸降低。根據(jù)相似相溶原理,60%乙醇能充分溶解總?cè)苹蛟摌O性可更好的減弱總?cè)婆c樹脂間的吸附力,使解析效果最佳。
圖7 乙醇體積分?jǐn)?shù)對解析量的影響Fig.7 The effect of ethanol concentrations on desorption of macroporous resin
圖8 洗脫流速對解析量的影響Fig.8 The effect of elution velocity on desorption of macroporous resin
2.4.2洗脫流速對解析效果的影響分別以不同流速的蒸餾水和60%乙醇進(jìn)行動態(tài)洗脫,在圖8中可知,隨著洗脫流速的增大,解析量呈降低的趨勢。解析流速過大,乙醇不能與被吸附的總?cè)瞥浞纸佑|而將其從樹脂上洗脫下來,使解析效果不佳。流速過小,解析完全但工作周期太長,因此兼顧較高的解析量和較短的實(shí)驗(yàn)周期,選擇2.0mL/min的速度洗脫最好。
2.4.3洗脫劑用量考察由圖9所示,解析峰非常集中,峰型較窄且無明顯的拖尾現(xiàn)象。經(jīng)測定,當(dāng)洗脫體積達(dá)2BV時,所需的大部分目標(biāo)物已被洗脫下來,當(dāng)洗脫液為80mL(4BV)時,洗脫液中總?cè)茲舛葞缀鯙榱?,說明4BV的洗脫液已經(jīng)將總?cè)葡疵撏耆?,故確定最佳洗脫劑用量為4BV。
圖9 洗脫曲線Fig.9 The curve of desorption of triterpenes
本實(shí)驗(yàn)對5種不同型號的大孔樹脂進(jìn)行篩選,分離純化莢果蕨總?cè)频睦硐氪罂孜綐渲茿B-8。通過考察不同因素對純化效果的影響,初步確定最佳吸附條件:上樣濃度1.96mg/mL,上樣流速1.5mL/min,樣液pH6,最大上樣量達(dá)5BV;最佳洗脫條件:60%乙醇,2.0mL/min洗脫速度,4BV洗脫體積。其回收率為86.27%,純度從28.61%提高到82.32%,精制倍數(shù)達(dá)2.88,說明AB-8大孔吸附樹脂對莢果蕨總?cè)凭哂休^好的純化精制效果,選擇性好,吸附解析率高,操作簡單易行且無毒害作用。
與其他三萜類物質(zhì)的分離純化研究[22-23]相較而言,本文所用的乙醇濃度低、用量少、節(jié)約成本,其純度和回收率也有一定的提高,因此該方法在分離純化藥材中三萜類物質(zhì)方面具有一定推廣價(jià)值,可為工業(yè)生產(chǎn)中莢果蕨總?cè)频姆蛛x純化及單體的鑒定等方面提供可靠的理論和參考依據(jù)。
[1]李曉,楊利民,王少江.不同采收時期莢果蕨營養(yǎng)葉中總黃酮含量測定[J].林業(yè)科技,2011,36(3):29-31.
[2]朱立新.中國野菜開發(fā)與利用[M].北京:金盾出版社,2000:90-98.
[3]Nakata T,Yamada T,Taji S,et al.Structure determination of inonotsuoxides A and B and in vivo anti-tumor promoting activity of inotodiol from the sclerotia of Inontus obliquus[J]. Bioorganic Medicinal Chemistry,2007,15(1):257-264.
[4]Li J,Guo WJ,Yang QY.Effects of ursolic acid and oleanolic acid on human colon cancinoma cell line HCT15[J].Word J Gradtroenterol,2002,8(3):493-495.
[5]Singh B,Sahu P M,Lohiya R K,et al.An-ti-inflammatory activityofalkanoidsandtriter-penoidsfromtrichodesma amplexicaule roth[J].Phytomedicine,2006,13(3):152-156.
[6]Angeh J E,Huang X,Sattler I,et al.Antimicrobial and antiinflammatory activity of four known and one new triterpenoid from com-bretum imberbe(combretaceae)[J].Ethnopharmacol,2007,15(1):257-264.
[7]楊慶新,黃建安,劉仲華,等.枇杷葉中三萜酸的研究進(jìn)展[J].食品工業(yè)科技,2008,29(3):282-285.
[8]Zhang GW,Hu MM.Optimized ultrasonic-assisted extraction of flavonoids from Prunella vulgaris L.and evaluation of antioxidant activities in vitro[J].Innovative Food Sci Emerging Technol,2011,12(1):18-25.
[9]Li J,Chen ZB,Di DL.Preparative separation and purification of rebaudioside A from Stevia rebaudiana Bertoni crude extracts by mixed bed of macroporous adsorption resins[J].Food Chemistry,2012,132(1):268-276.
[10]李穎暢,李冰心,呂艷芳,等.AB-8型大孔樹脂純化藍(lán)莓葉多酚的工藝研究[J].食品工業(yè)科技,2012,33(20):258-261.
[11]Li C,Wang NX,Zhang Y,et al.Using AB-8 macroporous adsorption resin for separation and purification of total flavonoids from Stenoloma chusana(L.)Ching[J].Food Sci,2011,32(16):31-35.
[12]楊曉艷,彭飛,陸洋,等.響應(yīng)面法優(yōu)化莢果蕨總?cè)瞥曁崛」に嚕跩].食品工業(yè)科技,2014,35(15):200-209.
[13]李斌,李元甦,孟憲軍,等.響應(yīng)曲面法優(yōu)化北五味子總?cè)频奶崛」に嚕跩].食品科學(xué),2010,31(16):106-108.
[14]Chen Yi,Xie Mingyong,Gong Xiaofeng.Microwave-assisted extraction used for the isolation of total triterpenoid saponins from Ganoderma atrum[J].Journal of Food Engineering,2007,81(1):162-170.
[15]宋倩,趙聲蘭,劉芳,等.大孔吸附樹脂分離純化核桃殼總黃酮[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2012,38(12):180-183.
[16]趙芳春,趙兵,黃云祥.大孔吸附樹脂純化蘆筍皂苷工藝研究[J].食品工業(yè)科技,2012,33(18):248-252.
[17]許懷德,陳佳,包蓉,等.大孔吸附樹脂分離純化洋蔥皮黃酮的研究[J].食品科學(xué),2011,32(12):133-137.
[18]張智,于震,王振宇,等.落葉松樹皮多酚純化工藝研究[J].食品工業(yè)科技,2014,35(5):187-191.
[19]王清亭,王曉東,趙兵.大孔樹脂分離純化文冠果種仁總皂苷[J].食品工業(yè)科技,2013,34(10):219-223.
[20]許亮,師俊玲,陳志娜,等.大孔樹脂分離純化寧夏枸杞總黃酮的研究[J].離子交換與吸附,2011,27(3):202-211.
[21]李洋,曹珊珊,張媛,等.大孔樹脂分離純化褚果總黃酮優(yōu)化工藝研究[J].離子交換與吸附,2013,29(4):323-333.
[22]尹忠平,上官新晨,張?jiān)录t,等.大孔樹脂吸附純化青錢柳葉三萜化合物[J].食品科學(xué),2011,32(6):61-65.
[23]馮素香,苗明三,苗晉鑫,等.AB-8大孔吸附樹脂同時分離純化毛冬青總黃酮、總皂苷工藝[J].中國實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志,2012,18(3):5-7.
Separation and purification of triterpenes from Matteuccia struthiopteris with macroporous resin
YANG Xiao-yan,MA Ji*,PENG Fei,LU Yang,MA Ji-fu,XI Wei-jia,ZHANG Ting
(Life Science College,Shaanxi Normal University,Key Laboratory of Minisitry of Education for Madicinal Plant Resource and Natural Pharmaceutical Chemistry,Xi’an 710062,China)
Objective:An optimal macroporous resin and process that to separate and purify triterpenes from Matteuccia struthiopteris was reasearched.Methods:The optimal resin and purificating technology were preliminary selected through the static and dynamic test,taking the concentration of triterpenes as the main index.Results:The best macroporous resin was AB-8,the adsorption conditions were described as follows:the pH and concentration of sample was 6 and 1.96mg/mL,the maximum injection volume was 5BV,the flow velocity was 1.5mL/min.The desorption process was determined as follows:60%ethanol was used as eluent at the flow rate of 2.0mL/min with 4BV,the recovery rate reached up to 86.27%,the purity was 82.32%,the purified multiples of triterpenes was 2.88.Conlusion:These data demonstrated the AB-8 macroporous resin in purifying triterpenes from Matteuccia struthiopteris was well.This method was easy to operate and displayed a good purification effect,the certain reference and theoretical guidance for separation and purification of triterpenes in industrial application could be provided.
Matteuccia struthiopteris;triterpenes;macroporous resin;separation;purification
TS201.1
B
1002-0306(2015)02-0238-05
10.13386/j.issn1002-0306.2015.02.043
2014-05-22
楊曉艷(1989-),女,碩士研究生,研究方向:藥用植物資源。
馬驥(1964-),男,碩士研究生,副教授,研究方向:藥用植物資源。
國家“十二五”科技支撐計(jì)劃課題(2011BAI06B05);國家大學(xué)生創(chuàng)新實(shí)驗(yàn)項(xiàng)目(201310718050)。