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    引入中性氨基酸對木聚糖酶XynZF-2熱穩(wěn)定性的影響

    2015-10-10 06:51:03陳亞文周晨妍謝晶晶索婧琪魏陽陽李同彪
    中國釀造 2015年10期
    關(guān)鍵詞:聚糖熱穩(wěn)定性定點

    陳亞文,周晨妍*,謝晶晶,索婧琪,魏陽陽,李同彪

    (新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,河南新鄉(xiāng)453003)

    引入中性氨基酸對木聚糖酶XynZF-2熱穩(wěn)定性的影響

    陳亞文,周晨妍*,謝晶晶,索婧琪,魏陽陽,李同彪

    (新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院,河南新鄉(xiāng)453003)

    通過對黑曲霉(Aspergillus niger)XZ-3S木聚糖酶XynZF-2進行生物信息學(xué)分析,在N-端區(qū)域引入半胱氨酸,定點突變E27C,構(gòu)建突變基因xyn-E27C,并在大腸桿菌BL21(DE3)中表達。酶學(xué)性質(zhì)分析發(fā)現(xiàn),突變酶Xyn-E27C的最適溫度為45℃,與原酶XynZF-2相比提高了5℃。在40℃條件下,突變酶Xyn-E27C的半衰期t1/240℃為100 min,相比原酶XynZF-2(t1/245℃=55 min)提高了45 min。在45℃條件下,突變酶Xyn-E27C的半衰期t1/245℃為24 min,相比原酶XynZF-2(t1/245℃=7 min)提高了17 min;突變酶Xyn-E27C的最適pH值由5.0提高至5.5,而pH穩(wěn)定范圍均為5.0~9.0。因此,定點突變E27C對木聚糖酶XynZF-2的熱穩(wěn)定性以及最適pH值均有重要影響。

    木聚糖酶;熱穩(wěn)定性;定點突變;中性氨基酸

    木聚糖酶(EC 3.2.1.8)是催化水解木聚糖β-1,4糖苷鍵的一類多功能酶總稱[1],產(chǎn)物主要是低聚木糖,有時還有少許的阿拉伯糖、木糖等成分[2]。木聚糖酶是木聚糖降解酶中最關(guān)鍵的酶[3],其廣泛分布于各種生物體中,如海洋藻類、細菌、真菌、酵母、甲殼動物、陸地植物以及各種無脊椎動物[4]等,目前研究的木聚糖酶主要來源于微生物[5]。

    在工業(yè)應(yīng)用方面,木聚糖酶具有很大的潛力和價值,它是一種重要的酶制劑,廣泛應(yīng)用于食品加工、紙漿漂白、制藥、飼料添加劑、醫(yī)藥、紡織、生物轉(zhuǎn)化等行業(yè)[6]。一般來說,在工業(yè)應(yīng)用上的酶都需要高催化活性、耐高溫等性質(zhì)。如在紙漿漂白工藝中添加木聚糖酶,可以增加紙張白度,改善紙張性能,降低漂白用化學(xué)物質(zhì)用量,減少造紙業(yè)對環(huán)境的污染等[7]。而工業(yè)上紙漿漂白需要60℃左右處理過程,自然界中的木聚糖酶大多屬于中溫木聚糖酶,難以達到其工業(yè)需求[8]。因此,對于木聚糖酶的熱穩(wěn)定性改造已成為廣泛關(guān)注的熱點[9]。研究表明,很多因素可以影響木聚糖酶的熱穩(wěn)定性(如二硫鍵、氫鍵、疏水作用、離子鍵等[10])。GH11家族木聚糖酶具有分子質(zhì)量小、底物特異性高、空間結(jié)構(gòu)為右手半握形狀、結(jié)構(gòu)比較簡單等特點[11]。N端區(qū)域是影響GH11家族的熱穩(wěn)定性的重要因素,如DUMAN C等[12]對GH11家族木聚糖酶(EvXyn11TS)N端的7個氨基酸進行定點突變(T13F、S9P、N14H、Y18F、Q34L、S35E和S71T),突變酶比野生酶的Tm值提高了約25℃。LEEY E等[13]將木聚糖酶XynA的N-端刪除,發(fā)現(xiàn)突變酶熱穩(wěn)定性喪失但活性不變,可確定木聚糖酶的N-端是其熱穩(wěn)定性區(qū)。

    來源于黑曲霉(Aspergillus niger)XZ-3S的木聚糖酶XynZF-2屬于GH11家族中溫木聚糖酶,木聚糖酶基因xynZF-2已由本實驗室分離,并構(gòu)建在pET-28a-xynZF-2保存[14]。該研究在對xynZF-2基因進行生物信息學(xué)分析的基礎(chǔ)上,選擇N-端的第27位點氨基酸進行定點突變(E27C),在大腸桿菌BL21(DE3)中誘導(dǎo)表達,期望提高木聚糖酶XynZF-2的熱穩(wěn)定性,為該酶的后續(xù)研究奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1材料與試劑

    菌種:黑曲霉(Aspergillus niger)XZ-3S:本實驗室保存。大腸桿菌JM109、BL21(DE3)及表達質(zhì)粒pET-28a:Novagen公司。

    質(zhì)粒:重組質(zhì)粒pET-28a-xynZF-2:本實驗室構(gòu)建并保存。

    工具酶和生化試劑:T4脫氧核糖核酸鏈接酶(T4 deoxyribonucleic acidligase,T4DNALigase)、限制性內(nèi)切酶、DL1000 DNA Marker、異丙基硫代半乳糖苷(isopropyl β-D-thiogalactoside,IPTG)以及5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷(5-bromo-4-chloro-3-indolyl β-D-galactopyranoside,x-gal):TaKaRa公司;DNA質(zhì)粒提取試劑盒:生工生物工程(上海)有限公司;蛋白分子量標準:碧云天生物技術(shù)有限公司;DNA片段回收試劑盒:北京鼎國昌盛生物技術(shù)公司;其他化學(xué)試劑為國產(chǎn)或進口分析純。

    1.2儀器與設(shè)備

    C1000梯度PCR擴增儀:美國Bio-Rad公司;DYY-2穩(wěn)壓穩(wěn)流電泳儀:北京市六一儀器廠;DC-0506低溫恒溫槽:上海比朗儀器有限公司;HZQ-F160A恒溫振蕩器:上海一恒科學(xué)儀器有限公司;Neofuge 23R高速冷凍離心機:上海力申科學(xué)儀器有限公司。

    1.3方法

    1.3.1同源序列比對以及同源建模

    通過ProtParam程序(http://web.expasy.org/protparam/)分析木聚糖酶的理化性質(zhì),利用Phyre2對木聚糖酶同源建模,并通過DS ViewerPro6.0分析木聚糖酶三維結(jié)構(gòu)。

    1.3.2定點突變和重組表達載體pET-28a-xyn-E27C構(gòu)建

    以pET-28a-xynZF-2為模板,采用重疊延伸聚合酶鏈式反應(yīng)(gene splicing by overlap extension polymerase chain reaction,SOE PCR)法[15],引物見表1,擴增得到突變基因E27C,割膠回收。EcoRⅠ、HindⅢ限制性內(nèi)切酶對突變基因E27C和空質(zhì)粒pET-28a進行雙酶切,37℃、3 h,電泳酶切產(chǎn)物,切膠回收。用T4 DNA Ligase連接以上兩種雙酶切產(chǎn)物,16℃過夜,轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3),涂布于含卡那霉素(kalamycin,Kan)抗性的LB固體培養(yǎng)基,構(gòu)建重組大腸桿菌BL21-pET-28a-xyn-E27C。篩選陽性單克隆菌落,提取重組質(zhì)粒進行驗證,送金唯智公司測序。

    表1 突變基因引物Table 1 The primers of mutated gene

    1.3.3重組木聚糖酶XynZF-2和Xyn-E27C的表達與純化

    IPTG誘導(dǎo)表達重組菌株BL21/pET-28a-xyn-E27C,采用超聲波細胞破碎等方法提取粗酶液,具體方法見參考文獻[16]。采用鎳金屬螯合親和層析柱純化重組木聚糖酶XynZF-2和Xyn-E27C,收集洗脫樣品液,即為重組原酶XynZF-2和突變酶Xyn-E27C,對XynZF-2、Xyn-E27C進行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰氨凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)檢測(5%濃縮膠,15%分離膠)[17]。

    1.3.4重組木聚糖酶活性測定

    木聚糖酶活性測定:3,5-二硝基水楊酸(3,5-dinitrosalicylic acid,DNS)法[18]。添加1 mL適當(dāng)稀釋的酶液于1.5 mL的0.5%樺木木聚糖溶液中,40℃水浴反應(yīng)15 min,加DNS終止反應(yīng),測定OD值。將此反應(yīng)條件下每分鐘產(chǎn)生1 μmol還原糖所需的酶量定義為1個單位,U。

    1.3.5重組木聚糖酶酶學(xué)性質(zhì)比較及分析

    對純化后的重組原酶(XynZF-2)和突變酶(Xyn-E27C)進行酶學(xué)性質(zhì)分析,測定溫度和pH值對重組木聚糖酶酶活性的影響[17]。

    2 結(jié)果與分析

    2.1重組木聚糖酶同源序列比對建模及突變位點確定

    圖1 XynZF-2(A)與Xyn-E27C(B)同源建模Fig.1 Homology modeling of XynZF-2(A)and Xyn-E27C(B)

    將原酶XynZF-2和突變酶Xyn-E27C的氨基酸序列提交到Phyre2,分別自動同源序列比對建模,結(jié)果如圖1所示,原酶XynZF-2和突變酶Xyn-E27C基本相似,都是由1個α-螺旋和2個β-折疊片層組成,屬于GH11家族木聚糖酶。利用DNAMAN6.0以及DS ViewerPro6.0對氨基酸序列、木聚糖酶XynZF-2結(jié)構(gòu)分析,發(fā)現(xiàn)在N-端的β-折疊區(qū)域的B1鏈從第22個氨基酸開始到第29氨基酸結(jié)束,依次為:PSSTGENN,由此發(fā)現(xiàn),除第27位點的谷氨酸帶負電荷外,其他氨基酸均不帶電的中性氨基酸,為穩(wěn)定B1鏈與酶分子內(nèi)外部的相互作用,將第27位點帶負電荷的谷氨酸隨機突變?yōu)橄鄬Ψ肿淤|(zhì)量相近且不帶電荷的中性氨基酸(半胱氨酸)。

    2.2定點突變和重組表達載體構(gòu)建

    采用重疊延伸PCR對突變基因E27C進行擴增,瓊脂糖凝膠電泳PCR產(chǎn)物(見圖2、圖3)。通過DNAMAN6.0對突變基因E27C限制性酶切位點進行分析,發(fā)現(xiàn)突變基因E27C不含EcoRⅠ、HindⅢ酶切位點,利用引物對突變基因E27C引入EcoRⅠ、HindⅢ酶切位點,通過EcoRⅠ、HindⅢ雙酶切將突變基因E27C克隆在載體pET-28a上,構(gòu)建重組表達載體。

    圖2 突變基因xyn-E27C上下游片段PCR擴增Fig.2 PCR amplification of the upstream and downstream fragments of mutated genexyn-E27C

    圖3 突變基因xyn-E27C的PCR擴增Fig.3 PCR amplification of mutated genexyn-E27C

    2.3重組木聚糖酶在大腸桿菌中表達和純化

    將重組質(zhì)粒pET-28a-xyn-E27C轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3),構(gòu)建大腸桿菌工程菌。經(jīng)IPTG誘導(dǎo)表達,通過細胞破碎提取粗酶液,對含有His6標簽的原酶和突變酶,經(jīng)鎳金屬螯合親及層析柱法得到純化的重組木聚糖酶,用SDS-PAGE蛋白電泳檢測純化的木聚糖酶XynZF-2和Xyn-E27C。由圖4可見,原酶XynZF-2和突變酶Xyn-E27C均在32 ku處有明顯條帶,突變酶Xyn-E27C在相對分子質(zhì)量上與原酶XynZF-2一致。

    圖4 木聚糖酶XynZF-2和Xyn-E27C的SDS-PAGE分析Fig.4 SDS-PAGE analysis of XynZF-2 and Xyn-E27C

    2.4酶學(xué)性質(zhì)比較與分析

    2.4.1重組木聚糖酶與原酶最適溫度及熱穩(wěn)定性比較

    按1.3.5方法測定原酶與突變酶最適溫度(Topt)結(jié)果如圖5所示,突變酶Xyn-E27C的Topt為45℃,較原酶XynZF-2(Topt=40℃)提高了5℃,最適溫度有一定提高。由圖6可見,40℃保溫1 h,突變酶Xyn-E27C相對酶活性下降至保溫處理前的61.8%,較原酶XynZF-2(42.0%)有大幅度的提高,且突變酶Xyn-E27C的半衰期t1/240℃為100 min,相比原酶XynZF-2(t1/245℃=55 min)提高了45 min。在45℃條件下突變酶Xyn-E27C的半衰期t1/245℃為24 min,相比原酶XynZF-2(t1/245℃=7 min)提高了14 min。可見,突變酶Xyn-E27C相比原酶XynZF-2熱穩(wěn)定性明顯改善。

    圖5 重組木聚糖酶最適溫度的比較Fig.5 Comparison of the optimum temperature of recombinant xylanase

    圖6 重組木聚糖酶熱穩(wěn)定性比較Fig.6 Comparison of thermal stability of recombinant xylanase

    2.4.2重組木聚糖酶與原酶最適pH及pH穩(wěn)定性比較

    分析pH對XynZF-2和Xyn-E27C酶活性的影響發(fā)現(xiàn),突變酶Xyn-E27C的最適pH值為5.5(原酶XynZF-2,pH 5.0)(圖7),最適pH有明顯改變,而在pH 5.0~9.0,兩種酶的殘余酶活性都在80%以上,pH穩(wěn)定性基本不變(圖8)。

    圖7 重組木聚糖酶最適pH的比較Fig.7 Comparison of the optimal pH for recombinant xylanase

    圖8 重組木聚糖酶pH的穩(wěn)定性比較Fig.8 Comparison of the stability of recombinant xylanase pH

    2.5討論

    通過生物信息學(xué)等方法,在Phyre2上對XynZF-2同源建模,并用DS ViewerPro6.0觀察分析建模結(jié)果,發(fā)現(xiàn)XynZF-2屬于GH11家族木聚糖酶,在原酶XynZF-2的B1鏈上引入中性氨基酸,增加中性氨基酸含量,降低了B1鏈上的氨基酸在溶液中的溶解度,從而減少了B1鏈與溶液中水分子的相互作用,有利于維持蛋白分子完整的空間構(gòu)象,穩(wěn)定分子內(nèi)部構(gòu)象。為了進一步減少B1鏈與水分子的相互作用,增強分子內(nèi)部穩(wěn)定性,以穩(wěn)定B1鏈的構(gòu)象,從而穩(wěn)定酶分子整體的構(gòu)象,這可能是突變酶Xyn-E27C熱穩(wěn)定性得到提高的重要因素。

    在如今的工業(yè)應(yīng)用中,對耐高溫木聚糖酶應(yīng)用和需求越來越廣泛。木聚糖酶作為一種重要的酶制劑在許多工業(yè)應(yīng)用環(huán)節(jié)之中具有潛力和價值,對木聚糖酶的熱穩(wěn)定性改造已成為廣泛關(guān)注的熱點[9]。隨著生物技術(shù)的不斷發(fā)展,按照人類需求把木聚糖酶改造成符合工業(yè)要求的酶已經(jīng)成為可能影響木聚糖酶熱穩(wěn)定性的因素有很多。研究表明,GH11家族木聚糖酶的N-端區(qū)域?qū)ζ錈岱€(wěn)定有重要的作用,很多研究已通過對木聚糖酶N-端氨基酸定點突變,改善了其熱穩(wěn)定性[19],如XIONG H R等[20]對里氏木霉來源的木聚糖酶N端和中部β-折疊處引入二硫鍵,在65℃條件下,突變酶DBl的半衰期比野生酶提高約112倍。運用生物信息學(xué)的方法分析比對木聚糖酶的分子結(jié)構(gòu),可以有效確定與熱穩(wěn)定相關(guān)區(qū)域,為木聚糖酶分子的改造提供了便利。

    3 結(jié)論

    本研究通過對XynZF-2進行生物信息學(xué)分析,將第27個位點的谷氨酸突變?yōu)榘腚装彼?,使突變酶Xyn-E27C的最適溫度相比原酶XynZF-2提高了5℃。突變酶Xyn-E27C的半衰期t1/245℃,相比原酶增加了17 min,酶的熱穩(wěn)定性得到了很大提高。這為木聚糖酶Xyn-E27C后續(xù)的研究提供了理論依據(jù)。

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    Effect of introducing neutral amino acids residues on the thermostability of xylanases XynZF-2

    CHEN Yawen,ZHOU Chenyan*,XIE Jingjing,SUO Jingqi,WEI Yangyang,LI Tongbiao
    (School of Life Science and Technology,Xinxiang Medical University,Xinxiang 453003,China)

    The xylanase XynZF-2 fromAspergillus nigerXZ-3S was analyzed by bioinformatics.Neutral amino acids residues(Cys)were introduced at the N-terminus.The mutated genexyn-E27Cwas amplified by site-directed mutagenesis ofE27Cand expressed inEscherichia coliBL21(DE3). According to the enzyme properties analysis and compared to the recombinant XynZF-2,results showed that the optimum temperature of mutant Xyn-E27C was 45℃,which was increased by 5℃.At 40℃,compared to XynZF-2(t1/245℃=55 min),the t1/245℃of the mutated Xyn-E27C was 100 min,which was increased by 45 min.At 45℃,compared to XynZF-2(t1/245℃=7 min),the half-life of the mutated Xyn-E27C was 24 min,which was increased by 17 min.The optimum pH of mutated Xyn-E27C was increased from 5.0 to 5.5,while the pH stability range was from pH 5.0 to 9.0.Therefore,E27C site-directed mutagenesis had important effect on the thermal stability and pH of xylanase XynZF-2.

    xylanase;thermostability;site-directed mutagenesis;neutral amino acids residues

    Q55

    A

    0254-5071(2015)10-0027-05

    10.11882/j.issn.0254-5071.2015.10.007

    2015-09-22

    國家級大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓(xùn)練計劃項目(201410472028);河南省教育廳科學(xué)技術(shù)研究重點項目(13A180861);河南省高等學(xué)校青年骨干教師資助計劃項目(2011GGJS-125);新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院科研項目培育基金(2013ZD113)

    陳亞文(1993-),女,本科生,研究方向為生物工程。

    周晨妍(1979-),女,副教授,博士,研究方向為微生物酶工程。

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