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    10株產(chǎn)菊粉酶細(xì)菌的篩選及鑒定

    2015-09-10 12:28:32張艾艾潘建剛張超君等
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2015年8期
    關(guān)鍵詞:篩選鑒定細(xì)菌

    張艾艾 潘建剛 張超君等

    摘要: 以包頭當(dāng)?shù)鼐沼蟾H土為材料,篩選到10株產(chǎn)菊粉酶細(xì)菌,其中芽孢桿菌的產(chǎn)酶活性相對(duì)較高。對(duì)部分菌株的鑒定結(jié)果表明,產(chǎn)菊粉酶細(xì)菌分屬于厚壁菌門(mén)(Firmicutes)、變形菌門(mén)(Proteobacteria)和放線菌門(mén)(Actinobacteria),它們分別是短桿菌(Brevibacterium sp )(A1)、嗜麥芽窄食單胞菌(Stenotrophomonas maltophilia) (A3)、多黏類(lèi)芽孢桿菌(Paenibacillus polymyxa) (A6、A8)、桿菌屬(Bacillus sp )(A7)。目前關(guān)于短桿菌屬、多黏類(lèi)芽孢桿菌和嗜麥芽窄食單胞菌具有產(chǎn)菊粉酶能力的報(bào)道較少見(jiàn)。

    關(guān)鍵詞: 菊粉酶;細(xì)菌;篩選;鑒定

    中圖分類(lèi)號(hào): Q939 9 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

    文章編號(hào):1002-1302(2015)08-0360-03

    菊粉酶(inulinase)是糖基水解酶 32 家族(glycosyl hydrolases family 32)的一員,又稱(chēng)β-2,1-D-果聚糖酶,它能特異地作用于β-2,1-D-果聚糖果糖苷鍵 [1-4]。根據(jù)其作用于底物的方式不同,又可分為內(nèi)切菊粉酶(endoinulinase,EC 3 2 1 7) 和外切菊粉酶(exoinulinase,EC 3 2 1 80),目前該酶被廣泛用于菊芋制備低聚果糖的工業(yè)生產(chǎn),這主要是因?yàn)榫沼蟾缓仗?,而菊糖是由D-呋喃果糖分子經(jīng)β-2,1糖苷鍵聚合而成的聚合度較高的直鏈多糖,在菊粉酶的作用下,它可以從內(nèi)部和末端水解自身的β-2,1糖苷鍵,從而降解為低聚果糖 [5-8]。而微生物由于來(lái)源廣泛,種類(lèi)多,它已經(jīng)成為菊粉酶篩選的良好來(lái)源,但是迄今為止,在工業(yè)上還是很缺乏具有高產(chǎn)酶活性的功能菌株。因此,如何篩選獲得具有高產(chǎn)菊粉酶活性的目的菌株已經(jīng)成為眾多研究者的關(guān)注焦點(diǎn) [9-15]。這其中又以產(chǎn)菊粉酶真菌的研究居多,而對(duì)于細(xì)菌的研究較少。因此,本研究以?xún)?nèi)蒙古包頭當(dāng)?shù)鼐沼蠓N植的根際土壤為材料,定向篩選產(chǎn)菊粉酶細(xì)菌,以期為菊芋制備低聚果糖提供一定的理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1 1 材料與試劑

    菊芋根部土壤來(lái)源于包頭市東河區(qū)沙爾沁鎮(zhèn)。菊粉、瓊脂、葡萄糖、酵母膏、蛋白胨,購(gòu)自上海藍(lán)季科技發(fā)展有限公司。3,5-二硝基水楊酸,購(gòu)自上海遠(yuǎn)帆助劑廠。冰醋酸、酒石酸鉀鈉、KCl、NaNO3、K2HPO4、(NH4)H2PO、FeSO4·7H2O、MgSO4·7H2O,購(gòu)自天津市風(fēng)船化學(xué)試劑有限公司。上述藥品均為分析純。

    DNS 試劑:取3,5-二硝基水楊酸3 15 g,加水500 mL,水浴至45 ℃,逐步加入100 mL 0 2 g/mL氫氧化鈉,然后加入酒石酸鉀鈉91 g、苯酚2 5 g、無(wú)水亞硝酸鈉 2 5 g,攪拌使之溶解,冷卻后定容至1 000 mL,貯存于棕色瓶中,放置 1 周后使用。

    醋酸緩沖液(0 1 mol/L,pH值4 6):準(zhǔn)確稱(chēng)取醋酸鈉 0 803 6 g,加少量蒸餾水溶解,再加入冰醋酸 0 59 mL,調(diào)節(jié)pH 值至4 6,加蒸餾水定容至200 mL。

    1 2 培養(yǎng)基配制

    富集培養(yǎng)基:酵母膏10 g,蛋白胨20 g,葡萄糖20 g,蒸餾水 1 000 mL。初篩培養(yǎng)基:菊粉30 g,KCl 0 5 g,NaNO3 3 g,MgSO4·7H2O 0 5 g,F(xiàn)eSO4 0 01 g,K2HPO4 1 g,蒸餾水 1 000 mL,瓊脂15 g。復(fù)篩培養(yǎng)基(同發(fā)酵培養(yǎng)基):菊粉20 g,蛋白胨10 g,(NH4)2HPO4 0 5 g,MgSO4·7H2O 0 5 g,NaNO3 5 g,蒸餾水1000 mL,瓊脂15 g(發(fā)酵培養(yǎng)基無(wú))。 斜面保藏培養(yǎng)基:馬鈴薯 20 g,蔗糖(葡萄糖)20 g,蒸餾水1 000 mL,瓊脂15~20 g,pH值自然。

    1 3 菌株篩選

    富集培養(yǎng):取菊芋根際土5 g,放入100 mL無(wú)菌水中,170 r/min振蕩1 h得懸浮液,將1 mL搖勻的懸浮液加入含有50 mL富集培養(yǎng)液的三角瓶中,37 ℃下170 r/min 振蕩培養(yǎng)48 h。

    初篩:將經(jīng)過(guò)富集培養(yǎng)的菌液用無(wú)菌水稀釋為10 -1、10 -2、10 -3、10 -4等4個(gè)不同的濃度,分別吸取0 5 mL不同濃度土壤懸液于初篩培養(yǎng)基上,涂布均勻后,把培養(yǎng)皿倒置放入恒溫培養(yǎng)箱中,28 ℃培養(yǎng)2~3 d,并觀察菌種的生長(zhǎng)情況,利用“透明圈法”對(duì)目的菌落進(jìn)行分離純化,最后對(duì)所得的菌株進(jìn)行斜面培養(yǎng)保藏。

    復(fù)篩:利用純化與酶活性測(cè)定相結(jié)合的方法復(fù)篩產(chǎn)菊粉酶細(xì)菌,先將純化的目的菌株接種于復(fù)篩培養(yǎng)基上,28 ℃恒溫培養(yǎng)2~3 d;然后選取生長(zhǎng)較快的菌株接入含有50 mL發(fā)酵培養(yǎng)基的250 mL三角瓶中,30 ℃、170 r/min恒溫水浴搖床培養(yǎng)72 h;發(fā)酵液3 500 r/min離心15 min,得到的上清液即為粗酶液;最后用DNS法測(cè)定粗酶液酶活性,從中獲得產(chǎn)酶活性較高的菌株。

    1 4 酶活性的測(cè)定

    1 4 1 果糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 試驗(yàn)方案見(jiàn)表1,將各試管沸水浴7 min,顯色后快速冷卻,之后用蒸餾水定容至10 mL,充分混勻后在550 nm下測(cè)吸光度,以果糖濃度為橫坐標(biāo),以吸光度為縱坐標(biāo),繪制果糖標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果如圖1所示。

    1 4 2 酶活性的測(cè)定 菊粉酶活性單位定義 [16]:反應(yīng)體系中1 min轉(zhuǎn)化底物產(chǎn)生 1 μmol 還原糖所需的酶量即為1個(gè)活性單位(U/mL)。酶活性測(cè)定參照文獻(xiàn)[17],略有改動(dòng)。向0 5 mL粗酶液中加入2 5 mL 1%菊糖(醋酸緩沖液配制),37 ℃ 反應(yīng)20 min,沸水滅活10 min,加入DNS 2 mL,沸水浴中7 min顯色,快速冷卻后加5 mL蒸餾水定容到10 mL,以去離子水為空白對(duì)照,用可見(jiàn)分光光度計(jì)測(cè)吸光度。設(shè)3次重復(fù),取平均值。endprint

    1 4 3 酶活性的計(jì)算 按下面的公示來(lái)計(jì)算單位酶活性 [15]:酶活性=D·n·1 000/(k·t)。式中:n為稀釋倍數(shù);k為曲線斜率;t為反應(yīng)時(shí)間(s)。

    1 5 產(chǎn)菊粉酶細(xì)菌的16S rRNA分子鑒定和系統(tǒng)發(fā)育分析

    利用菌落PCR技術(shù)擴(kuò)增所得目的菌株的16S rRNA序列,引物選用27F(5′-AGAGTTTGATCMTGGCTCAG-3′)和1492R(5′-TACGGYTACCTTGTTACGACTT-3′), 具體方法參考文獻(xiàn)[18]。然后利用Blast程序?qū)ふ褿enBank中與各目的序列同源性最高的序列作為參考,最后用ClustalX 1 81軟件進(jìn)行序列多重比對(duì),利用MEGA 4軟件以Neighbor-Joining法進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析 (采樣量1 000次),構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù) [18]。

    2 結(jié)果與分析

    2 1 產(chǎn)菊粉酶菌株產(chǎn)酶活性測(cè)定

    由圖2可見(jiàn),10株產(chǎn)菊粉酶細(xì)菌的產(chǎn)酶活性隨時(shí)間的延長(zhǎng)呈規(guī)律性變化,除菌株A1、A4外,其他菌株的產(chǎn)酶活性都是第1天最高,此后呈下降趨勢(shì);而菌株A1、A4的產(chǎn)酶活性以第2天最高,此后開(kāi)始下降。

    酶活性的產(chǎn)菊粉酶細(xì)菌,并對(duì)其中部分菌株加以鑒定。測(cè)序結(jié)果表明,產(chǎn)菊粉酶細(xì)菌多為厚壁菌門(mén),此外也包含放線菌門(mén)和變形菌門(mén),且來(lái)自厚壁菌門(mén)和放線菌門(mén)的細(xì)菌可能具有較好的產(chǎn)菊粉酶活性,如彼爾姆短桿菌(A1)和芽孢桿菌(A7)要高于多黏類(lèi)芽孢桿菌(A6、A8),而變形菌門(mén)的細(xì)菌產(chǎn)菊粉酶活性則較差。

    張揚(yáng)等曾篩選到一株巨大芽孢桿菌(Bacillus megaterium),而且該菌的產(chǎn)酶活性在培養(yǎng)2天后達(dá)到最高 [4],這與本研究中的菌株A4產(chǎn)酶性能一致,因此A4也可能是巨大芽孢桿菌。Pandey等發(fā)現(xiàn)產(chǎn)菊粉酶的細(xì)菌包括假單胞菌屬(Pseudomonas)、節(jié)桿菌屬(Arthrobacter)、黃桿菌屬 (Staphylococcus)和埃希菌屬(Escherichia)等許多類(lèi)型 [19],而本研究則發(fā)現(xiàn),除上述細(xì)菌外,短桿菌屬(Brevibacterium sp )、多黏類(lèi)芽孢桿菌(P polymyxa)和嗜麥芽窄食單胞菌(Stenotrophomonas maltophilia)也具有產(chǎn)菊粉酶能力,只不過(guò)這3類(lèi)細(xì)菌產(chǎn)菊粉酶能力較弱。因此,本研究后續(xù)將關(guān)注利用紫外誘變、化學(xué)突變技術(shù)以及重離子誘變技術(shù)來(lái)獲取高產(chǎn)菊粉酶活性菌。

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