姜艷軍,牟海霞,周麗亞,高靜
(河北工業(yè)大學(xué)化工學(xué)院,天津 300130)
腈水合酶交聯(lián)酶聚集體在生成煙酰胺體系中的應(yīng)用
姜艷軍,牟海霞,周麗亞,高靜
(河北工業(yè)大學(xué)化工學(xué)院,天津 300130)
采用交聯(lián)酶聚集體(CLEAs)技術(shù)和球化酶技術(shù)對來自大腸桿菌的ES-NHT-118腈水合酶進行固定化.利用大分子葡聚糖醛作為交聯(lián)劑交聯(lián)腈水合酶,在優(yōu)化了溫度、pH、交聯(lián)劑用量及交聯(lián)時間后,腈水合酶CLEAs和球化酶的酶活回收率分別達到49.63%及52.88%.利用掃描電子顯微鏡對2種固定化酶進行了表征,將固定化酶用于催化3-腈基吡啶轉(zhuǎn)化生成煙酰胺.同游離酶相比,腈水合酶CLEAs和球化酶顯示了良好的pH穩(wěn)定性和熱穩(wěn)定性,對高濃度底物的耐受性也有提升.酶活為4 U/m L,底物終濃度為50 mmol/L時,2種固定化酶在重復(fù)使用10次后分別保留了73.45%及61.26%的催化產(chǎn)率.
腈水合酶;固定化酶;交聯(lián)酶聚集體;葡聚糖醛;球化酶
腈水合酶(EC 4.2.1.84)是一種可以將腈類物質(zhì)轉(zhuǎn)化為酰胺類物質(zhì)的酶,例如:在全細(xì)胞或者游離的腈水合酶的催化作用下,丙烯腈可以轉(zhuǎn)化為丙烯酰胺,3-腈基吡啶可以轉(zhuǎn)化為煙酰胺.酰胺類物質(zhì)在有機合成、醫(yī)藥、農(nóng)藥等方面有著十分重要的應(yīng)用[1-4].同全細(xì)胞相比,游離的腈水合酶更受青睞,因為它具有嚴(yán)格的化學(xué)、區(qū)域和對映選擇性及底物專一性[5-6].但是,游離酶的使用通常會因為價格昂貴,溫度、pH和操作穩(wěn)定性低,難以回收利用等因素受到限制.
將酶進行固定化可以在一定程度上提高酶的耐受性,并且能夠循環(huán)使用,方便下游過程的操作.目前報道的腈水合酶固定化技術(shù)主要包括交聯(lián)酶聚集體(CLEAs)技術(shù)、溶膠-凝膠包埋技術(shù)等[7-9].交聯(lián)酶聚集體技術(shù)是一種無載體固定化技術(shù),通過酶分子的氨基和交聯(lián)劑的醛基形成席夫堿使酶分子連接,這種方法幾乎可以適用于任何種類的酶,如青霉素酰化酶,甲醇脫氫酶,脂肪酶,漆酶,腈水解酶[10-13]等.通過交聯(lián)酶聚集體技術(shù)制備的固定化酶具有穩(wěn)定性較高、容易回收及可重復(fù)使用的特點,同時擁有高酶活回收率[14-17].由于戊二醛價格低廉且容易獲取,是CLEAs形成過程中最常用的交聯(lián)劑.其缺點是,一些酶經(jīng)過戊二醛交聯(lián)后只有少量酶活性保留甚至完全失去活性[18-19].為了解決這個問題,有報道采用由葡聚糖氧化制得的葡聚糖醛作為交聯(lián)劑制備CLEAs[20-21].
同戊二醛交聯(lián)相比,經(jīng)過葡聚糖醛交聯(lián)的酶活明顯提高,葡聚糖醛的使用在一定程度上解決了CLEAs酶活回收率低的問題,但CLEAs形貌和大小仍是不可控的.在應(yīng)用過程中經(jīng)過離心或過濾分離后,CLEAs團聚比較緊密,很難再重新分散到應(yīng)用體系中.Brady課題組提出了一種球化酶技術(shù),即將含酶的親水相分散在油相中,形成油包水乳化液,再利用雙功能或者多功能交聯(lián)試劑將乳化液中的酶分子進行交聯(lián),固定成球狀,該課題組成功將球化酶技術(shù)用于脂肪酶的固定[22].球化酶在水油兩相中形成,可以在一定程度上影響酶的方向,有利于酶在兩相界面上定位;球化酶技術(shù)形成的是粒徑可控的球狀結(jié)構(gòu),有利于固定化酶在反應(yīng)體系中的分散,且球狀結(jié)構(gòu)擁有較大的比表面積更利于固定化酶與底物接觸反應(yīng).同時,球化酶的制備過程簡單,成本低廉,因此本實驗將引入球化酶技術(shù)對腈水合酶進行固定化.
本實驗采用產(chǎn)自大腸桿菌的ES-NHT-118腈水合酶為模型酶,以葡聚糖醛作為交聯(lián)劑,分別采用交聯(lián)酶聚集體技術(shù)和球化酶技術(shù)對腈水合酶進行固定化.考察并優(yōu)化了固定化酶的制備條件,探究了pH、溫度及高濃度底物對固定化酶催化效率的影響,并對酶的重復(fù)使用性進行了考察.
1.1 實驗材料
腈水合酶ES-NHT-118,購買自浙江寶賽生物科技有限公司,菌種為重組大腸桿菌.葡聚糖、NaIO4、戊二醛、Na2HPO412H2O、NaH2PO42H2O、H3PO4、苯、甲苯、3-腈基吡啶這些試劑均為分析純.蛋清液取自新鮮雞蛋.
1.2 實驗儀器
集熱式恒溫加熱磁力攪拌器,鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;冷凍干燥機,北京博醫(yī)康技術(shù)公司;離心機,Baida;電子天平、pH計,上海精密科學(xué)儀器有限公司;高效液相色譜,Agilent Technologies.
1.3 實驗方法
1.3.1 葡聚糖醛的制備
1.65 g的葡聚糖溶于50mL蒸餾水,向其中加入3.85g高碘酸鈉(過量),混合液在室溫下攪拌反應(yīng)90m in.反應(yīng)后的溶液經(jīng)過透析膜透析去除殘余高碘酸鈉,冷凍干燥后備用.
1.3.2 腈水合酶CLEAs的制備
1m L腈水合酶加入0.1m L蛋清及2m L飽和硫酸銨溶液,4℃磁力攪拌30m in后加入0.1m L葡聚糖醛(30mg/m L),繼續(xù)反應(yīng)2 h后離心(5000 r/m in,5m in),沉淀用0.05mol/L pH為7的磷酸緩沖液(PBS)洗滌3次即制備得到CLEAs.
1.3.3 球化腈水合酶的制備
在4℃攪拌狀態(tài)下,向含5m L苯/甲苯溶液(體積比為3∶1),及0.2 g span-20的離心管中逐滴加入1m L蛋清蛋白,攪拌乳化0.5h后向其中加入0.1m L 25%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))戊二醛,交聯(lián)0.5h后停止攪拌.4℃冰箱冷藏4 h穩(wěn)定交聯(lián),反應(yīng)結(jié)束后離心,棄上清液,蛋清蛋白球用蒸餾水洗滌3次.
稱取0.1 g濕球化蛋白,定容至1m L后與0.1mL葡聚糖醛(30mg/m L)溶液反應(yīng)2 h,使葡聚糖醛連接在蛋白球表面.離心棄上清液,沉淀用PBS洗滌3次以去除殘留的葡聚糖醛.向修飾后的蛋白球中加入1m L游離酶和1m L飽和硫酸銨溶液,交聯(lián)3h后離心棄上清液,沉淀用PBS洗滌3次,獲得球化腈水合酶,冷藏備用.
1.3.4 酶活定義及測定
酶活檢測:向一定量的酶中加入終濃度為50mmol/L的3-腈基吡啶,30℃反應(yīng)5m in,向反應(yīng)體系中加入1mLHCl(1mol/L)終止反應(yīng).過濾后,用高效液相色譜對反應(yīng)液進行檢測.檢測條件為:使用4.6×100的C18柱進行分離,流動相為NaH2PO4-H3PO4緩沖液(pH=2.8)與乙腈的混合液(體積比為80∶20),在室溫下以1m L/m in的流速流動,使用DAD檢測器在235 nm條件下檢測.
1.3.5 CLEAs和球化酶的電鏡表征
將制備好的CLEAs和球化酶均勻分散于水相中,將分散有2種固定化酶的液體小心的滴加在硅片上,干燥后利用掃描電子顯微鏡(SEM ZeissDSM-950)檢測固定化酶的形貌.
1.3.6 不同濃度的酶催化50mmol/L 3-腈基吡啶的進程曲線
在30℃下,分別取5m L不同濃度的游離酶(0.4~3.2mg/m L)溶液,向其中加入5 m L終濃度為50mmo l/L的3-腈基吡啶開始反應(yīng).每隔一定時間取0.1m L反應(yīng)液加入1mol/LHCl稀釋并終止反應(yīng).過濾后用液相色譜測定底物的生成量并確定產(chǎn)率.
1.3.7 pH對煙酰胺產(chǎn)率的影響
在一定量pH為4~10的游離酶、CLEAs和球化酶中分別加入終濃度為50mmol/L 3-腈基吡啶,30℃下反應(yīng)1h,取0.1m L反應(yīng)液加入1mol/LHCl稀釋并終止反應(yīng).過濾后用液相色譜測定底物的生成量并確定產(chǎn)率.1.3.8溫度對煙酰胺產(chǎn)率的影響
在一定量pH為7的游離酶、CLEAs和球化酶中分別加入終濃度為50 mmol/L 3-腈基吡啶,不同溫度下反應(yīng)1h,取0.1m L反應(yīng)液加入1mol/LHCl稀釋并終止反應(yīng).過濾后用液相色譜測定底物的生成量并確定產(chǎn)率.
1.3.9 CLEAs和球化腈水合酶的熱穩(wěn)定性
取一定量的游離酶、CLEAs和球化酶,分別在30℃、40℃、50℃的水浴中放置1~6h,在冰水浴中快速降溫后分別加入終濃度為50mmol/L 3-腈基吡啶,在30℃下反應(yīng)4 h,取0.1m L加入1mol/L HCl稀釋并終止反應(yīng).過濾后用液相色譜測定底物的生成量并確定產(chǎn)率.
1.3.10 游離酶、CLEAs和球化酶催化不同濃度3-腈基吡啶的進程曲線
在30℃下,分別取5m L 4U/m L的游離酶、CLEAs和球化酶加入5m L不同濃度的3-腈基吡啶(終濃度50~300mmol/L),每隔一定時間取0.1m L加入1mol/L HCl稀釋并終止反應(yīng).過濾后用液相色譜測定底物的生成量并確定產(chǎn)率.
1.3.11 CLEAs和球化酶的重復(fù)使用性
在30℃下,分別取10U的腈水合酶CLEAs和球化酶中加入5m L不同濃度的3-腈基吡啶(終濃度50~200mmol/L),反應(yīng)4 h后離心,取0.1m L上清液加入1mol/LHCl稀釋并終止反應(yīng).過濾后用液相色譜測定底物的生成量并確定產(chǎn)率.再將固定化酶離心洗滌3次,去上清液,加入5 m L對應(yīng)終濃度底物,繼續(xù)新一輪反應(yīng).
所有實驗數(shù)據(jù)均取3次平行實驗結(jié)果的均值.
2.1 CLEAs和球化酶的電鏡表征
利用葡聚糖醛作為交聯(lián)劑,采用了交聯(lián)酶聚集體技術(shù)和球化酶技術(shù)對腈水合酶酶進行固定化,按照1.3.5方法,利用掃描電子顯微鏡對CLEAs和球化酶的形貌進行表征,其結(jié)果如圖1所示.
由圖1a)可以看出,葡聚糖醛交聯(lián)的CLEAs呈多孔的無規(guī)則結(jié)構(gòu),多孔的存在有利于反應(yīng)底物及產(chǎn)物的自由進出,極大程度的降低擴散限制從而提高酶活性[19].然而,不規(guī)則的形貌使CLEAs在離心或過濾后會緊密聚集,難于分散重復(fù)使用,且這種情況會隨著離心次數(shù)的增多而加?。?/p>
2.2 酶濃度對煙酰胺產(chǎn)率的影響
當(dāng)?shù)孜餄舛纫欢〞r,為了防止酶的浪費,按照1.3.6方法,研究了不同酶濃度催化50 mmol/L 3-腈基吡啶對煙酰胺產(chǎn)率的影響,并確定50mmol/L底物對應(yīng)的適宜酶量和反應(yīng)時間,其結(jié)果如圖2所示.
圖1 CLEAs和球化酶的掃描電鏡圖Fig.1 SEM imagesof CLEAs and Spherezymes
從圖2中可以看出,酶濃度為0.4~3.2mg/m L,催化50mmol/L3-腈基吡啶反應(yīng)10h后,煙酰胺產(chǎn)率分別為36.82%,70.32%,98.59%,98.51%,99.64%.在酶濃度低于1.6mg/m L時,煙酰胺產(chǎn)率隨酶濃度的增加而增大,在1.6mg/mL時達到最大值,繼續(xù)增加酶濃度,產(chǎn)率沒有明顯改變.因此,選定酶濃度為1.6mg/m L用于后續(xù)實驗,此時酶活性約為4 U/m L.
2.3 pH對煙酰胺產(chǎn)率的影響
為了使酶在反應(yīng)過程中有適宜的pH環(huán)境,按照1.3.7方法,研究了不同pH對煙酰胺產(chǎn)率的影響,其結(jié)果如圖3所示.
從圖3中可以看出,3種酶均在pH為7的條件下展現(xiàn)了最高的產(chǎn)率,游離酶、CLEAs和球化腈水合酶在pH為7對應(yīng)的煙酰胺產(chǎn)率分別為54.14%、55.15%和57.75%,說明游離酶的最適pH接近7,且經(jīng)過固定化后最適pH未發(fā)生改變.此外,固定化后的腈水合酶對pH的耐受性有了一定程度的提高,如在pH為4時,游離酶的煙酰胺產(chǎn)率為0.98%,CLEAs和球化腈水合酶的煙酰胺產(chǎn)率分別為26.74%和29.01%,在pH為10的環(huán)境中,游離酶的煙酰胺產(chǎn)率為5.42%,CLEAs和球化腈水合酶的煙酰胺產(chǎn)率分別為37.37%和33.27%.通過數(shù)據(jù)結(jié)果對比可得,經(jīng)過固定化以后的酶在酸性和堿性環(huán)境中的耐受性都有一定程度的提高.因為固定化酶經(jīng)過交聯(lián)作用,使酶的亞基更加穩(wěn)定,在面對pH、溫度、高濃度底物的影響時,表現(xiàn)出了更好的穩(wěn)定性,同游離酶相比,表現(xiàn)了更高的催化效率.
2.4 溫度對煙酰胺產(chǎn)率的影響
溫度升高有利于底物與酶分子的接觸反應(yīng),但同時過高的溫度也會使酶變性失活,因此,為確定最適宜的反應(yīng)溫度,按照1.3.8方法,研究了不同溫度對煙酰胺產(chǎn)率的影響,其結(jié)果如圖4所示.
圖2 酶濃度對煙酰胺產(chǎn)率的影響Fig.2 Effectofenzyme concentration on theyield of nicotinam ide
圖3 pH對煙酰胺產(chǎn)率的影響Fig.3 Effectof pH on theyield ofnicotinamide
由圖4可以看出,游離酶、CLEAs和球化酶的最適溫度分別在30℃、50℃、40℃,對應(yīng)的煙酰胺產(chǎn)率分別為54.97%、68.64%和60.37%.固定化酶同游離酶相比,在高溫條件下的催化效率更高,說明同樣條件下固定化酶由于高溫變形造成的酶活性損失更?。驗榻?jīng)過交聯(lián),酶分子通過交聯(lián)劑連接,在高溫條件下酶分子受分子間作用力的影響,使自身的構(gòu)象更加穩(wěn)定.CLEAs的最適溫度比球化酶更高,可能是因為它在無規(guī)則連接的過程中受到更多交聯(lián)劑的連接,使得它受更過分子間作用力,從而比球化酶的構(gòu)象更穩(wěn)定.
2.5 CLEAs和球化酶的熱穩(wěn)定性
由于酶在應(yīng)用過程中會長時間處于一個溫度條件下,有必要對酶的熱穩(wěn)定性進行考察.根據(jù)溫度影響的結(jié)果,選取了30℃、40℃、50℃為CLEAs和球化酶的熱穩(wěn)定性的測試溫度,按照1.3.9節(jié)方法,研究CLEAs和球化酶的熱穩(wěn)定性,其結(jié)果如圖5所示.
圖4 溫度對煙酰胺產(chǎn)率的影響Fig.4 Effectof temperatureon the yield ofnicotinam ide
圖5 CLEAs和球化腈水合酶的熱穩(wěn)定性Fig.5 The thermalstabilitiesof CLEAs and spherezymes
從圖5中可以看出,隨著溫度的增加和孵化時間的延長,溫度對酶活性的影響逐漸增加.CLEAs在30℃、40℃下反應(yīng)基本穩(wěn)定,在6h孵化以后煙酰胺產(chǎn)率分別為96.24%和89.23%.球化酶在30℃條件下能比較穩(wěn)定的反應(yīng),6 h孵化以后能保持99.06%的煙酰胺產(chǎn)率.在50℃條件下孵化6 h,2種固定化酶失去了大部分活性,煙酰胺產(chǎn)率分別只有8.42%和5.36%.穩(wěn)定性測試的結(jié)果進一步表明CLEAs的熱穩(wěn)定性略優(yōu)于球化酶,但CLEAs在50℃條件下也不能長時間穩(wěn)定的存活.為了使固定化酶在長時間的實驗過程中能夠更好的發(fā)揮催化作用,選取30℃為反應(yīng)條件.
2.6 游離酶、CLEAs和球化酶催化不同濃度3-腈基吡啶的進程曲線
腈水合酶的底物為腈類物質(zhì),是一類有毒物質(zhì),在催化過程中底物會對酶分子產(chǎn)生毒害作用,高濃度底物會使酶活性降低甚至失活.按照1.3.10節(jié)方法,在酶活相同的狀態(tài)下,研究3種酶催化不同濃度的3-腈基吡啶對煙酰胺產(chǎn)率的影響,考察了游離酶、CLEAs及球化酶對底物3-腈基吡啶的耐受性,其結(jié)果如圖6所示.
從圖6中可以看出,在底物終濃度為50mmol/L時,反應(yīng)10h后,游離酶、CLEAs及球化酶催化的煙酰胺產(chǎn)率分別為98.35%、97.80%和98.21%,在底物終濃度為100mmol/L時,反應(yīng)10h后,游離酶、CLEAs及球化酶催化的煙酰胺產(chǎn)率分別為79.24%、91.29%和89.23%,在底物終濃度為200mmol/L時,反應(yīng)10 h后,游離酶、CLEAs及球化酶催化的煙酰胺產(chǎn)率分別為31.01%、64.26%和59.23%.對比數(shù)據(jù)可以得出,隨底物濃度的增加,3種酶催化產(chǎn)物的產(chǎn)率都在逐漸降低,在經(jīng)過固定化后,固定化酶對高濃度的底物耐受性較游離酶有所提高,且CLEAs略優(yōu)于球化酶.
圖6 高濃度底物對煙酰胺產(chǎn)率的影響Fig.6 Theeffectofhigh concentrationsof substrate on theyield of nicotinamide
2.7 CLEAs和球化酶的重復(fù)使用性
經(jīng)過固定化以后,能夠重復(fù)使用是固定化酶相比游離酶的一個極大的優(yōu)勢,重復(fù)使用能夠降低使用成本.按照1.3.11節(jié)方法,研究了不同CLEAs和球化酶的重復(fù)使用性,其結(jié)果如圖7所示.
由圖7a)可以看出,在底物終濃度50 mmol/L的條件下,經(jīng)過10次重復(fù)使用以后,CLEAs和球化酶催化的煙酰胺產(chǎn)率分別為73.45%,61.26%,表現(xiàn)出了較好的重復(fù)使用性.但是隨著底物濃度的增加,底物對酶的累積影響越來越明顯,重復(fù)使用效率會隨著底物濃度的增大明顯降低.由圖7b)可以看出,在底物終濃度100mmol/L的條件下,CLEAs和球化酶的催化產(chǎn)率在重復(fù)7次的時候產(chǎn)率分別為35.91%和27.32%,低于了初次的50%.如圖7c)所示,在底物終濃度200mmol/L的條件下,CLEAs和球化酶的催化產(chǎn)率在重復(fù)5次的時候產(chǎn)率就低于了初次的50%,對應(yīng)產(chǎn)率分別為22.44%,14.82%.除了底物對酶的影響造成酶活損失以外,每次洗滌過程中還會對固定化酶造成一定程度的損失,操作過程中因盡量小心,減少過程中酶的損失.
圖7 CLEAs和球化酶的重復(fù)使用性Fig.7 Reusability of CLEAs and spherezymes
為了提高酶活回收率,本文以葡聚糖醛為交聯(lián)劑,采用了交聯(lián)酶聚集體和球化酶2種方法固定化腈水合酶,對固定化酶的形貌進行了電鏡表征,并對固定化酶性能進行了研究,得到以下結(jié)論:
1)葡聚糖醛交聯(lián)的CLEAs是含有多孔的無規(guī)則結(jié)構(gòu),多孔的存在有利于反應(yīng)底物及產(chǎn)物的自由進出,極大程度的降低擴散限制從而提高酶活性.球化腈水合酶為粒徑主要分布在8~20m的球狀結(jié)構(gòu),在應(yīng)用過程中體現(xiàn)了比CLEAs更好的重懸性.
2)經(jīng)過固定化以后,同游離酶相比,固定化酶有著更好的pH、熱穩(wěn)定性,對高濃度底物的耐受性更強,在底物終濃度50 mmol/L的條件下,經(jīng)過10次重復(fù)使用,CLEAs和球化酶表現(xiàn)了良好的重復(fù)使用性.這些性能使固定化酶在應(yīng)用中更有優(yōu)勢.
[1]VelankarH,Clarke KG,Du PreezR,etal.Developmentsinnitrileandamidebiotransformation processes[J].TrendsBiotechnol,2010,28:561-569.
[2]Martinez S,Kuhn ML,Russell JT,etal.Acry lam ide productionusing encapsulated nitrilehydratase from Pseudonocardia therm ophila in a sol-gel matrix[J].JM olCatal B:Enzym,2014,100:19-24.
[3]Gong JS,Lu ZM,LiH,etal.Nitrilasesinnitrilebiocatalysis:recentprogressand forthcoming research[J].M icrobCellFact,2012,11:142.
[4]Prasad S,Bhalla TC.Nitrile hydratases(NHases):at the interfaceof academiaand industry[J].Biotechnol Adv,2010,28:725-741.
[5]Schmid A,Dordick JS,Hauer B,etal.review article Industrialbiocatalysis today and tomorrow[J].Nature,2001,409:258-268.
[6]Shen Y,Du F,Gao W,etal.Stereoselectivenitrile hydratase[J].A fr JM icrobiol Res,2012,6:6114-6121.
[7]Van PeltS,Quignard S,KubáD,etal.Nitrilehydratase CLEAs:the immobilization and stabilization ofan industrially importantenzyme[J].Green Chem,2008,10:395-400.
[8]Pawar SV,Yadav GD.PVA/chitosan-glutaraldehyde cross-linked nitrilehydrataseas reusablebiocatalyst for conversion ofnitriles to am ides[J].J MolCatalB:Enzym,2014,101:115-21.
[9]Chiyanzu I,Cowan DA,Burton SG.Immobilization of Geobacillus pallidus RAPc8 nitrile hydratase(NHase)reduces substrate inhibition and enhances thermostability[J].JMol Catal B:Enzym,2010,63:109-115.
[10]Cao LQ,Van Rantwijk F,Sheldon RA.Cross-linked enzyme aggregates:A simple and effectivemethod for the immobilization of penicillin acylase[J].Org Lett,2000,2:1361-1364.
[11]SchoevaartR,Wolbers MW,Golubovic M,et al.Preparation,optim ization,and structures of cross-linked enzyme aggregates(CLEAs)[J].BiotechnolBioeng,2004,87:754-762.
[12]Sheldon RA,SchoevaartR,Van Langen LM.A noveland versatilemethod forenzyme immobilization(a review)[J].Biocatal Biotransform,2005,23:141-147.
[13]Sheldon RA.Cross-linked enzyme aggregates(CLEAs):stableand recyclablebiocatalysts[J].Biochem Soc Trans,2007,35:1583-1587.
[14]Kim M H,Park S,Kim YH,etal.Immobilization of formatedehydrogenase from Candidaboidiniithrough cross-linkedenzymeaggregates[J].JM ol Catal B:Enzym,2013,97:209-214.
[15]Kartal F,Janssen MHA,Hollmann F,et al.Improved esterification activity of Candida rugosa lipase in organic solventby immobilization as Cross-linked enzymeaggregates(CLEAs)[J].JMolCatal B:Enzym,2011,71:85-89.
[16]Gupta P,Dutt K,M isra S,etal.Characterization of cross-linked immobilized lipase from thermophilicmould Thermomyces lanuginosa using glutaraldehyde[J].Bioresour Technol,2009,100:4074-4076.
[17]Matijo yt I,Arends IWCE,De VriesS,etal.Preparation and useof cross-linked enzymeaggregates(CLEAs)of laccases[J].JMolCatalB:Enzym,2010,62:142-148.
[18]M ateo C,Palomo JM,Van Langen LM,etal.A new,m ild cross-linkingmethodology to preparecross-linked enzymeaggregates[J].Biotechnol Bioeng,2004,86:273-276.
[19]ZhenQN,WangMF,QiW,etal.Preparationof-mannanaseCLEAsusingmacromolecularcross-linkers[J].Catal SciTechnol,2013,3:1937-1941.
[20]Chmura A,Rustler S,Paravidino M,et al.The combi-CLEA approach:enzymatic cascade synthesis of enantiomerically pure(S)-mandelic acid[J].Tetrahedron:Asymmetry,2013,24:1225-1232.
[21]IrazoquiG,GiacominiC,Batista-Viera F,etal.Hydrophilizationof immobilizedmodelenzymessuggestsawidelyapplicablemethod forenhancing protein stability in polar organic co-solvents[J].JM ol Catal B:Enzym,2007,46:43-51.
[22]Dean Brady,Justin Jordaan,Clinton Simpson,et al.Spherezymes:A novel structured self-immobilisation enzyme technology[J].BMC Biotechnol,2008,8-18.
[責(zé)任編輯 田豐]
Theapplication of nitrilehydratase cross-linked enzymeaggregates in thegenerated system of nicotinam ide
JIANG Yanjun,MU Haixia,ZHOU Liya,GAO Jing
(Schoolof Chemical Engineering,HebeiUniversity of Technology,Tianjin 300130,China)
Cross-linked enzymeaggregates(CLEAs)and spherezymesofnitrilehydratase(NHase)ES-NHT-118 from E.coliwere prepared.Dextran polyaldehyde,amacromolecular cross-linker,wasemployed to cross-link NHase for the first time.A fter having optim ized the tem perature,pH,concentration of the cross-linker and the cross-linking time in the process of preparation,NHase CLEAs and spherezymes have obtained 49.63%,52.88%of activity recovery,respectively.Themorphology of CLEAsand spherezymeswereanalyzed by using scanning electronm icroscopy(SEM). The immobilized enzymesw ere em p loyed to catalyze 3-cyanopyridine converted to nicotinam ide.The NHase CLEAs and spherezymes exhibited increased stability at varied pH and temperature conditions w hen compared with its free counterpart.Whenexposed tohigh concentrationsofacrylamide,immobilized enzymesalsoexhibitedeffectivecatalytic activity.Whenhaving reached theeffectof50mmol/L 3-cyanopyridine,4U/m LNHase CLEAsand spherezymeskept respectively 74.37%,63.95%of theiroriginalactivity afterbeing recycled ten times.
nitrilehydratase;immobilized enzyme;cross-linked enzymeaggregates(CLEAs);extran polyaldehyde; spherezymes
Q814.2
A
1007-2373(2015)02-0068-07
10.14081/j.cnki.hgdxb.2015.02.015
2015-01-23
國家自然科學(xué)基金(21276062);河北省高等學(xué)??茖W(xué)技術(shù)研究重點項目(YQ2013025);天津市自然科學(xué)基金(13JCYBJC18500);天津市高等學(xué)??萍及l(fā)展基金計劃項目(20140513)
姜艷軍(1980-),男(漢族),副教授,博士,yanjunjiang@hebut.edu.cn.
數(shù)字出版日期:2015-04-14數(shù)字出版網(wǎng)址:http://www.cnki.net/kcms/detail/13.1208.T.20150414.0915.001.htm l