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    西紅花酸對RAW264.7巨噬細(xì)胞TLR4/NF-κB信號通路的抑制作用及機(jī)制探討

    2015-06-14 09:48:22楊如會劉并進(jìn)
    山東醫(yī)藥 2015年9期
    關(guān)鍵詞:紅花細(xì)胞因子途徑

    楊如會,劉并進(jìn)

    (麗水學(xué)院醫(yī)學(xué)院,浙江麗水323000)

    西紅花酸是西紅花的主要有效成分,可從茜草科植物梔子果實(shí)中提?。?]。前期動物實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,其可抑制炎癥性疾病核因子-κB(NF-κB)途徑的激活[2,3];進(jìn)一步的研究顯示,西紅花酸可以通過抑制蛋白激酶C-θ的磷酸化PKCθ從而抑制NF-κB上游通路中IKKβ的激活[4]。Toll樣受體(TLRs)是機(jī)體細(xì)胞免疫中的關(guān)鍵受體,在天然免疫和獲得性免疫中起著核心作用[5]。TLR4是 TLRs家族中的重要亞型,除了可以識別微生物等外源性物質(zhì)外,還可作為內(nèi)源性物質(zhì)的信號傳導(dǎo)途徑。在TLR4信號傳遞途徑上,一條是通過翻譯起始區(qū)結(jié)構(gòu)域招募接頭分子MyD88對信號通路進(jìn)行傳導(dǎo)[6]。另一條是通過招募接頭蛋白TRIF進(jìn)行信號傳遞[7]。2013年4月~2014年2月,我們采用TLR4配體LPS刺激RAW264.7巨噬細(xì)胞,同時用西紅花酸和 MyD88 siRNA進(jìn)行干預(yù),以期探討西紅花酸對巨噬細(xì)胞TLR4/NF-κB信號途徑的作用是否通過MyD88信號通路實(shí)現(xiàn)。

    1 材料與方法

    1.1 材料 藥品和試劑:西紅花酸:磚紅色粉末,由中國藥科大學(xué)藥理實(shí)驗(yàn)室精制(含量≥98%,HPLC),實(shí)驗(yàn)時以二甲基亞砜(DMSO)溶解,再以PBS稀釋成所需濃度,DMSO的終濃度不超過0.01%(v/v);RAW264.7細(xì)胞株:中科院上海細(xì)胞庫;LPS、zymosan A:Sigma 公司;MyD88、p-JNK、NF-κB/p65 和 GADPH一抗:abcam公司;TNF-α、IL-6 ELISA試劑盒:Uscnk公司;轉(zhuǎn)染試劑LipofectamineTM2000:Invitrogen公司。小鼠MyD88基因特異性siRNA由上海吉瑪制藥公司根據(jù)NCBI數(shù)據(jù)庫中MyD88(NM_010851.2)分別設(shè)計(jì)3條針對MyD88基因的3條siRNA,分別為:sr-1正義5'-GACUGAUUCCUAUUAAAUA-3',反義 5'-UAUUUAAUAGGAAUCAGUC-3';sr-2正義5'-CGUUCUCUACCAUAGAGGC-3',反義 5'-GCCUCUAUGGUAGAGAACGC-3';sr-3:正義 5'-GCAUUUUAAAGCAACCUGG-3',反義5'-CCAGGUUGCUUUAAAAUGC-3';陰性對照為無義序列NC siRNA。

    1.2 MyD88 siRNA轉(zhuǎn)染及最佳siRNA的確定RAW264.7巨噬細(xì)胞用含10%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)基(含100 IU/mL青霉素和100 IU/mL鏈霉素)在37℃、5%CO2條件下培養(yǎng),根據(jù)細(xì)胞生長情況,每隔2~3 d換液1次。細(xì)胞轉(zhuǎn)染方法:將4條MyD88 siRNA分別和轉(zhuǎn)染試劑按照說明書中的比例混合,加入細(xì)胞培養(yǎng)皿中,24 h后提取各基因和蛋白,RT-PCR和Western blotting法確定出最佳siRNA。

    1.3 分組 MyD88 siRNA轉(zhuǎn)染24 h后換無血清培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)12 h進(jìn)行實(shí)驗(yàn)分組:NC siRNA轉(zhuǎn)染組(A 組)、空白對照組(B 組)、LPS 500 μg/L 組(C組)、LPS 500 μg/L+西紅花酸(10-5mol/L)+MyD88 siRNA轉(zhuǎn)染組(D 組),LPS 500 μg/L+西紅花酸(10-5mol/L)組(E組)。每組設(shè)6個平行復(fù)孔,按上述條件分別處理24 h后提取蛋白和基因備用。

    1.4 RAW264.7 巨噬細(xì)胞 IL-6、MCP-1、TNF-α、IFN-β和iNOS mRNA的檢測 采用RT-PCR法。根據(jù) GeneBank 基因序列設(shè)計(jì) IL-6、MCP-1、TNF-α、IFN-β、iNOS mRNA引物序列,由上海生工生物工程公司合成,引物序列如下:MyD88:5'-CTATCACCTCCAGGTTTCTA-3',5'-GAAGACATTGAGCCACCTTA-3',299 bp;IL-6:5'-AGTTGCCTTCTTGGGACTGA-3',5'-GCCACTCCTTCTGTGACTCC-3',521bp;TNF-α:5'-ACGGCA-TGGATCTCAAAGAC-3',5'-GGTCACTGTCCCAGCATCTT-3',550 bp;iNOS:5'-GTGGTGACAAGCACATTTGG-3',5'-GGCTGGACTTTTCACTCTGC-3',487 bp;MCP-1:5'-TGAGGTGGTTGTGGAAAAGG-3',5'-CCTGCTGTTCACAGTTGCC-3',382 bp;IFN-β:5'-AGCAGCTGAATGGAAAGATCAAC-3',5'-GGATGGCAAAGGCAGTGTAAC-3',124 bp;GAPDH:5'-TGCTCGAGATGTCATGAAGG-3',5'-TTGCGCTCATCTTAGGCTTT-3',522 bp。收集各組處理后細(xì)胞,用TRIzol提取總RNA,紫外分光光度計(jì)測定核酸的濃度和純度,轉(zhuǎn)錄成cDNA,BIO-RAD PCR儀進(jìn)行基因擴(kuò)增,PCR 反應(yīng)條件:94 ℃、5 min,94 ℃、45 s,55 ℃、40 s,72℃、60 s,然后第2~4個步驟進(jìn)行30個循環(huán),最后72℃、5 min,反應(yīng)結(jié)束后4℃保存,收集擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖電泳分析。對PCR反應(yīng)產(chǎn)物進(jìn)行1.0%(w/v)瓊脂糖凝膠100 VA電泳45 min,用凝膠圖像分析系統(tǒng)采集圖像。圖像分析:Quantity One v4.62 Software分析軟件對擴(kuò)充基因的電泳條帶進(jìn)行灰度分析,以目的條帶的光密度值與相應(yīng)的GADPH條帶的光密度值進(jìn)行比較。

    1.5 RAW264.7 巨噬細(xì)胞 NF-κB/p65、p-JNK 蛋白的檢測 提取細(xì)胞總蛋白,BCA法測定蛋白定量,制備10%聚丙烯酰胺凝膠,進(jìn)行SDS-PAGE電泳,并實(shí)施PVDF轉(zhuǎn)膜,Western blotting法檢測p-JNK、NF-κB/p65 和 GADPH 蛋 白 表 達(dá),采 用Bio-Rad凝膠成像系統(tǒng)進(jìn)行分析,蛋白表達(dá)量用光密度值表示,以GADPH作為內(nèi)參對照。

    1.6 RAW264.7細(xì)胞培養(yǎng)液中 TNF-α 和 IL-6的水平的檢測 采用ELISA法。收集不同方法處理的RAW264.7細(xì)胞的上清液,按ELISA試劑盒說明操作,每組設(shè)6個復(fù)孔,檢測細(xì)胞因子TNF-α和IL-6水平。

    1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS10.0統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料以±s表示,兩組比較采用配對t檢驗(yàn),總體差異顯著性分析采用方差分析(one-way AVONA)。P≤0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 各組 TNF-α、MCP-1、iNOS、IL-6、IFN-β mRNA比較 見表1。

    2.2 各組 p-JNK、NF-κB/p65 蛋白表達(dá)及 TNF-α、IL-6水平比較 見表2。

    3 討論

    巨噬細(xì)胞表面TLR4屬于TLRs家族重要模式識別受體,作為炎癥信號傳遞門戶蛋白,能夠識別特定類型微生物的保守分子成分,從而激活信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,誘導(dǎo)炎癥反應(yīng);還參與機(jī)體細(xì)胞增殖與分化以及炎癥細(xì)胞凋亡等生理過程[8]。NF-κB在TLR4下游信號通路處于樞紐位置,NF-κB家族由一組轉(zhuǎn)錄因子構(gòu)成,其中p65是其中的一個核轉(zhuǎn)錄因子,其活化后,NF-κB與IκB解離并進(jìn)入細(xì)胞核,在細(xì)胞核內(nèi)與DNA特定序列結(jié)合,調(diào)節(jié)炎性細(xì)胞因子、細(xì)胞增殖(抗凋亡)等基因的轉(zhuǎn)錄,參與炎癥調(diào)節(jié)、淋巴細(xì)胞成熟、體液免疫、固有免疫和免疫器官的活化等。

    表 1 各組 TNF-α、MCP-1、iNOS、IL-6 和 IFN-β mRNA 相對表達(dá)量(±s)

    表 1 各組 TNF-α、MCP-1、iNOS、IL-6 和 IFN-β mRNA 相對表達(dá)量(±s)

    注:與 B 組比較,*P <0.05,**P <0.01;與 C 組比較,#P <0.05,##P <0.01;與 D 組比較,△P <0.05,△△P <0.01。

    組別 TNF-α MCP-1 iNOS IL-6 IFN-β A 組 1.27±0.24 1.28±0.33 0.94±0.09 1.07±0.07 1.12±0.12 B 組 1.14±0.10 1.63±0.27 0.78±0.06 1.30±0.12 1.36±0.25 C 組 2.53±0.24** 3.32±0.31** 1.34±0.09** 4.64±0.38** 1.95±0.18*D 組 2.16±0.19## 3.36±0.44# 1.22±0.08## 3.91±0.30 2.08±0.18 E 組 1.40±0.17##△△ 2.44±0.35#△ 0.88±0.04##△△ 3.81±0.28#1.97±0.21

    表2 各組 p-JNK1/2、NF-κB/p65 蛋白及 TNF-α、IL-6 水平比較(±s)

    表2 各組 p-JNK1/2、NF-κB/p65 蛋白及 TNF-α、IL-6 水平比較(±s)

    注:與 A組比較,**P <0.01;與 B 組比較;#P <0.05,##P <0.01;與 C 組比較,△P <0.05,△△P <0.01。

    組別 p-JNK1/2 NF-κB/p65 TNF-α(pg/mL) IL-6(pg/mL)A組0.92±0.09 1.04±0.08 14.01±1.35 16.22±1.62 B 組 0.94±0.05 1.17±0.07 14.49±1.24 15.61±1.93 C 組 1.30±0.14* 2.03±0.09** 40.16±5.08** 82.10±8.97**D 組 1.17±0.07# 2.03±0.13# 37.59±4.33** 76.88±8.83**E 組 1.01±0.06#△ 1.78±0.09#△ 20.05±4.26##△△ 40.32±6.74##△△

    目前認(rèn)為,除TLR3外,TLR/NF-κB通路有兩條途徑,MyD88依賴的信號通路主要介導(dǎo)NF-κB活化、細(xì)胞因子的產(chǎn)生。調(diào)控啟動細(xì)胞因子如MCP-1、TNF-α、IL-6等的表達(dá)、增強(qiáng)后繼炎癥因子如iNOS的表達(dá);或者TRAF-6激活JNK途徑(引起JNK1/2的磷酸化),引導(dǎo)下游通路轉(zhuǎn)錄活化蛋白-1的激活;TLR4的非MyD88依賴途徑,通過細(xì)胞因子IRF3的激活調(diào)控IFN-β等相關(guān)基因的表達(dá),另外,TRIF還可以與RIP1相互作用,激活I(lǐng)KK1-IKK2-NEMO復(fù)合物,進(jìn)而激活NF-κB。TLR4可被LPS等配體激活,通過MyD88依賴和非依賴兩條途徑進(jìn)行信號傳遞。

    在本實(shí)驗(yàn)中,LPS是TLR4的特異性配體,LPS刺激 RAW264.7巨噬細(xì)胞后,炎癥因子 TNF-α、MCP-1、iNOS、IFN-β 和 IL-6 mRNA 明顯升高,NF-κB的活性上調(diào);并引起JNK1/2的磷酸化,激活下游炎癥通路,引起相關(guān)炎癥因子TNF-α和IL-6的表達(dá)增加。在給予西紅花酸干預(yù)后,MyD88依賴途徑的炎癥因子TNF-α、MCP-1、iNOS和IL-6均有明顯下降,p-JNK和NF-κB/p65可被西紅花酸抑制,下游炎癥因子TNF-α和IL-6也明顯降低,和前期研究[2]相一致。通過siRNA對MyD88進(jìn)行基因沉默后,西紅花酸對TLR4信號通路的上述作用被阻斷,說明西紅花酸對TLR4信號通路的作用可能與MyD88相關(guān)。在本研究結(jié)果表1中可以看出,在TLR4非MyD88信號通路中,LPS刺激同樣可以引起IFN-β mRNA升高,但西紅花酸對 IFN-β的作用不明顯,在對MyD88進(jìn)行基因干擾后,IFN-β mRNA沒有明顯變化。說明在非依賴MyD88信號的TRIF途徑中,西紅花酸和MyD88作用均不明顯。

    綜上認(rèn)為,西紅花酸對TLR4/NF-κB信號途徑的抑制作用主要是通過MyD88依賴途徑實(shí)現(xiàn)的。

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