黃芪多糖對紅細胞調(diào)控T 淋巴細胞增殖的影響

尹 偉，馬騫寰，姜俊兵，范闊海，孫 娜，孫耀貴，楊麗華，李宏全＊

（1.山西農(nóng)業(yè)大學動物科技學院，山西太谷030801；2.東營佛思特生物工程有限公司，山東東營257091；3.山西省農(nóng)業(yè)科學院畜牧獸醫(yī)研究所，山西太原030032）

自1981年美國學者Siegel提出“紅細胞免疫系統(tǒng)（red－cell immune system，RCIS）”的新概念以來，已證實紅細胞具有很多免疫相關(guān)物質(zhì)，使紅細胞不僅具有識別、黏附、殺傷抗原及傳遞抗原信息和清除免疫復(fù)合物（immune complex，IC）等能力，還能調(diào)理吞噬、抑制補體活化，參與機體的免疫調(diào)控，并有完整的自我調(diào)控系統(tǒng)。因此，紅細胞免疫功能的變化與機體疾病的發(fā)生、發(fā)展及免疫狀態(tài)有高度相關(guān)性［1－5］，尋求提高紅細胞免疫功能的活性物質(zhì)在臨床上具有重要意義。

早在1962年，Cartstairs就首次報道自體紅細胞對植物血凝素P（phytohenag ylatinin，PHA－P）刺激的人淋巴細胞增殖有影響，紅細胞有利于人淋巴細胞的培養(yǎng)。Arosa F A 等［6］認為紅細胞是T 細胞活性調(diào)節(jié)器，紅細胞可促進人外周血T 淋巴細胞存活并能抑制激活介導(dǎo)的細胞死亡和氧化應(yīng)激，并設(shè)想可以通過平衡紅細胞免疫活性來改善T 淋巴細胞活性，達到臨床治療某些疾病的目的，越來越引起廣大研究者的關(guān)注。雖然許多研究證實了紅細胞上相關(guān)免疫物質(zhì)參與T 淋巴細胞的調(diào)控，但其免疫調(diào)控的機理研究尚不完全清楚。近年來，國外己建立了許多測定紅細胞調(diào)控淋巴細胞免疫功能的細胞培養(yǎng)法，研究紅細胞對T 淋巴細胞免疫功能的調(diào)控作用與機理。國內(nèi)雖然有一些實驗室開展了紅細胞調(diào)控淋巴細胞免疫功能的試驗研究，但相關(guān)研究方法亟待向規(guī)范化、標準化和定量、精確化方向發(fā)展。同時，國內(nèi)外關(guān)于外源性物質(zhì)調(diào)控紅細胞影響淋巴細胞增殖、分化的研究尚近乎空白。

黃芪多糖（Astragalus polysaccharides，APS）是中藥黃芪（Radix Astragalus）中含量最多、生物活性較強的一種物質(zhì)，APS調(diào)節(jié)機體免疫功能的作用機制尚不清楚，但APS對機體細胞免疫和體液免疫有著廣泛影響［7］。為此設(shè)計本試驗，將紅細胞與本實驗室提取的一種新型APS分別或共同作用于淋巴細胞，探討APS對紅細胞調(diào)控機體免疫功能的影響及其效應(yīng)機制，為拓展APS作為免疫調(diào)節(jié)劑在臨床上的應(yīng)用提供試驗依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實驗動物 普通昆明（KM）小鼠30只，4周齡～6周齡，雌性，清潔級，體重18g～22g。購自山西醫(yī)科大學實驗動物中心。小鼠飼養(yǎng)在22℃±2℃環(huán)境里，自由采食和飲水，自然光照，飼喂1周后開始試驗。

1.1.2 藥品及試劑 抗凝劑（肝素鈉125U／mL）、HANK＇S緩沖液、紅細胞裂解液（Trise－NH4CL）、RPMI1640為美國GIBCO 公司產(chǎn)品；植物凝集素（PHAP）為美國Sigma公司產(chǎn)品；濃度20g／L臺盼蘭、二甲基亞砜、四甲基偶氮唑鹽（MTT）為北京醫(yī)藥公司產(chǎn)品；胎牛血清（FCS）為杭州四季青生物工程材料有限公司產(chǎn)品；淋巴細胞分離液為中國醫(yī)學科學院生物工程研究所研制；APS為本實驗室提取精制，呈乳白色粉末，分子質(zhì)量1.1×104ku、純度97.16%，單糖組成及分子摩爾比為：鼠李糖∶葡糖糖∶半乳糖∶阿拉伯糖＝1.19∶72.01∶5.85∶20.95。

1.1.3 試 驗 儀 器 酶 標 儀（ZS－2 型），離 心 機（TGL168），恒溫培養(yǎng)箱（78－1），超凈工作臺，微量加樣器，無菌過濾器（直徑25mm、孔徑0.2nm），24孔和96 孔培養(yǎng)板，純水蒸餾器（SZ－96），生物顯微鏡（BDS200－PH），流式細胞儀（FACScalibur）。

1.2 方法

1.2.1 試驗分組 應(yīng)用Statistics Analysis System，按重復(fù)數(shù)為3的4×4雙向分組原則完全隨機設(shè)計，A 因素為外周血／脾臟T 淋巴細胞（T）、外周血／脾臟T 淋巴細胞（T）＋植物凝集素（PHA）、外周血／脾臟T 淋巴細胞（T）＋紅細胞（RBC）、外周血／脾臟T 淋巴細胞（T）＋紅細胞（RBC）＋植物凝集素（PHA），B 因 素 為APS 0g／mL、APS 10g／mL、APS 50g／mL、APS 200g／mL（表1）。

表1 T 淋巴細胞增殖測定方案Table 1 Experimental program for detecting T lymphocyte proliferation

1.2.2 藥物配制 PHA 應(yīng)用液：將5mg PHA 溶于10mL無血清RPMI1640培養(yǎng)液，無菌濾器微孔過濾，分裝2 mL／瓶，－40℃凍存?zhèn)溆?；APS 應(yīng)用液：細胞培養(yǎng)用的APS 20mg用2mL 無血清RPMI1640培養(yǎng)液充分溶解后離心，取上清，在無菌超凈臺內(nèi)，用5 mL 注射器和無菌過濾器過濾，然后，用含100mL／L胎牛血清的RPMI1640細胞完全培養(yǎng)液稀釋成1、5、10mg／mL 3個濃度的應(yīng)用液。細胞培養(yǎng)體系中加入APS的終濃度分別為0、10、50、200μg／mL。

1.2.3 外周血T 淋巴細胞懸液的制備 ①取9只試驗小鼠，分別無菌摘除眼球采集各小鼠眼眶肝素抗凝血，加入等量無血清1640培養(yǎng)液，4℃保存；②吸取淋巴細胞分層液（萄聚糖－泛影葡胺）6mL 置于15mL離心管中，將離心管傾斜45°角；取稀釋保存的抗凝血約3mL，在距分層液界面1cm 處沿試管壁緩慢加至分層液上面，應(yīng)注意保持兩者界面清晰，勿使血液混入分層液內(nèi)；③將離心管置于水平式離心機內(nèi)在18℃～20℃、2 000r／min離心20min，離心后，管內(nèi)可分為4層：上層是血漿、血液稀釋液及絕大部分的血小板，下層為紅細胞及粒細胞，中層為細胞分層液，分層液和血漿交界部位渾濁的灰白色層即為外周血單個核細胞（主要是淋巴細胞）；④用毛細管輕輕插入灰白色層，沿管壁輕輕吸出灰白色的單個核細胞，盛入另一離心管，加RPMI1640 維持液重懸；⑤將所得到的外周血單個核細胞懸液用5倍體積的RPMI－1640 洗滌2 次，依次在18℃～25℃環(huán)境下以2 000r／min、1 500r／min 離心10 min，去掉大部分混雜的血小板。⑥用完全RPMI－1640（含100mL／L胎牛血清的RPMI－1640）重懸洗滌后的外周血單核細胞，然后接種至培養(yǎng)瓶中，貼壁2h后，取非貼壁細胞（97%以上為T 淋巴細胞），1 000r／min離心10min，重懸于完全RPMI－1640；⑦用完全RPMI－1640定容細胞，計數(shù)細胞后再調(diào)整細胞至1×106／mL濃度；⑧取2滴細胞懸液加1滴20g／L臺盼藍染液，3min～5min后取樣作濕片高倍鏡檢?；罴毎恢?，死亡的細胞染成藍色。計數(shù)200 個細胞，計算活細胞百分率，要求活性在95%以上，備用。⑨將分離得到的9只小鼠的外周血T 淋巴細胞合并用于試驗。

1.2.4 脾臟T 淋巴細胞懸液的制備 ①拉頸處死經(jīng)無菌摘除眼球采血后的小鼠，置700 mL／L 乙醇中浸泡5min，取出后用無菌生理鹽水擦洗，無菌棉球擦干；②將小鼠后右側(cè)臥位固定于解剖板上，消毒左側(cè)背腹交界處皮膚，在超凈工作臺上無菌取出小鼠脾臟，置于盛有Hank＇s液的平皿中；剔除脾臟表面脂肪及結(jié)締組織，用含抗生素的Hank＇s液洗凈表面血跡后，將脾臟剪成小塊，繼續(xù)用含抗生素的Hanks液沖洗至清亮；③將脾臟小塊置于200目濾網(wǎng)上，用滅菌注射器針芯輕輕將其捻碎，同時用RPMI－1640液沖洗，使單個細胞經(jīng)網(wǎng)進入溶液中，收集網(wǎng)下含脾細胞的沖洗液，注入無菌離心管中，1 500 r／min離心10min，洗滌一次并重懸；④取10mL圓底帶蓋離心管，預(yù)先加好6mL 淋巴細胞分離液，然后緩緩沿管壁將上述脾臟細胞懸液4mL 疊加到分離液上，2 000r／min水平離心20 min；⑤吸取第2層云霧狀的低密度細胞，轉(zhuǎn)移入另一離心管中，用Hank＇s液重懸，在1 500r／min離心10min條件下洗滌兩次。⑥去上清后加入預(yù)冷的8.3g／L Tris－NH4Cl裂解紅細胞1min，重復(fù)裂解1次，再用1640液洗2次～3 次，棄上清，混勻。⑦經(jīng)20g／L 臺盼藍染色，檢查死亡細胞數(shù)少于5%，再用含100mL／L胎牛血清的RPMI－1640完全培養(yǎng)液（含100 U／mL青霉素，100 U／mL 鏈霉素）將脾細胞稀釋為6×106個／mL的細胞懸液。⑧將分離得到的9只小鼠的脾臟T 淋巴細胞合并用于試驗。

1.2.5 紅細胞懸液的制備 從上述淋巴細胞分層液離心后的離心管中，小心的吸取沉底的紅細胞100μL，加入到2 mL Hanks液中洗滌3 次，離心（2 000r／min）5min，棄上清，計數(shù)測活性，光學顯微鏡下觀察證實不含白細胞和血小板后，再用完全RPMI－1640調(diào)整紅細胞懸液的濃度為1×108／mL。

1.2.6 T 淋巴細胞增殖活性的測定 ①于96孔平底培養(yǎng)板中各孔中加入100μL 相應(yīng)的細胞與相應(yīng)劑量的藥物（PHA、APS），對照組加培養(yǎng)液，每孔做3個重復(fù)孔；外周血或脾臟T 淋巴細胞體系中加入紅細胞的數(shù)量為紅細胞∶T 淋巴細胞＝100∶1［8－9］；脾臟T 淋巴細胞體系中PHA 的終濃度為1g／mL、外周血T 淋巴細胞為1.25g／mL，APS的終濃度分別為：高濃度200g／mL、中濃度50g／mL、低濃度10g／mL 和0g／mL；各孔用RPMI 1640完全培養(yǎng)液補充總體積至250μL。②將培養(yǎng)板放入37℃、體積分數(shù)為5%的CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48h，于終止培養(yǎng)前4h，輕輕從各孔中吸出100μL上清后，每孔加入10mg／mL MTT 溶液10μL，繼續(xù)培養(yǎng)4h，培養(yǎng)結(jié)束后仔細棄去上清，每孔加酸化異丙醇100 μL，充分振蕩吹打后靜置20 min，用檢測波長595 nm 進行檢測，用OD 值表示結(jié)果。

2 結(jié)果

2.1 外周血T 淋巴細胞增殖的檢測結(jié)果比較

不同細胞培養(yǎng)體系、相同APS作用水平下外周血T 淋巴細胞增殖結(jié)果的統(tǒng)計分析顯示：在APS為0水平時，除A 體系外，其余各體系中T 淋巴細胞均有不同程度增殖；其中，B－0組增殖水平最高，而C－0與D－0組間差異不顯著（P＞0.05）。在APS分別為低、中、高3個不同水平時，B、C 和D 體系中相應(yīng)各組T 淋巴細胞增殖均分別顯著高于A 體系（P＜0.05）。其中，APS低水平時，C－1組與D－1組組間差異不顯著（P＞0.05）而均顯著高于B－1 組（P＜0.05），以D－1組測定值最高；APS中水平時，C－2組與D－2組組間差異不顯著（P＞0.05）而均顯著高于B－2組（P＜0.05），以D－2 組測定值最高；APS高水平時，D－3顯著高于B－3組和C－3組（P＜0.05），而B－3 組 與C－3 組 組 間 差 異 不 顯 著（P＜0.05）（表2）。

相同細胞培養(yǎng)體系、不同APS作用水平下外周血T 淋巴細胞增殖結(jié)果的統(tǒng)計分析顯示：在A 體系中，各組間T 淋巴細胞的增殖無統(tǒng)計學差異（P＞0.05），但A－0組測定值最低；在B體系中，APS低、中、高水平組間T 淋巴細胞的增殖差異不顯著（P＞0.05），但均顯著低于B－0組（P＜0.05），以B－3組測定值最低；在C體系中，APS低、中水平組T 淋巴細胞的增殖組間差異不顯著（P＞0.05）而顯著高于C－0組（P＜0.05），APS高水平組與C－0 組差異不顯著（P＞0.05），以C－2 組測定值最高；在D 體系中，APS 中水平組T 淋巴細胞的增殖顯著高于D－0組、D－1組和D－3組（P＜0.05），D－0組、D－1組與D－3組組間差異不顯著（P＞0.05），以D－2組測定值最高（表2、圖2）。結(jié)果顯示，APS不能刺激體外培養(yǎng)的外周血T 淋巴細胞增殖或作用微弱；PHA 和紅細胞均能刺激體外培養(yǎng)的外周血T 淋巴細胞增殖，且PHA 的作用顯著高于紅細胞；APS 與PHA 共同作用于體外培養(yǎng)的外周血T 淋巴細胞時可抑制其增殖，而與紅細胞共同作用時可促進其增殖；紅細胞與PHA 共同作用于體外培養(yǎng)的外周血T 淋巴細胞時可促進其增殖；APS 的作用不呈濃度依賴性，以50μg／mL劑量作用最強。

2.2 脾臟T 淋巴細胞增殖的檢測結(jié)果比較

不同細胞培養(yǎng)體系、相同APS作用水平下脾臟T 淋巴細胞增殖結(jié)果的統(tǒng)計分析顯示：在APS為0水平時，B－0組、C－0組和D－0組T 淋巴細胞增殖均顯著高于A－0組（P＜0.05），且B－0組顯著高于C－0組和D－0組（P＜0.05），而C－0與D－0組間差異不顯著（P＞0.05），但D－0組測定值高于C－0組。在APS分別為低、中和高三個不同水平時，B、C 和D體系中相應(yīng)各組T 淋巴細胞增殖均分別顯著高于A 體系（P＜0.05）。其中，APS為低水平時，C－1顯著高于B－1和D－1（P＜0.05），B－1和D－1組間差異不顯著（P＞0.05）；APS為中水平時，C－2顯著高于B－2組和D－2組（P＜0.05），而B－2組和D－2組組間差異不顯著（P＞0.05）；APS為高水平時，C－3組顯著高于B－3組和D－3組（P＜0.05），而B－3組與和D－3組組間差異不顯著（P＜0.05）（表3、圖3）。

相同細胞培養(yǎng)體系、不同APS作用水平下脾臟T 淋巴細胞增殖結(jié)果的統(tǒng)計分析顯示：在A 體系中，各組間T 淋巴細胞的增殖無統(tǒng)計學差異（P＞0.05）；在B 體系中，APS低、中和高水平組間T 淋巴細胞的增殖差異不顯著（P＞0.05），但均顯著低于APS為0的B－0組（P＜0.05），以APS低劑量組測定值最高；在C體系中，APS低、中水平組T 淋巴細胞的增殖顯著高于C－0組（P＜0.05），而APS高劑量水平組與C－0組差異不顯著（P＞0.05），APS低、中、高水平組組間差異不顯著（P＞0.05），但以APS中劑量組測定值最高；在D 體系中，APS 低劑量組脾臟T 淋巴細胞的增殖與D－0組差異不顯著（P＞0.05），中劑量顯著高于D－0組（P＜0.05），低劑量組顯著低于D－0組（P＜0.05），而APS低、中、高水平組組間差異顯著（P＜0.05），以D－2組測定值最高（表3）。結(jié)果表明，APS、紅細胞和PHA 對體外培養(yǎng)脾臟和外周血T 淋巴細胞的作用呈現(xiàn)一致的效應(yīng)。

表2 不同細胞培養(yǎng)體系外周血T 淋巴細胞增殖測定值Table 2 The detection value of peripheral blood T lymphocyte proliferation in different cell culture systems

表3 不同細胞培養(yǎng)體系中脾臟T 淋巴細胞增殖測定值Table 3 The detection value of splenic T lymocyte proliferation in different cell culture systems

3 討論

血液循環(huán)系統(tǒng)與淋巴系統(tǒng)之間不僅在組織學上關(guān)系密切，在功能上也是相輔相成的。淋巴細胞在中樞淋巴器官發(fā)育成熟后，經(jīng)血流遷移到外周血淋巴器官發(fā)揮各種生物學功能，在遷移過程中淋巴細胞會與紅細胞不斷接觸，紅細胞上的免疫活性分子就有可能對其增殖轉(zhuǎn)化產(chǎn)生作用。脾臟既是機體最大的外周免疫器官又是機體血庫，它給淋巴細胞與紅細胞之間的相互作用提供了有利的場所。血液中紅細胞的數(shù)量與其他各種血細胞相比占絕對優(yōu)勢，這與紅細胞功能有關(guān)。紅細胞免疫研究發(fā)現(xiàn)，紅細胞具有清除血液中免疫復(fù)合物的作用，參與這一功能的紅細胞表面分子是C3b受體（CR1）。對紅細胞免疫的進一步研究發(fā)現(xiàn)紅細胞表面存在有CD2分子的配體（CD58、CD59），紅細胞內(nèi)含有NK 細胞刺激因子，這是紅細胞體外培養(yǎng)體系中能夠刺激T 淋巴細胞、NK 細胞的分子基礎(chǔ)，但至今國內(nèi)研究還對紅細胞以何種方式激活淋巴細胞并不清楚，也缺乏相關(guān)的研究報道。直到查占山等［8］報道紅細胞細胞CD35和血漿補體活性對提高淋巴細胞免疫活性有意義，張佩軍等［9］也報道犬紅細胞培養(yǎng)上清液對犬淋巴細胞的增殖轉(zhuǎn)化有明顯的促進作用。

結(jié)合前人的研究，本試驗選擇了脾臟和外周血兩個相關(guān)的淋巴細胞增殖反應(yīng)指標進行研究。研究中發(fā)現(xiàn)，紅細胞、PHA 單獨作用于T 淋巴細胞或者共同作用均能刺激T 淋巴細胞的增殖活性，但二者無協(xié)同作用，這些因素能使T 細胞對刺激的敏感性增強，從而使OD 值變化急劇，表明體外培養(yǎng)48h，紅細胞有類似于PHA 的功效，它能促進脾臟T 淋巴細胞和外周血T 淋巴細胞的增殖活性。查占山等［8］研究了健康成人紅細胞CD35在滅活腹水癌細胞S180激活淋巴細胞免疫反應(yīng)中的作用，在單抗阻斷紅細胞CD35或EDTA 破壞補體后，T 淋巴細胞CD25的表達顯著降低，表明紅細胞CD35和血漿補體對抗原激活淋巴細胞免疫反應(yīng)起著重要的調(diào)控作用，本試驗T 淋巴細胞體外培養(yǎng)體系中不存在有致病原（抗原）或抗原抗體復(fù)合物，因此紅細胞上不會粘附有CD35－C3b復(fù)合物，說明紅細胞促進T 淋巴細胞的增殖存在有多種機制，可能紅細胞CD58、CD59與淋巴細胞CD2的結(jié)合促進了淋巴細胞在增殖，并且這種結(jié)合不需要CD35粘附免疫復(fù)合物的介導(dǎo)。

同時試驗中發(fā)現(xiàn)APS的添加會影響各體系中的T 淋巴細胞的增殖活性，APS作用于無紅細胞試驗體系時，APS 不能刺激體外培養(yǎng)的外周血、脾臟T 淋巴細胞增值或作用微弱；在PHA 激活組，APS不僅不能夠促進體外培養(yǎng)T 淋巴細胞增殖活化，而且還抑制PHA 誘導(dǎo)的T 淋巴細胞的增殖活性?？紫榉宓葘PS 的免疫調(diào)節(jié)作用進行了綜述：APS均可降低脾臟T 細胞對ConA 和PHA 的應(yīng)答反應(yīng)，其作用隨濃度增大而加強，這說明APS對T 細胞的功能有抑制作用［10］，本試驗結(jié)果與其一致。但胡庭俊等報道，APS能使小鼠脾淋巴細胞PKC（蛋白激酶）活性明顯升高，可增加PHA 誘導(dǎo)的小鼠體內(nèi)淋巴細胞的轉(zhuǎn)化率及小鼠外周淋巴細胞酸性非特異性酯酶（ANAE）活性細胞的陽性率［11］，張華玉等［12］通過給7 日齡正常雛雞注射APS 進行研究，發(fā)現(xiàn)APS注射液組淋巴細胞數(shù)量及ANAE 染色陽性淋巴細胞的百分率顯著增高，提示APS注射液對雛雞外周血液中的淋巴細胞數(shù)量和T 淋巴細胞的百分率有明顯的增進作用。說明APS必須經(jīng)過體內(nèi)的外代謝環(huán)節(jié)才能參與淋巴細胞的分化與成熟。

APS和紅細胞共同作用于本試驗體系時，在一定濃度范圍內(nèi)APS可協(xié)同紅細胞促進T 淋巴細胞的增殖活性，且對PHA 激活T 淋巴細胞的促進作用最為明顯，在中劑量水平（50μg／mL）效果最佳，在脾臟和外周T 淋巴細胞的試驗體系中得到一致的效果。李宏全等［13］研究證實，人工感染傳染性法氏囊病毒（IBDV）雛雞紅細胞免疫粘附功能顯著下降，肌肉注射APS可顯著恢復(fù)雛雞紅細胞免疫功能并促進免疫復(fù)合物的清除，結(jié)合本試驗的結(jié)果，提示APS有可能通過增強紅細胞與T 淋巴細胞的黏附而促進淋巴細胞的增殖。APS 作為一種傳統(tǒng)的免疫調(diào)節(jié)藥物，它影響了紅細胞對淋巴細胞的調(diào)節(jié)作用，使紅細胞對淋巴細胞的調(diào)節(jié)功能趨于緩和，而且紅細胞的免疫調(diào)節(jié)作用隨著APS濃度的變化而變化，中濃度時效果最好。APS與紅細胞的這種協(xié)同作用，對外周血和脾臟淋巴細胞增殖作用的效果一致，由此得出結(jié)論：在體外試驗中，在同一種屬內(nèi)，紅細胞對外周血和脾臟的T 淋巴細胞增殖的免疫效應(yīng)有刺激作用，紅細胞能夠使淋巴細胞對外援刺激的敏感性增強。同時本試驗證明了APS能夠協(xié)助紅細胞對淋巴細胞進行免疫調(diào)控，兩者共同作用，引起淋巴細胞數(shù)目的增加和增殖功能的增強，從而促進細胞免疫功能，但是APS 單獨做刺激或者與PHA 共同刺激時，不能促進T 淋巴細胞的增殖，故此推測APS可以通過調(diào)節(jié)紅細胞的免疫功能間接的促進了T 淋巴細胞的增殖活性。

綜上所述，本試驗研究結(jié)果表明小鼠紅細胞、PHA 單獨作用對T 淋巴細胞的增殖均有顯著的促進作用，且紅細胞對PHA 激活的T 淋巴細胞的增殖也有促進作用，但是二者沒有明顯的協(xié)同促進作用；黃芪多糖不能夠促進體外培養(yǎng)T 淋巴細胞增殖活化，甚至還抑制PHA 誘導(dǎo)的T 淋巴細胞的增殖活性；黃芪多糖能夠協(xié)助紅細胞對淋巴細胞的免疫調(diào)控功能，雙方共同作用，引起淋巴細胞數(shù)目的增加和增殖功能的增強從而促進細胞免疫功能。

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