梁 冰,方 潔
(河南中醫(yī)學(xué)院 第一附屬醫(yī)院 麻醉科,河南 鄭州450000)
非致命性心梗導(dǎo)致的心臟功能受損是臨床治療中一個(gè)最大的難題,其病理學(xué)機(jī)制主要是缺血/再灌注(IR)造成的心肌損傷。IR 可通過誘導(dǎo)心肌細(xì)胞凋亡而致細(xì)胞死亡[1]。缺氧誘導(dǎo)因子1(hypoxia-inducible factor 1,HIF-1)是臨界氧敏感性轉(zhuǎn)錄調(diào)控的關(guān)鍵因子,被認(rèn)為是IR 誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡過程中的關(guān)鍵調(diào)控因子,可有效保護(hù)IR 對(duì)心肌細(xì)胞的損傷[2]。異氟烷是臨床中最常應(yīng)用的全身麻醉藥。體內(nèi)外研究均報(bào)道異氟烷預(yù)處理對(duì)心肌IR 損傷具有保護(hù)作用[3]。異氟烷可通過上調(diào)HIF-1α的表達(dá),發(fā)揮對(duì)缺血性腦損傷[4]和血管IR 損傷[5]的保護(hù)作用,但異氟烷是否通過HIF-1α 通路發(fā)揮對(duì)心肌細(xì)胞的保護(hù)作用,目前鮮見報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)以缺氧/復(fù)氧(AR)人心肌細(xì)胞作為IR 損傷心肌的體外模型,研究異氟烷對(duì)心肌細(xì)胞AR 損傷和HIF-1α表達(dá)的影響。
人心肌細(xì)胞系HCM(ATCC);DMEM 培養(yǎng)基(Gibco 公司);胎牛血清FBS(Hyclone 公司);CCK-8試劑盒、BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒(碧云天生物技術(shù)研究所);LDH活性檢測(cè)試劑盒(南京建成生物工程研究所);Annexin V-FITC/PI 細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒(南京凱基生物科技發(fā)展有限公司);RNA 提取試劑盒與lipofectamine RNAiMAX 轉(zhuǎn)染試劑(Invitrogen公司);反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Takara 公司);HIF-1α siRNA和非特異性siRNA(Qiagen 公司);兔抗HIF-1α 和兔抗β-actin 抗體(Santa Cruz 公司);辣根過氧化物標(biāo)記的羊抗兔二抗(Cell Signaling 公司)。
參照Liu 等[6]的方法制備缺氧培養(yǎng)液。缺氧處理前先將細(xì)胞培養(yǎng)液換為缺氧培養(yǎng)液,并將細(xì)胞置于含5% CO2和95% N2的無氧培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3 h,然后將細(xì)胞培養(yǎng)液換為復(fù)氧培養(yǎng)液,并將細(xì)胞置于37℃、5% O2和95%空氣的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3 h。
將細(xì)胞分為對(duì)照組(con)和AR 組及異氟烷處理組。AR 組細(xì)胞經(jīng)3 h 缺氧和3 h 復(fù)氧處理;異氟烷處理組細(xì)胞分別經(jīng)不同濃度異氟烷(0.5%、1%、1.5%和2%)預(yù)處理20 min后,進(jìn)行3 h 缺氧和3 h復(fù)氧處理。收集細(xì)胞進(jìn)行相關(guān)實(shí)驗(yàn)。
將心肌細(xì)胞HCM 培養(yǎng)于6孔板中,待細(xì)胞匯合至80%左右時(shí),根據(jù)轉(zhuǎn)染試劑說明書轉(zhuǎn)染HIF-1α siRNA(siRNA)或非特異性siRNA(scramble)。將轉(zhuǎn)染細(xì)胞用2%異氟烷預(yù)處理3 h后,進(jìn)行3 h 缺氧和3 h 復(fù)氧處理,收集細(xì)胞,進(jìn)行相關(guān)試驗(yàn)。HIF-1α siRNA 正義鏈:5'-GAAGAACUAUGAACAUAAATT-3';反義鏈:5'-UUUAUGUUCAUAGUUCUUCCT-3'。
用CCK-8 試劑盒檢測(cè)HCM 細(xì)胞活力。將HCM 細(xì)胞以1×105個(gè)/mL 接種于96孔板中,同1.3 進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng),每孔加入20 μL CCK-8 溶液,孵育1 h后測(cè)定450 nm 處吸光度A值。
用LDH活性檢測(cè)試劑盒檢測(cè)細(xì)胞培養(yǎng)上清中LDH活性,具體操作步驟參照試劑盒說明書。
按細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒說明書檢測(cè)細(xì)胞凋亡。同1.3 培養(yǎng)并收集細(xì)胞,用冷PBS 清洗細(xì)胞后,加入500 μL緩沖液調(diào)整細(xì)胞至1×106個(gè)/mL,加入5 μL Annexin V-FITC室溫避光孵育15 min后,立即加入5 μL PI室溫避光繼續(xù)孵育5 min,流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測(cè)。
總RNA 提取試劑盒提取HCM 細(xì)胞RNA,檢測(cè)RNA濃度和純度后,進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄合成cDNA(n =5)。HIF-1α 上游引物序列:5'-CCAGCAGACTCAAATACA AGAACC-3';下游引物序列:5'-TGTATGTGGGTAGGA GATGGAGAT-3'。RT-PCR 反應(yīng)體系20 μL(2 μL cDNA;上下游引物各0.5 μL;ddH2O217 μL)。以GAPDH為內(nèi)參(上游引物序列:5'-GCACCGTCAAGGCTGAG AAC-3';下游引物序列:5'-ATGGTGGTGAAGACGCC AGT-3')。PCR 產(chǎn)物用2.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。
提取細(xì)胞總蛋白并用BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒測(cè)定蛋白濃度。上樣20 μg 進(jìn)行凝膠電泳(8%分離膠和5%濃縮膠)并轉(zhuǎn)膜,加入兔抗HIF-1α(1∶1 000)4℃孵育過夜,加入二抗(1∶2 000)孵育1 h。DAB 顯色,暗室曝光,分析吸光度值(n =5)。以β-actin 為內(nèi)參。
采用SPSS 19.0分析軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,結(jié)果以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,組間比較采用t 檢驗(yàn)。
AR 組心肌細(xì)胞活力顯著低于con組(P<0.05)。異氟烷可劑量依賴性的誘導(dǎo)細(xì)胞活力增加(P<0.05)。與con 組相比,AR 組心肌細(xì)胞LDH活性顯著增加(P<0.05),不同濃度異氟烷可顯著抑制由AR 損傷導(dǎo)致的LDH活性升高(P<0.05)(圖1)。
圖1 不同濃度異氟烷對(duì)缺氧/復(fù)氧損傷心肌細(xì)胞活力和乳酸脫氫酶(LDH)活性的影響Fig1 Effects of different concentrations of isoflurane on cell viability and LDH activity in AR-injured HCM cells(n=5)
圖2 不同濃度異氟烷對(duì)缺氧/復(fù)氧損傷心肌細(xì)胞凋亡的影響Fig2 Effects of different concentrations of isoflurane on cell apoptosis in AR-injured HCM cells(n=5)
AR 組心肌細(xì)胞凋亡率顯著高于con組(P<0.05)。異氟烷可對(duì)AR 誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡產(chǎn)生劑量依賴性抑制作用,其中1%、1.5%和2%異氟烷組細(xì)胞凋亡率顯著低于AR組(P<0.05)(圖2)。
AR 組HIF-1α mRNA 和蛋白表達(dá)水平均顯著高于con組(P<0.05)。異氟烷可上調(diào)AR 損傷心肌細(xì)胞中HIF-1α mRNA 和蛋白表達(dá)水平,其中1.5%和2%的異氟烷與AR 組之間具有明顯差異(P<0.05)(圖3)。
圖3 不同濃度異氟烷對(duì)缺氧/復(fù)氧損傷心肌細(xì)胞低氧誘導(dǎo)因子(HIF)-1α表達(dá)的影響Fig3 Effects of different concentrations of isoflurane on the expression of HIF-1α in AR-injured HCM cells(n=5)
與AR 組和scramble 組相比,siRNA轉(zhuǎn)染組HIF-1α mRNA 和蛋白表達(dá)水平均顯著降低(P<0.05)。在siRNA 和2%異氟烷的共同作用下,心肌細(xì)胞HIF-1α mRNA 和蛋白表達(dá)水平均顯著低于AR 組和scramble組(P<0.05)(圖4)。
AR 組和scramble 組在2%異氟烷的作用下,心肌細(xì)胞活力和LDH活性均與con 組具有顯著差異。siRNA轉(zhuǎn)染組心肌細(xì)胞活力(48.97%±7.39%)顯著低于con組、AR 組和scramble組(P<0.05),而LDH活性顯著高于con組、AR 組和scramble組(P<0.05)(圖5)。
AR 組和scramble 組心肌細(xì)胞凋亡率均較低,與con 組無顯著差異。而siRNA轉(zhuǎn)染組心肌細(xì)胞的凋亡率顯著高于con組、AR 組和scramble組(P<0.05)(圖6)。
圖4 siRNA轉(zhuǎn)染后缺氧/復(fù)氧損傷心肌細(xì)胞中低氧誘導(dǎo)因子-1α 基因的表達(dá)Fig4 The expression of HIF-1α in AR-injured HCM cells transfected with HIF-1α siRNA
圖5 異氟烷對(duì)低氧誘導(dǎo)因子-1α siRNA轉(zhuǎn)染后缺氧/復(fù)氧心肌細(xì)胞活力和乳酸脫氫酶(LDH)活性的影響Fig5 Effects of isoflurane on cell viability and LDH activity in AR-injured HCM cells transfected with HIF-1α siRNA(n=5)
揮發(fā)性麻醉藥異氟烷可保護(hù)缺血再灌注損傷的腦、腎和肺,其機(jī)制可能是通過HIF-1α 細(xì)胞信號(hào)通路來實(shí)現(xiàn)的[7-10]。缺血再灌注可通過誘導(dǎo)心肌細(xì)胞凋亡損傷心臟的功能,而異氟烷可通過上調(diào)抗凋亡基因Bcl-2 家族和下調(diào)caspase-3 蛋白和促凋亡Bax的表達(dá)抑制缺氧復(fù)氧誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡[11]。本試驗(yàn)結(jié)果表明提高細(xì)胞活力和促進(jìn)細(xì)胞凋亡可保護(hù)AR 對(duì)心肌細(xì)胞的損傷,這種保護(hù)作用可能是通過抑制活性氧(ROS)的產(chǎn)生,線粒體通透性轉(zhuǎn)換孔(MPTP)的開放和caspase-3的激活[3]來實(shí)現(xiàn)的。乙醛脫氫酶2的磷酸化在異氟烷預(yù)處理的心肌保護(hù)作用中也具有十分重要的作用[12]。
本結(jié)果還發(fā)現(xiàn),異氟烷可顯著上調(diào)AR 損傷心肌細(xì)胞HIF-1α表達(dá)水平。應(yīng)用HIF-1α siRNA 沉默HIF-1α的表達(dá),檢測(cè)了異氟烷對(duì)AR 損傷心肌細(xì)胞的保護(hù)作用。發(fā)現(xiàn)在HIF-1α表達(dá)沉默的情況下,異氟烷對(duì)AR 損傷心肌細(xì)胞的保護(hù)作用顯著減弱甚至消失,表明HIF-1α 在異氟烷對(duì)心肌細(xì)胞保護(hù)作用中具有十分重要的作用。HIF-1α 可激活調(diào)節(jié)缺氧/缺血反應(yīng)的蛋白產(chǎn)物如紅細(xì)胞生成素、葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白1、NOS 和血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子等基因的轉(zhuǎn)錄[13]。HIF-1α 可保護(hù)心肌細(xì)胞免受缺血再灌注誘導(dǎo)的損傷,其機(jī)制主要是通過對(duì)細(xì)胞代謝從氧化磷酸化到有氧糖酵解的重編程,并降低IR 損傷過程中線粒體氧化應(yīng)激的產(chǎn)生,進(jìn)而抑制MPTP的開放,同時(shí),HIF-1α 下游效應(yīng)因子已糖激酶Ⅱ也可阻止IR損傷過程中的線粒體的功能障礙[2]。
綜上所述,本結(jié)果表明HIF-1α表達(dá)上調(diào)在異氟烷對(duì)缺氧復(fù)氧心肌細(xì)胞的保護(hù)效應(yīng)中具有十分重要的作用。
[1]Ho F,Tsang W,Kong S,et al.The critical role of caspases activation in hypoxia/reoxygenation induced apoptosis[J].Biochem Biophys Res Communi,2006,345:1131-1137.
[2]Ong SG,Lee WH,Theodorou L,et al.HIF-1 reduces ischaemia-reperfusion injury in the heart by targeting the mitochondrial permeability transition pore[J].Cardiovasc Res,2014,104:24-36.
[3]Wu W,Zhou X,Liu P,et al.Isoflurane reduces hypoxia/reoxygenation-induced apoptosis and mitochondrial permeability transition in rat primary cultured cardiocytes[J].BMC Anesthesiol, 2014, 14: 10.1186/1471-2253-1114-1117.
[4]Li QF,Xu H,Sun Y,et al.Induction of inducible nitric oxide synthase by isoflurane post-conditioning via hypoxia inducible factor-1α during tolerance against ischemic neuronal injury[J].Brain Res,2012,1451:1-9.
[5]Milner E,Harries MD,Vellimana AK,et al.Post-conditioning with isoflurane reduces SAH-induced vasospasm and microthrombosis via hypoxia-inducible factor 1 and nitric oxide synthase[J].Neurosurgery,2013,60:181-185.
[6]Liu X,Guo QL,Zhang Z,et al.Effect of emulsified isoflurane on apoptosis of anoxia-reoxygenation neonatal rat cardiomyocytes[J].Asian Pac J Trop Med,2013,6:977-981.
[7]Zhao P,Ji G,Xue H,et al.Isoflurane postconditioning improved long-term neurological outcome possibly via inhibiting the mitochondrial permeability transition pore in neonatal rats after brain hypoxia-ischemia[J].Neuroscience,2014,280:193-203.
[8]Liang Y,Li Z,Mo N,et al.Isoflurane preconditioning ameliorates renal ischemia-reperfusion injury through antiinflammatory and antiapoptotic actions in rats[J].Biol Pharm Bull,2014,37:1599-1605.
[9]Benzonana LL,Perry NJ,Watts HR,et al.Isoflurane,a commonly used volatile anesthetic,enhances renal cancer growth and malignant potential via the hypoxia-inducible factor cellular signaling pathway in vitro[J].Anesthesiology,2013,119:593-605.
[10]Qin Z,Lv E,Zhan L,et al.Intravenous pretreatment with emulsified isoflurane preconditioning protects kidneys against ischemia/reperfusion injury in rats[J].BMC Anesthesiol,2014,14:28.
[11]Liu X,Guo QL,Zhang Z,et al.Effect of emulsified isoflurane on apoptosis of anoxia-reoxygenation neonatal rat cardiomyocytes[J].Asian Pac J Tropical Med,2013,6:977-981.
[12]Lang XE,Wang X,Zhang KR,et al.Isoflurane preconditioning confers cardioprotection by activation of ALDH2[J].PLoS One, 2013, 8: 10.1371/journal.pone.0052469.
[13]Semenza GL.Signal transduction to hypoxia-inducible factor 1[J].Biochem Pharmacol,2002,64:993-998.