摘 要:該文以新疆菊芋為研究對象,以熱水浸提法對菊芋中的菊糖進(jìn)行提取,并以Ca(OH)2—CO2法對浸提液進(jìn)行除雜。在熱水浸提試驗(yàn)中,以浸提溫度、時間和料水比作為因素進(jìn)行了單因素實(shí)驗(yàn)并在其基礎(chǔ)上進(jìn)行了正交試驗(yàn),結(jié)果分析表明熱水浸提的最佳工藝參數(shù)為:浸提溫度90 ℃、時間50 min、料水比1:30,在此條件下菊糖得率為最高達(dá)到77.99%。在除雜試驗(yàn)中,以Ca(OH)2溶液調(diào)節(jié)的pH值、CO2回調(diào)的pH值以及澄清溫度作為因素進(jìn)行了單因素實(shí)驗(yàn)并在其基礎(chǔ)上進(jìn)行了正交試驗(yàn),結(jié)果分析表明除雜的最佳工藝參數(shù)為:Ca(OH)2溶液調(diào)節(jié)pH為10.0,CO2回調(diào)pH至6.0,澄清溫度為80 ℃,澄清時間15 min,在此條件下菊糖的得率為71.21%、透光率為87.36%。
關(guān)鍵詞:菊芋 菊糖 熱水浸提 除雜
中圖分類號:TQ461 文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A 文章編號:1674-098X(2015)04(b)-0019-04
菊芋(Jerusalem artichoke),又名洋姜,是菊科多年生草本植物,耐貧瘠和干旱,對氣候和土壤條件要求不高,適應(yīng)性很強(qiáng),廣泛種植于我國很多省區(qū),一次種植收獲,畝產(chǎn)可達(dá)3000~5000 kg,是一種急待開發(fā)的半野生資源[1],菊芋塊莖中含多種營養(yǎng)物質(zhì),經(jīng)濟(jì)價值很高。鮮菊芋的菊糖含量可占濕重的15%~20%、干重的80%左右, 是加工生產(chǎn)菊糖及其制品的良好原料。目前,菊芋被國內(nèi)外高度重視并開發(fā)其功能性食品添加劑——菊糖、蛋白質(zhì)、果膠、有機(jī)酸、纖維素及其他成分[2]。菊糖(Inulin),又名菊粉、土木香粉,是由D-果糖經(jīng)β-(1→2)糖苷鍵連接而成的鏈狀多糖, 末端常含有一個葡萄糖基。菊粉的分子式表示為GFn,其中G代表終端葡萄糖單位,F(xiàn)代表果糖分子,n代表果糖的單位數(shù)[3]。菊粉的聚合度為2-60,平均分子量在5500左右。
菊芋生長適應(yīng)性強(qiáng),宜種植于十年九旱多大風(fēng)的山區(qū)、丘陵地帶和土壤瘠薄,氣候溫涼地域;另外,種植菊芋可固沙、防沙塵暴,改善生態(tài)環(huán)境[4]。生產(chǎn)菊粉和低聚果糖的過程中,不產(chǎn)生有害氣體和廢酸、廢渣等,對環(huán)境不會造成污染。菊芋(洋姜、地姜)是目前的蔬菜中品種優(yōu)異,具有多種保健功效的重要品種資源,是發(fā)展?fàn)I養(yǎng)、保健、療效食品的理想原料,它的開發(fā)利用有著廣闊的前景。
菊芋在我國只有零星種植,多年來加工腌菜食用,附加值低,利用量小。在內(nèi)蒙古、甘肅、新疆等地雖有幾家菊芋深加工企業(yè),但因技術(shù)落后,缺少競爭力,與歐洲同類產(chǎn)品差距很大。盡管國際市場需求旺盛,國內(nèi)產(chǎn)品卻缺少市場,甚至我國目前食品產(chǎn)業(yè)使用的高純度菊粉、高純度低聚果糖相當(dāng)程度依靠進(jìn)口,目前年使用量約有10000 t,并有迅速上升的趨勢[5]?,F(xiàn)國內(nèi)有山東奇力公司、青海威德公司、湖北潛江等地也在大力種植加工。但如能實(shí)現(xiàn)國產(chǎn)化,切實(shí)降低成本,提高技術(shù)含量,我國每年對一些高純度原料總需求量在40萬t以上。
目前, 國際上菊芋菊粉及相關(guān)產(chǎn)品的生產(chǎn)已經(jīng)成為很大的一個產(chǎn)業(yè),因?yàn)榫辗鬯饪傻玫焦呛偷途酃?,它們具有不同的保健功能[6]。我國菊粉純化多采用熱水提取、菊粉微波提取等方法,工藝方法比較粗糙,菊粉含量與品質(zhì)都不高,且多以菊苣為原料生產(chǎn),很少對以菊芋作為原料生產(chǎn)的菊粉進(jìn)行系統(tǒng)深入地研究。
本項(xiàng)目研究菊芋中菊糖的提取分離、純化方法,篩選出可操作性強(qiáng)且產(chǎn)率高、適合工業(yè)化生產(chǎn)的工藝方法,旨在為能源植物菊芋的開發(fā)利用及實(shí)現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)提供科學(xué)依據(jù),同時也為菊粉進(jìn)一步加工生產(chǎn)更高附加值的果糖和低聚果糖奠定了基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 主要材料和儀器
主要實(shí)驗(yàn)材料如下:菊芋,由新疆冠農(nóng)果茸集團(tuán)股份有限公司提供;其他試劑為國產(chǎn)分析純或色譜純。
主要實(shí)驗(yàn)儀器如下:ENK-PRO型酶標(biāo)儀,美國Bioteck公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海亞榮生化儀器公司;Ultrospec-5300型紫外分光光度儀,美國Amersham公司;真空冷凍干燥系統(tǒng),日本SHIMADZU;其余均為實(shí)驗(yàn)室常規(guī)儀器。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 菊芋中菊糖含量的測定
由于菊芋極易褐變和霉變,應(yīng)及時預(yù)處理,實(shí)際生產(chǎn)中應(yīng)將鮮菊芋快速凍干保存,使用時再進(jìn)行熱燙滅酶處理。之后加如適量水,粉碎機(jī)粉碎成勻漿,即為菊芋提取液。
(1)總糖標(biāo)曲曲線的繪制。
量取果糖對照品溶液(濃度1 mg/mL) 0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4 mL。分別置于10 mL具塞試管中,加蒸餾水補(bǔ)充至2.0 mL,加5%苯酚液1.0 mL,混勻,迅速加入濃硫酸5.0 mL,密塞搖勻,室溫放置10 min,40 ℃水浴15 min,迅速冷卻至室溫,在490 nm處測定吸光度值[7]。濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
(2)還原糖標(biāo)曲曲線的繪制。
量取果糖對照品溶液0.0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mL,加蒸餾水至2.0 mL,各加DNS試液2.0 mL,沸水浴7 min,迅速冷卻至室溫,在540 nm處測吸光度值[7]。濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
(3)菊糖含量測定。
以菊芋提取液為樣品,依據(jù)(1)和(2)的方法和標(biāo)準(zhǔn)曲線,分別測定和計算出提取液的總糖和還原糖的含量。之后根據(jù)下列公式計算出菊芋樣品中的菊糖含量。
菊糖含量%=[(C總-C還)×L×稀釋倍數(shù)/W樣]×100
式中:C總為總糖濃度;C還為還原糖濃度;L為溶液體積;W樣菊芋樣品取樣量
1.2.2 菊芋中菊糖的提取
本研究采用熱水浸提法[8]對菊糖進(jìn)行提取,研究了不同浸提溫度、不同浸提時間和不同料水比的條件下的菊糖的得率。如表1,通過單因素實(shí)驗(yàn),選取三因素三水平,按L9(33)進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn),以確定得出菊芋中菊糖提取的最佳工藝參數(shù)。
1.2.3 菊芋浸提液的除雜
取菊芋浸提液100 mL,置于60 ℃的水浴鍋中,加入15%的Ca(OH)2溶液調(diào)節(jié)pH,使蛋白質(zhì)變性,升溫,在不同溫度下澄清15 min,冷卻至室溫,再向浸提液中加沖入CO2回調(diào)pH,在相應(yīng)的澄清溫度下保溫15min,離心去雜質(zhì)和沉淀[9]。測定透光率和菊糖得率。(透光率測定:取待測液,蒸餾水作對照,于540nm處測定透光率。)
以加Ca(OH)2溶液調(diào)節(jié)的pH值、充入CO2回調(diào)pH的值和澄清溫度作為因素進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn),并在此基礎(chǔ)上進(jìn)行L9(33)正交實(shí)驗(yàn)如表2,以確定得出菊芋菊糖浸提液除雜的最佳工藝參數(shù)。
1.2.4 數(shù)據(jù)分析
所有實(shí)驗(yàn)一式三份進(jìn)行,數(shù)據(jù)值為平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差(SD)。所有數(shù)據(jù)分析均采用Origin 8.0軟件。
2 結(jié)果與討論
2.1 菊糖含量的測定
由圖1得總糖含量的標(biāo)準(zhǔn)曲線為y=8.3375x-0.0068(R2=0.9996),由圖2得還原糖的標(biāo)準(zhǔn)曲線為y=6.8821x-0.0164(R2=0.9986)。如表3,經(jīng)過測定計算出新鮮菊芋樣品中菊糖的含量為18.74%。
2.2 菊糖熱水浸提工藝優(yōu)化
2.2.1 提取時間的選擇
在熱浸提溫度80 ℃,料水比1:20的條件下,分別浸提20、30、40、50和60 min。由圖3可知,菊糖得率隨著時間的延長而上升,在50 min時提取率達(dá)到最大,60 min時略微減少,經(jīng)分析應(yīng)該是長時間高溫使菊糖分解導(dǎo)致的[10],并且再延長加熱時間提取率也不在增加,因此熱浸提時間選擇50min左右為宜。
2.2.2 提取溫度的選擇
在浸提時間50 min,料液比1:20的條件下,浸提溫度分別為60、70、80、90和100 ℃。由圖4可知,菊糖得率隨著溫度升高而上升,80 ℃之后增加趨勢變緩,考慮到節(jié)約能耗,提高效率,因此浸提溫度選擇80℃左右為宜。
2.2.3 水料比的選擇
在浸提溫度80 ℃、時間50 min的條件下,分別按照料水比1:15、1:20、1:25、1:25和1:30進(jìn)行提取。如圖3所示,菊糖得率隨著料水比的增大呈上升趨勢,料水比越大,菊芋細(xì)胞兩側(cè)的濃度差越大[11],對菊糖溶出越有利,料水比1:25到1:30,增幅最大,但是過高的水料比會為后續(xù)的提取純化帶了不變,對水需求量也較大,綜合考慮節(jié)約能耗,提高效率,選取料水比1:25左右為宜。
2.2.4 提取次數(shù)的選擇
在浸提溫度80 ℃、時間50 min、料水比1:25的條件下,重復(fù)浸提三次。由圖6可知,提取次數(shù)越多,菊糖得率越大,兩次提取之后基本已將絕大部分菊糖提取,因此提取以2次為宜,故在正交設(shè)計中不考慮這一因素。企業(yè)可根據(jù)能耗、生產(chǎn)效率和成本選擇次數(shù)。
2.2.5 熱浸提正交試驗(yàn)結(jié)果
由表3和表4可知,以菊糖的得率為指標(biāo),浸提溫度90 ℃、時間50 min、最佳料水比1:30,提取次數(shù)兩次,菊糖得率在A3B3C2(1:30、90℃、50 min)條件下可達(dá)77.99%。根據(jù)極差R的大小,不同因素對于得率影響不同,B>A>C。即提取溫度影響最大,影響顯著F0.05 2.3 菊糖除雜工藝優(yōu)化 2.3.1 澄清溫度對除雜效果的影響 向浸提液中加入Ca(OH)2溶液調(diào)節(jié)pH至10.0,充入CO2回調(diào)pH至7.0,澄清溫度分別50、60、70、80、90 ℃,澄清時間15 min,離心去沉淀雜質(zhì),測透光率和菊糖得率。結(jié)果如圖7所示,隨著澄清溫度上升,透光率先上升至80 ℃之后時基本不變,菊糖得率在80 ℃時最高之后有所降低,應(yīng)該是溫度過高使得沉淀降解導(dǎo)致[9],因此綜合考慮選擇澄清溫度80℃為宜。 2.1.2 Ca(OH)2調(diào)節(jié)pH值對除雜效果的影響 分別向浸提液中加入Ca(OH)2調(diào)節(jié)pH至8.0、9.0、10.0、11.0、12.0,CO2回調(diào)pH至7.0,澄清溫度80℃,澄清時間15min,離心去沉淀雜質(zhì),測透光率和菊糖得率。由圖7可知,隨著Ca(OH)2調(diào)節(jié)pH值的上升,透光率先上升至pH為11.0時下降,菊糖得率在pH為10.0時最高之后下降較快,經(jīng)分析應(yīng)該是菊糖在強(qiáng)堿條件會受到破壞,因此選取Ca(OH)2調(diào)節(jié)pH至10.0為宜。 2.3.3 CO2回調(diào)pH值對除雜效果的影響 向浸提液中加入Ca(OH)2調(diào)節(jié)pH至10.0,充入CO2回調(diào)pH至5.0、6.0、7.0、8.0、9.0,澄清溫度80℃,澄清時間15min,離心去沉淀雜質(zhì),測定計算透光率和菊糖得率。結(jié)果如圖9所示,隨著CO2回調(diào)pH值的增大,在pH為7.0時透光率和菊糖得率最高,之后開始下降,原因是有多余的Ca(OH)2和雜質(zhì)沒有沉淀下來,導(dǎo)致透光率和菊糖得率下降,因此CO2回調(diào)pH值選取7.0為宜。 2.3.4 Ca(OH)2除雜正交實(shí)驗(yàn) 由表6、7、8可知,Ca(OH)2調(diào)節(jié)后的pH值對透光率和菊糖得率有顯著影響,其余兩因素則均無顯著影響。同時Ca(OH)2和CO2調(diào)節(jié)pH值對透光率的影響比對菊糖得率的影響大,說明作用僅是除雜,對菊糖含量影響較小。各因素對透光率影響順序?yàn)锽>C>A,根據(jù)k值確定最佳除雜條件為A3B1C1,即加Ca(OH)2調(diào)節(jié)pH為10.0,CO2回調(diào)pH至6.0,澄清溫度為80 ℃,澄清時間15 min,浸提液透光率為87.36%,菊糖得率為71.21%。 3 結(jié)論 在本研究中,以熱水浸提法對菊芋中的菊糖進(jìn)行提取,并以Ca(OH)2—CO2法對浸提液進(jìn)行除雜。熱水浸提試驗(yàn)結(jié)果分析表明熱水浸提的最佳工藝參數(shù)為:浸提溫度90 ℃、時間50 min、料水比1:30,在此條件下菊糖得率為最高達(dá)到77.99%。除雜試驗(yàn)結(jié)果分析表明除雜的最佳工藝參數(shù)為:Ca(OH)2溶液調(diào)節(jié)pH為10.0,CO2回調(diào)pH至6.0,澄清溫度為80 ℃,澄清時間15 min,在此條件下菊糖的得率為71.21%、透光率為87.36%。 以上研究一方面對于工業(yè)生產(chǎn)菊糖提供了一定的理論依據(jù),另一方面為菊糖產(chǎn)品的開發(fā)和利用奠定基礎(chǔ)。而由于菊糖熱水浸提提取方法前期處理步驟較多生產(chǎn)周期較長,水資源和化工原料資源消耗較大,考慮是否可以適當(dāng)結(jié)合多套膜設(shè)備或者全膜法,進(jìn)而提高提取率和節(jié)約資源利用率,這些問題還有待進(jìn)一步研究。 參考文獻(xiàn) [1]饒志娟,鄭建仙,賈里祥.功能性食品基料——菊粉的研究進(jìn)展[J].中國甜菜糖業(yè), 2002(4):26-30. [2]熊善柏,趙山,李云捷,等.菊糖的提取與精制[J].冷飲與速凍食品工業(yè), 2001,7(4):1-3. [3]蘇拔賢.生物化學(xué)制備技術(shù)[M].北京: 科學(xué)出版社,1996:239-241. [4]周文輝.菊糖及低果聚糖的代謝及生理特性[J].廣州食品工業(yè)科技,2004, 20(2): 155-157. [5]譚曉瓊,董全,丁紅梅.功能保健食品菊糖的研究進(jìn)展與發(fā)展前景[J].中國食物與營養(yǎng),2007(1):22-24. [6]孫艷波,顏敏茹,徐亞麥.菊糖的生理功能及其在乳制品中的應(yīng)用[J].中國乳品工業(yè),2005,33(8):43-46. [7]張明淘,顧顯紅,楊琳.菊糖的原生素作用研究進(jìn)展[J].動物營養(yǎng)學(xué)報,2003, 15(4):12-18. [8]胡蝶,鄧鋼橋,彭偉正,等.菊糖提取工藝的研究[J].湖南農(nóng)業(yè)科學(xué),2006(6): 71-72. [9]吳洪特,孫曉琴,劉端超.菊糖的提取、澄清與精制[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2007,46(l):138-140. [10]穆莎茉莉,李洪軍,劉麗娜.菊糖生理功能研究進(jìn)展[J].糧食與油脂, 2006(6):47-48. [11]史賢俊,林影,吳曉英.內(nèi)切菊糖酶的分離純化及性質(zhì)研究[J].食品科學(xué), 2004,25(5):66-69.