程振玉 宋海燕 楊英杰 劉治剛 張碩
摘要:考察了不同提取方法對北五味子[Schisandra chinensis (Turcz.) Baill]多糖提取率的影響。分別采用回流法、微波輔助法、閃式法對北五味子多糖進行提取,通過可見-分光光度法測定其含量,設(shè)計響應(yīng)面試驗對其最佳方法的工藝進行優(yōu)化。閃式法多糖提取率高于回流法和微波輔助法,其最佳工藝為料液比1∶20(m∶V),提取時間127 s、提取電壓190 V、提取溫度78 ℃,在此條件下北五味子多糖的提取率達到20.97%。不同提取方法對多糖的提取率影響較大,閃式法多糖提取率高,耗費時間短,溶劑用量少。
關(guān)鍵詞:北五味子[Schisandra chinensis (Turcz.) Baill];多糖;回流法;微波輔助法;閃式法
中圖分類號:R284.2 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2015)01-0159-05
北五味子[Schisandra chinensis (Turcz.) Baill]是五味子科植物五味子的干燥成熟果實,主產(chǎn)于吉林、遼寧、黑龍江、內(nèi)蒙古等地[1]。五味子是著名的滋補性中藥,具有收斂固澀、益氣生精、補腎寧心的功效[2,3]?,F(xiàn)代藥理研究表明,北五味子多糖是其主要活性成分之一,具有提高機體免疫力、保肝、抗氧化、抗腫瘤、抗疲勞等生理活性[4,5]。因此,研究北五味子多糖的最佳提取工藝,對新藥和功能性食品的開發(fā)具有重要的學術(shù)意義和利用價值。
北五味子多糖的傳統(tǒng)提取多采用回流法,提取時間長,通常需要數(shù)小時,且溶劑耗費量大。近年來,微波輔助法[6,7]、閃式法[8,9]等新技術(shù)已經(jīng)廣泛應(yīng)用于天然藥物的提取,這些方法具有時間短、溶劑用量小、提取率高、簡單易行等特點,但鮮見關(guān)于采用閃式法提取北五味子多糖的報道,本試驗采用上述3種方法同時進行研究,優(yōu)選北五味子多糖的最佳提取方法及其工藝條件,為工業(yè)化生產(chǎn)北五味子多糖提供參考。
1 材料與方法
1.1 材料、試劑與儀器
北五味子購買于吉林省通化市,產(chǎn)地為長白山,經(jīng)過吉林化工學院環(huán)境與生物工程學院隋新教授鑒定為北五味子[Schisandra chinensis (Turcz.) Baill.]的干燥果實。所用試劑均為分析純。所用儀器有:722型可見分光光度計(上海欣茂儀器有限公司),XH-100A型微波合成/萃取儀(北京祥鵠科技發(fā)展有限公司),JHBE-50S型閃式提取器(河南金鼎科技發(fā)展有限公司),RT-08型多功能粉粹機(榮聰精密科技有限公司),RE-52A型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠),SHZ-D型循環(huán)水式真空泵(河南省鞏義市英峪儀器一廠)。
1.2 多糖含量的測定
1.2.1 葡萄糖標準曲線的繪制 用葡萄糖作為標準品,采用苯酚-硫酸法[6,10]繪制標準曲線。準確稱量105 ℃干燥至恒重的葡萄糖標準樣品100.00 mg,加去離子水溶解、搖勻,定容到100 mL,制成1.00 mg/mL貯備液,取出25 mL上述貯備液置于250 mL容量瓶中,制成0.1 mg/mL的葡萄糖標準溶液。
分別精確量取上述溶液5、10、15、20、25、30、35 mL,置于7個50 mL容量瓶中,加去離子水搖勻定容。分別取1 mL,置于7個25 mL的具塞比色管中,加入新制成5%的苯酚溶液1.0 mL,再迅速加入5 mL濃硫酸,充分搖勻,另取1 mL去離子水做空白對照。于25 ℃放置30 min,在490 nm處測定吸光度值,以吸光度值為縱坐標,葡萄糖質(zhì)量濃度為橫坐標,繪制葡萄糖標準曲線。
1.2.2 多糖含量的測定 精確稱量精制干燥的北五味子多糖50 mg,用去離子水溶解后定容到100 mL,制成0.50 mg/mL溶液,取出4 mL上述溶液置于25 mL容量瓶中,制成80 μg/mL的多糖貯備液,按照繪制標準曲線的方法測定吸光度值[11-13]。按以下公式計算換算因子:
f=W/CD
式中,W為多糖質(zhì)量(μg);D為多糖的稀釋因子;C為多糖溶液中葡萄糖的濃度(μg/mL)。測得換算因子f為1.76。根據(jù)該因子計算多糖質(zhì)量。
多糖含量=多糖質(zhì)量/藥材質(zhì)量×100%
1.3 北五味子多糖的提取
1.3.1 回流法 將北五味子粉碎,過孔徑不同的篩子, 于60 ℃烘干至恒重,精確稱取10.0 g,平行稱量3份。根據(jù)試驗設(shè)計,按照一定的料液比(m∶V,g/mL,下同)加入去離子水,在一定的溫度下回流提取一段時間。提取液經(jīng)4 000 r/min離心10 min,抽濾,藥渣重新加入適量去離子水洗滌,重復上述提取液的離心操作2次,合并3次濾液,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀濃縮到原體積的1/5,加入無水乙醇至體積分數(shù)為80%,靜置,冷凍過夜。抽濾,沉淀經(jīng)無水乙醇洗滌數(shù)次,干燥,得到北五味子粗多糖。
1.3.2 微波輔助法 與“1.3.1”相同方法處理,根據(jù)試驗設(shè)計,加入一定量的去離子水,在一定的溫度下以一定功率的微波輻射萃取一段時間,提取液按照上述方法操作,得到北五味子粗多糖。
1.3.3 閃式法 與“1.3.1”相同方法處理,根據(jù)試驗設(shè)計,按照一定的料液比加入一定溫度的去離子水,在一定的電壓下提取一段的時間,提取液按照上述方法操作,得到北五味子粗多糖。
1.4 閃式法提取北五味子多糖響應(yīng)面優(yōu)化試驗設(shè)計
在上述3種方法提取北五味子多糖的單因素試驗的基礎(chǔ)上,對多糖提取率最高的閃式法進行工藝優(yōu)化。根據(jù)Box-Benhnken中心組合試驗設(shè)計原理,對多糖提取率影響比較顯著的3個因素提取溫度、提取電壓、提取時間用響應(yīng)面試驗設(shè)計法進行優(yōu)化,試驗因素與水平見表1。
2 結(jié)果與分析
2.1 葡萄糖標準曲線的繪制
葡萄糖標準曲線及回歸方程見圖1。由圖1可知,標準曲線的線性回歸方程為y=0.009 9x-0.017 9,R2=0.999 7,在10~70 μg/mL范圍內(nèi)葡萄糖含量與吸光度值呈良好的線性關(guān)系,可用于多糖含量的準確分析。endprint
2.2 回流法提取北五味子多糖單因素試驗結(jié)果
由圖2可知,北五味子超過60目以后,藥材粒徑對多糖的提取率影響很小,多糖提取率沒有明顯變化。但目數(shù)越大,過篩難度增加,且不利于后續(xù)抽濾等操作。因此,選擇60目作為粒徑的最佳水平。在4 h之前,北五味子多糖提取率隨著時間的延長而增加,這可能是因為細胞的破碎程度隨溫度升高而增加,故水溶性北五味子多糖溶出量也變大[14]。但4 h之后,提取率反而有降低的趨勢,這可能是由于長時間的高溫提取,造成了糖鏈的降解,因此選擇最佳提取時間為4 h。
由圖2可知,提取溫度從40 ℃上升到 60 ℃,北五味子多糖提取率緩慢增加,從60 ℃到100 ℃多糖提取率急劇增加,100 ℃時該提取率超過了60 ℃的2倍,因此選擇100 ℃作為最佳提取溫度。當料液比由1∶10增加到1∶40時,北五味子多糖的提取率隨著溶劑的增加逐漸升高,但繼續(xù)增加溶劑,多糖提取率呈下降趨勢,這可能是由于雜質(zhì)的析出量也增多,抑制了目標成分的析出。因此選擇1∶40作為料液比的最佳水平。
綜合以上結(jié)果可知,回流法提取北五味子多糖的最佳工藝條件為藥材粉碎過60目篩、料液比1∶40、提取溫度100 ℃、提取時間4 h。
2.3 微波輔助法提取北五味子多糖單因素試驗結(jié)果
由圖3可以看出,粒徑對北五味子多糖的提取效果影響較大,隨著藥材粒徑的增大,多糖提取率逐漸提高,但超過80目時,多糖的提取率呈逐漸下降的趨勢,因此選擇80目作為藥材的最佳粒徑。隨著料液比逐漸增大,多糖提取率明顯升高,但當料液比超過1∶10時,多糖的提取率出現(xiàn)拐點,呈下降趨勢,因此選擇1∶10作為料液比的最佳值。
由圖3可以看出,北五味子多糖的提取率隨著溫度的升高緩慢增加,溫度從80 ℃到100 ℃時,北五味子多糖的提取率急劇增加,因此選擇100 ℃作為最佳提取溫度。隨著提取時間的延長,多糖的提取率逐漸提高,但40 min后,多糖提取率趨于穩(wěn)定,因此選擇40 min 作為最佳提取時間。當微波功率低于700 W時,北五味子多糖提取率隨著微波功率的增加逐漸升高,700 W以后呈現(xiàn)平穩(wěn)的趨勢,從節(jié)約能源和保護設(shè)備的角度出發(fā),選擇700 W作為最佳功率。
綜合以上結(jié)果可知,微波輔助法提取北五味子多糖的最佳工藝條件為藥材粒徑80目、料液比1∶10、微波功率700 W、提取時間40 min。
2.4 閃式法提取北五味子多糖單因素試驗結(jié)果
由圖4可以看出,料液比由1∶5增長到1∶20時,北五味子多糖提取率明顯升高。但超過1∶20以后,多糖提取率反而呈下降的趨勢,這可能是因為提取溶劑過多,藥材與刀頭的剪切幾率下降,導致活性成分不能被充分提取。因此,應(yīng)該謹慎考慮閃式提取法中溶劑的量,選擇1∶20作為料液比的最佳值。當溫度低于80 ℃時,北五味子多糖的提取率隨著溫度的增加急劇升高,80 ℃以后多糖提取率沒有明顯變化??紤]到溫度太高可能會對多糖高級結(jié)構(gòu)和活性產(chǎn)生影響,選擇70~90 ℃進一步做優(yōu)化試驗。
閃式提取器最核心的優(yōu)勢就是集粉碎、浸泡、攪拌和振動等技術(shù)優(yōu)勢于一體,使其活性物質(zhì)的提取速度快,完成一次提取僅需要幾十秒到幾分鐘[15]。由圖4可知,提取時間達到90 s時提取率變化不明顯,表明多糖已基本提取完全,因此選擇90~150 s進一步進行優(yōu)化。當提取電壓低于160 V時,多糖的提取率隨著電壓的增加逐漸升高,超過160 V以后,多糖的提取率稍有降低。從保護電機的角度綜合考慮,選擇130~190 V電壓進行優(yōu)化。
2.5 閃式法提取北五味子多糖響應(yīng)面結(jié)果分析
2.5.1 模型的建立及顯著性檢驗 利用Design-Expert 8.0軟件對響應(yīng)面試驗結(jié)果(表2)進行二次多項式逐步回歸擬合,得到方程為Y=18.56-1.00A+3.38B+0.80C+0.096AB+0.067AC+0.43BC-2.08A2-0.32B2-2.72C2。
模型的可靠性可由方差分析及相關(guān)系數(shù)來考察。由表3可知,該模型的F=50.28,P<0.000 1,證明該試驗所選用的二次多項模型極顯著。在總的作用因素中,A、B、C、A2、C2項(P<0.01)對多糖的提取率有極顯著的影響;交互項AB、AC、BC對多糖的提取效果影響不顯著,表明各因子對響應(yīng)值的影響不是簡單的線性關(guān)系,其交互作用影響不顯著,可忽略[16]。失擬項P=0.870 7>0.05,無顯著性影響,說明數(shù)據(jù)中沒有異常點,模型適當,不需要引入更高次數(shù)的項;回歸方程的R2=98.48%,表明本試驗只有1.52%的數(shù)據(jù)不能用該模型來解釋,R2=98.48%與R2adj=96.52%極為相近,說明回歸方程擬合度很高,該模型能很好地描述試驗結(jié)果,可以用來準確分析和預測閃式法提取北五味子多糖的結(jié)果。
2.5.2 提取工藝的響應(yīng)曲面分析與優(yōu)化 為了更直觀地表現(xiàn)2個因素對北五味子多糖提取率的影響,可以設(shè)其他因素水平值為0,把提取溫度、提取電壓、提取時間3個因素中一個因素取0水平,選擇另2個因素對多糖提取率的影響進行分析,圖5直觀地反映了因素間的交互作用對響應(yīng)值的影響。
由圖5可知,本試驗所探究的因素(提取電壓、提取時間、提取溫度)對北五味子多糖的提取率影響均極顯著,表現(xiàn)為曲線較陡。隨著提取電壓、提取溫度、提取時間中任何一個因素的變化,響應(yīng)值變化均較大;尤其是隨著提取電壓的變化,多糖提取率發(fā)生明顯的變化,響應(yīng)值變化較大。由Design-Expert 8.0軟件對試驗參數(shù)進一步優(yōu)化,可以得出最優(yōu)條件為提取溫度77.86 ℃,提取電壓190 V,提取時間126.7 s,此時的北五味子多糖提取率可達21.85%。
2.6 最佳試驗條件的驗證
考慮到實際操作的可行性,將北五味子多糖提取的最佳工藝條件調(diào)整為提取溫度78 ℃、提取電壓190 V、提取時間127 s。在此條件下進行3次重復試驗,多糖提取率的平均值達到20.97%,與理論預測值基本相近,說明采用響應(yīng)面法優(yōu)化得到的工藝參數(shù)準確可靠,具有一定的實用價值。endprint
2.7 不同提取方法北五味子多糖提取率的比較
根據(jù)上述研究結(jié)果,在每種方法的最佳工藝下進行3次試驗,取平均值作為北五味子多糖的提取率。結(jié)果表明,回流法多糖提取率(15.39%)含量最低,微波輔助法與閃式法提取率分別為17.56%、20.97%。閃式提取法多糖提取率最高,且需要時間最短(5 min內(nèi)就完成提?。?,其消耗的時間為微波的1/8。因此,閃式提取法不僅減少了能源的消耗,且明顯提高了北五味子多糖的提取率。
3 小結(jié)
閃式法作為一種新型的提取工藝,因其具有操作簡單、需要時間少、提取率高等特點已經(jīng)在多種植物活性成分的提取中得到了廣泛應(yīng)用。本試驗采用這一技術(shù)實現(xiàn)了北五味子多糖的高效提取,在單因素試驗的基礎(chǔ)上設(shè)計響應(yīng)面優(yōu)化試驗,確定了閃式法提取北五味子多糖的最佳工藝為料液比1∶20,提取溫度78 ℃,在190 V的電壓下提取127 s,提取2次。在此優(yōu)化條件下,北五味子多糖的提取率達到20.97%,與回流法和微波輔助法相比,不僅提取時間大大減少,且提取率明顯提高。表明閃式提取技術(shù)操作簡便,溶劑用量小,提取時間短,能耗低,效率高,為工業(yè)化大量生產(chǎn)北五味子多糖提供了參考。
參考文獻
[1] 國家中醫(yī)藥管理局《中華本草》編委會.中華本草[M].上海:上海科學技術(shù)出版社,1999.
[2] 國家藥典委員會.中華人民共和國藥典(一部)[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010.
[3] 鄭虎占,董澤宏,佘 靖.中藥現(xiàn)代研究與應(yīng)用[M].北京:學苑出版社,1997.
[4] 王曉明,劉學敏,張 疑,等.五味子的藥理作用研究[J].北方藥學,2013,10(2):72-73.
[5] 閆 舒,仰榴青,趙 婷,等.五味子多糖的最新研究進展[J].江蘇大學學報,2009,19(4):366-368.
[6] 梁 婷,趙亞男,劉愛麗,等.微波法提取姬松茸多糖的工藝研究[J].食品工業(yè)科技,2013,34(4):236-238.
[7] 李超柱,李 慧,陳艷輝,等.緩凍協(xié)同微波提取甘薯多糖的工藝研究[J].食品科技,2013,38(2):187-191.
[8] 朱興一,顧艷芝,謝 捷,等.閃式提取紅茶中茶黃素的工藝研究[J].食品科技,2012,37(8):189-192.
[9] 朱興一,楊軍輝,謝 捷,等.響應(yīng)面法優(yōu)化閃式提取茶葉中兒茶素類物質(zhì)的工藝研究[J].林產(chǎn)化學與工業(yè),2011,31(3):105-109.
[10] 周 振,周 能.苯酚—硫酸法測定仁東大蒜中的總糖[J].食品研究與開發(fā),2012,33(6):137-142.
[11] 譚曉虹,王治寶,李如章.北五味子多糖的提取和含量測定[J].時珍國醫(yī)國藥,2007,18(6):1463-1464.
[12] 孟憲軍,李冬男,汪艷群,等.響應(yīng)曲面法優(yōu)化五味子多糖的提取工藝[J].食品科學,2010,31(4):111-115.
[13] 黃秀香,賴紅芳,羅麗程.超聲波協(xié)同復合酶法提取半邊蓮多糖工藝優(yōu)選[J].中國實驗方劑學雜志,2012,18(5):44-46.
[14] 范榮軍,任 濤,劉成柏,等.五味子多糖提取工藝的比較研究[J].中成藥,2008,30(6):827-831.
[15] 劉延澤.植物組織破碎提取法及閃式提取器的創(chuàng)新與實踐[J].中國天然藥物,2007,5(6):401-407.
[16] SIN H N,YUSOF S, SHEIKH A N,et al.Optimization of hot water extraction for sapodilla juice using response surface methodology[J]. Journal of Food Engineering,2006,74(3): 352-358.endprint