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    帕立骨化醇對糖尿病腎病腎小管上皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化的干預作用研究

    2015-01-19 06:23:21王來亮羅群蔡珂丹周芳芳高燕紅
    浙江醫(yī)學 2015年11期
    關鍵詞:骨化腎小管上皮

    王來亮 羅群 蔡珂丹 周芳芳 高燕紅

    帕立骨化醇對糖尿病腎病腎小管上皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化的干預作用研究

    王來亮 羅群 蔡珂丹 周芳芳 高燕紅

    目的 探討帕立骨化醇對糖尿病腎?。―KD)腎小管上皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)的作用及內(nèi)在機制。方法 將24只SD大鼠按隨機數(shù)字表法分為帕立骨化醇干預組(P組)、糖尿病腎病組(D組)和正常對照組(C組),每組各8只。P組和D組大鼠腹腔注射鏈脲佐菌素65mg/kg建立糖尿病腎病模型,造模成功后第2天P組腹腔注射帕立骨化醇(溶于丙二醇中)0.4μg/kg,3次/周,D組予等體積丙二醇;C組僅予等體積丙二醇。4周后測血、尿生化指標;進行腎臟病理學檢查;免疫組化及Western blot技術檢測腎組織E-鈣粘蛋白(E-cadherin)、α-平滑肌肌動蛋白(α-SMA)、纖連蛋白(FN)、轉(zhuǎn)化生長因子-β1(TGF-β1)及Klotho的表達,并進行指標間的相關性分析。結(jié)果 D組大鼠血清肌酐(Scr)、血尿素氮(BUN)及24 h尿蛋白水平均高于C組,P組均低于D組(均P<0.05)。C組大鼠腎小管結(jié)構(gòu)完整清晰,無明顯病理改變;D組可見腎小管間質(zhì)局部炎癥細胞浸潤,腎小管上皮細胞脫落,小管擴張,基底膜斷裂;P組腎小管間質(zhì)病理改變較D組減輕。D組大鼠腎組織E-cadherin與Klotho表達低于C組,而P組高于D組(均P<0.05);與C組比較,D組大鼠腎組織α-SMA、FN及TGF-β1表達增加,而P組表達均較D組減少(均P<0.05)。Klotho表達與E-cadherin呈正相關(r=0.924,P<0.05),而與α-SMA、FN及TGF-β1均呈負相關(r=-0.806、-0.623、-0.856,均P<0.05)。結(jié)論 帕立骨化醇可抑制糖尿病腎病大鼠腎小管上皮EMT,其作用可能與增加腎組織Klotho表達,同時減少TGF-β1合成相關。

    帕立骨化醇 糖尿病腎病 上皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化 轉(zhuǎn)化生長因子-β1 Klotho

    【 Abstract】 Objective To investigate the effect of parlicalcitol on tubular epithelial mesenchymal transition(EMT) and underlying mechanism in diabetic kidney disease(DKD). Methods DKD was induced by single intraperitoneal injection of 65 mg/kg streptozotocin(STZ)in 16 Sprague Dawley(SD)rats,then the animals were randomly divided into group P and group D with 8 in each.Rats in group P received intraperitoneal injection of paricalcitol(0.4μg·kg-1)in propylene glycol three times a week;rats in group D received intraperitoneal injection of same volume of propylene glycol;8 rats in group C served as normal control and received propylene glycol as in group D.Blood,urine and renal tissue samples were collected after 4 weeks intervention of paricalcitol or vehicles.Biochemical indexes were measured,renal tissue was examined histopathologically and the expression of E-cadherin,alpha-smooth muscle actin(α-SMA),fibronectin(FN),transforming growth factor-β1(TGF-β1)and klotho in renal tissue were measured with immunohistochemistry and Western blotting,respectively.In addition,the correlation among the indexes was analyzed. Results Scr,BUN and 24 h urine protein increased significantly in group D compared with group C,while decreased in group P compared with group D(all P<0.05). Local inflammatory cell infiltration,tubular epithelial cell detachment,tubular expansion and basement membrane rupture were observed in group D,but attenuated in group P compared with group C.The expression of E-cadherin and klotho decreased,while α-SMA,FN and TGF-β1 increased in group D compared with group C(all P<0.05).Compared with D,the expression of E-cadherin and klotho increased,while α-SMA,FN and TGF-β1 decreased in group P(all P<0.05).The expression of klotho was negatively correlated with α-SMA,FN and TGF-β1,while was positively correlated with E-cadherin(r=-0.806,P<0.05;r=-0.623,P<0.05;r=-0.856,P<0.05;r=0.924,all P<0.05). Conclusion Paricalcitol can inhibit tubular EMT in DKD,which may be associated with its effect of upregulating Klotho expression,and inhibiting TGF-β1 synthesis.

    【Key words】 ParicalcitolDiabetic kidney disease Epithelial mesenchymal transition TGF-β1 Klotho

    糖尿病腎病為糖尿病患者主要的微血管病變之一,在我國已迅速上升為終末期腎?。‥SRD)的重要原因。在糖尿病腎病中,腎小管間質(zhì)改變,包括腎小管上皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT),并非繼發(fā)于腎小球病變,而是其早期及原始特征之一[1-2]。既往研究發(fā)現(xiàn),EMT與腎小管間質(zhì)纖維化密切相關[3-4];伴隨著EMT,糖尿病腎病腎小管間質(zhì)纖維化不斷進展,最終可發(fā)展為ESRD[5]。Klotho與轉(zhuǎn)化生長因子-β(TGF-β)信號通路的相互調(diào)控,共同參與了腎小管上皮EMT[6-8]。因此,通過調(diào)控腎組織Klotho的表達及TGF-β信號通路的傳導或可成為抑制糖尿病腎病腎小管上皮EMT的重要途徑。帕立骨化醇為新型的維生素D類似物,具有抑制腎小管間質(zhì)纖維化的作用[9],但其對糖尿病腎病腎小管上皮EMT的作用及機制尚未闡明。筆者采用帕立骨化醇干預糖尿病腎病大鼠模型,以探討其對腎小管上皮EMT的作用及可能機制,最終為糖尿病腎病腎小管間質(zhì)纖維化的防治提供新線索,現(xiàn)報道如下。

    1 材料和方法

    1.1 實驗動物與主要試劑 雄性Sprague Dawley(SD)大鼠24只,清潔級封閉群,體重200~220g,由浙江省動物中心提供,于寧波大學實驗動物中心飼養(yǎng)。兔抗Klotho多克隆抗體(美國Prosci公司),兔抗TGF-β1多克隆抗體、兔抗E-鈣粘蛋白(E-cadherin)多克隆抗體、兔抗α-平滑肌肌動蛋白(α-SMA)多克隆抗體、兔抗纖連蛋白(FN)多克隆抗體及兔抗β-actin多克隆抗體(美國Santa Cruz公司),山羊抗兔IgG熒光二抗(美國Odyssey公司),鏈脲佐菌素(STZ,美國Sigma公司),帕立骨化醇(美國Abbott公司),免疫組化檢測試劑盒(武漢博士德),DAB顯色試劑盒(武漢博士德)。

    1.2 動物模型的建立與分組 大鼠適應性喂養(yǎng)1周,按隨機數(shù)字表發(fā)分為帕立骨化醇干預組(P組)、糖尿病腎病組(D組)、正常對照組(C組),各8只。P組和D組大鼠禁食12h后單次無菌腹腔注射1%STZ(65mg/ kg)。1%STZ溶液臨用前用0.1mmol/L檸檬酸-檸檬酸二鈉緩沖液(pH=4.5)配制,30 min內(nèi)注射完畢。72h后夜間禁食≥8h,晨起斷尾取血測空腹血糖,空腹血糖≥16.7mmol/L并能維持1周確定為糖尿病模型;3周后測尿蛋白≥30mg/24h確定為糖尿病腎病造模成功。16只大鼠糖尿病腎病造模全部成功。P組:帕立骨化醇溶于丙二醇中,于造模成功后第2天腹腔注射0.4 μg/kg,3次/周,連續(xù)4周;D組:于造模成功后第2天給予等體積的丙二醇腹腔注射;C組:按D組方法腹腔注射丙二醇。

    1.3 標本收集 連續(xù)干預4周后大鼠禁食≥8h,代謝籠收集24h尿液,記錄尿量后留取樣品5ml,2 000r/min離心10min,取上清液待檢。用10%水合氯醛3ml/kg腹腔注射麻醉后處死大鼠,心臟采血3~5ml,3 500r/min離心10min,留取血清待檢。采血后立即開腹取雙腎,清除腎蒂結(jié)締組織及腎臟包膜,縱向剖開腎臟:取部分組織置于4%多聚甲醛溶液固定24h,常規(guī)脫水、透明,石蠟包埋;其余腎組織用液氮凍存。

    1.4 生化指標檢測 血糖采用快速血糖儀檢測;血清肌酐(Scr)、血尿素氮(BUN)、24h尿蛋白、血鈣、血磷及全段甲狀旁腺激素(iPTH)采用美國Beckcoulter Uni-Cel DxC 800 Synchron全自動生化分析儀檢測。

    1.5 腎臟病理學檢查 腎組織石蠟切片(厚3~4μm),進行常規(guī)HE染色。光鏡下觀察腎臟組織形態(tài)結(jié)構(gòu)的變化。

    1.6 免疫組化 腎組織石蠟切片(厚3~4μm),脫蠟、水化,3%H2O2阻斷內(nèi)源性過氧化物酶,微波修復抗原,5%BSA封閉;分別滴加Klotho(1∶300)、TGF-β1(1∶200)、E-Cadherin(1∶200)、α-SMA(1∶100)和FN(1∶100)一抗,4℃孵育過夜;滴加HRP標記的山羊抗兔IgG二抗,顯微鏡下控制DAB顯色;蘇木素復染,脫水、透明并封片。采用PBS替代一抗作陰性對照;Image-pro plus 6.0圖像分析軟件對蛋白的表達進行半定量分析:每張切片隨機選取10個不重復視野(×200),分別檢測每個視野中指標的陽性區(qū)積分光密度(IOD),并取IOD均值作為陽性物質(zhì)的相對表達量。

    1.7 Western blot 取液氮凍存的腎組織,加適量裂解液后充分研磨,4℃裂解組織,12 000g低溫離心2min,取上清液,BCA法測蛋白濃度;取總蛋白30μg,100℃加熱變性5 min后上樣,進行SDS-PAGE凝膠電泳,并濕轉(zhuǎn)至PVDF膜;5%BSA室溫封閉2h,加入Klotho(1∶400)、TGF-β1(1∶200)、E-cadherin(1∶200)、α-SMA(1∶200)和FN(1∶200)一抗,4℃孵育過夜;加熒光標記的山羊抗兔IgG二抗(1∶10 000)室溫反應1h后,采用Odyssey紅外激光成像系統(tǒng)掃描成像,并測量條帶灰度值,以β-actin為內(nèi)參,進行定量分析。

    1.8 統(tǒng)計學處理 應用Stata 12.0統(tǒng)計軟件。計量資料以表示,組間比較采用單因素方差分析;相關性分析采用Pearson直線相關。

    2 結(jié)果

    2.1 各組大鼠生化指標的比較 糖尿病腎病第4周,D組空腹血糖水平顯著高于C組(P<0.05),但與P組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05);D組Scr、BUN及24 h尿蛋白水平均高于C組和P組(均P<0.05);與C組比較,D組血磷與iPTH水平均上升,血鈣水平下降,但P組血磷與iPTH水平均低于D組,血鈣水平高于D組(均P<0.05),詳見表1。

    表1 各組大鼠生化指標的比較

    2.2 各組大鼠腎臟病理學檢查結(jié)果的比較 C組大鼠腎小管結(jié)構(gòu)完整清晰,無明顯病理改變;D組可見腎小管間質(zhì)局部炎癥細胞浸潤,腎小管上皮細胞脫落,小管擴張,基底膜斷裂;P組腎小管間質(zhì)病理改變較D組減輕,見圖1。

    圖1 各組大鼠腎組織病理學改變(A:C組;B:D組;C:P組;HE染色,×200)

    2.3 各組大鼠腎組織E-cadherin、α-SMA及FN表達的比較 免疫組化結(jié)果顯示:與C組比較,D組腎小管E-cadherin表達下調(diào),IOD降低(P<0.05),而腎小管間質(zhì)α-SMA與FN表達上調(diào),IOD升高(均P<0.05);與D組比較,P組E-cadherin表達上調(diào),IOD升高(P<0.05),而α-SMA與FN的表達下調(diào),IOD降低(均P<0.05),詳見圖2。Western blot結(jié)果顯示:D組腎組織E-cadherin較C組顯著減少(0.78±0.10、1.06±0.10,P<0.05),而α-SMA與FN表達增加(0.77±0.08、0.24±0.10,0.83±0.06、0.64±0.05,均P<0.05);與D組比較,P組E-cadherin表達增加(0.92±0.05、0.78±0.10,P<0.05),而α-SMA及FN表達減少(0.55±0.10、0.77±0.08,0.75± 0.04、0.83±0.06,均P<0.05),詳見圖3。

    2.4 各組大鼠腎組織TGF-β1的表達 免疫組化結(jié)果顯示:與C組比較,D組腎小管間質(zhì)TGF-β1表達上調(diào),IOD升高(P<0.05);而P組TGF-β1表達較D組下調(diào),IOD降低(P<0.05),見圖4。Western印跡結(jié)果顯示:與C組比較,D組腎組織TGF-β1表達增加(0.69± 0.05、0.38±0.06,P<0.05),而P組較D組表達減少(0.55±0.06、0.69±0.05,P<0.05),見圖5。 2.5 各組大鼠腎組織Klotho表達的比較 免疫組化結(jié)果顯示:C組Klotho在腎小管呈高表達,IOD升高;與C組比較,D組腎小管Klotho表達顯著下調(diào),IOD降低(P<0.05);而P組Klotho表達較D組上調(diào),IOD升高(P<0.05),見圖6。Western印跡結(jié)果顯示:與C組比較,D組腎組織Klotho表達減少(0.65±0.10、1.04±0.04,P<0.05),而P組較D組表達增加(0.95±0.04、0.65± 0.10,P<0.05),見圖7。

    2.6 腎組織Klotho表達與E-cadherin、α-SMA、FN及TGF-β1表達的相關性分析 相關性分析發(fā)現(xiàn),Klotho與E-cadherin呈正相關(r=0.924,P<0.05),而與α-SMA、FN及TGF-β1呈負相關(r=-0.806、-0.623、-0.856,均P<0.05)。

    3 討論

    早在20年前,在抗腎小管基底膜病動物模型中,研究發(fā)現(xiàn)小管上皮細胞可表達纖維化特異性標志蛋白——成纖維細胞特異蛋白-1(FSP-1),首次揭示了EMT與腎臟纖維化的內(nèi)在聯(lián)系[10]。在5/6腎切除動物模型中也發(fā)現(xiàn),腎小管上皮細胞EMT可促進小管間質(zhì)纖維化[3]。之后,在UUO動物模型中,利用基因標記的方法明確肯定了近端腎小管上皮細胞EMT在慢性腎臟病進展中的作用。研究表明,腎小管間質(zhì)中高達36%的成纖維細胞源于近端小管上皮細胞EMT[4]。類似動物模型,在不同腎臟病患者的腎活檢組織中均存在腎小管上皮細胞EMT,表現(xiàn)為部分上皮細胞出現(xiàn)表型轉(zhuǎn)化,且與Scr水平及小管間質(zhì)纖維化相關[11-12]。

    圖2 各組大鼠腎組織E-cadherin、α-SMA及FN的表達(A:免疫組化,×200;B:IOD;注:與C組比較,*P<0.05;與D組比較,△P<0.05)

    在糖尿病腎病中,腎小管間質(zhì)改變,包括EMT,并非繼發(fā)于腎小球病變,而是早期病變及原始特征之一,無論從發(fā)病時間還是發(fā)病機制,腎小管病變有其獨立性,且腎小管病變和腎間質(zhì)纖維化對腎功能的預后較腎小球病變更為重要[1-2]。伴隨著EMT,糖尿病腎病腎小管間質(zhì)纖維化不斷進展,最終可發(fā)展為ESRD[5]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),糖尿病腎病第4周大鼠腎小管上皮標志蛋白E-cadherin表達減少,而間充質(zhì)標志蛋白α-SMA及FN表達增加,提示腎小管上皮正發(fā)生EMT,與之前報道一致[13]。此外,本研究中糖尿病腎病大鼠伴有不同程度的腎小管間質(zhì)形態(tài)學改變。值得注意的是,糖尿病腎病大鼠經(jīng)帕立骨化醇連續(xù)干預4周后,大鼠腎小管上皮EMT及小管間質(zhì)改變減輕,同時伴腎功能改善,且未發(fā)生高鈣血癥,表明帕立骨化醇治療可改善糖尿病腎病腎臟預后。

    圖3 各組大鼠腎組織E-cadherin、α-SMA及FN的表達

    在腎臟疾病中,多種因素可誘導腎小管上皮EMT的發(fā)生,包括低氧環(huán)境、活性氧(ROS)、血管活性因子、糖基化終末產(chǎn)物(AGEs)、促纖維化細胞因子以及基質(zhì)金屬蛋白酶等。其中,TGF-β1是促進腎小管上皮EMT的主要因子之一[14-15]。Burns等[13]研究發(fā)現(xiàn),TGF-β1誘導腎小管上皮細胞(NRK-529)發(fā)生EMT,E-cadherin、α-SMA及波形蛋白表達水平相應改變;與之對應,在糖尿病腎病大鼠模型中,TGF-β1水平升高,上皮標志蛋白E-cadherin表達減少,而間充質(zhì)標志蛋白α-SMA與膠原蛋白表達增加。此外,在其他多項研究中均證實了此結(jié)果[16-17]。本研究中,糖尿病腎病第4周大鼠腎組織TGF-β1的表達增加,伴E-cadherin表達減少,α-SMA及FN表達增加;而帕立骨化醇干預后,腎組織TGF-β1的表達減少,同時伴EMT相關蛋白的表達逆轉(zhuǎn)。此結(jié)果提示,帕立骨化醇干預可通過減少TGF-β1的表達,從而抑制糖尿病腎病腎小管上皮EMT。

    圖4 各組大鼠腎組織TGF-β1的表達(A:C組;B:D組;C:P組;免疫組化,×200;與C組比較,*P<0.05;與D組比較,△P<0.05)

    圖5 各組大鼠腎組織TGF-β1的表達

    圖6 各組大鼠腎組織Klotho蛋白的表達(A:C組;B:D組;C:P組;免疫組化,×200;與C組比較,*P<0.05;與D組比較,△P<0.05)

    圖7 各組大鼠腎組織Klotho的表達

    此外,CKD患者早期即可出現(xiàn)Klotho缺乏[18],而影響Klotho基因表達的一個關鍵因素就是高糖環(huán)境[19]。體內(nèi)外研究表明,高糖降低腎臟Klotho表達水平,而降糖可逆轉(zhuǎn)Klotho表達[19]。Klotho缺乏與腎小管間質(zhì)纖維化密切相關。研究表明,在單側(cè)輸尿管梗阻(UUO)動物模型中,腎臟Klotho缺乏可加重腎小管間質(zhì)纖維化,TGF-β1、α-SMA及FN表達明顯增加[7];而外源性Klotho可抑制腎小管間質(zhì)纖維化,這可能與Klotho直接與TGF-β1Ⅱ型受體結(jié)合從而抑制TGF-β1信號通路的傳導有關[7-8]??梢姡琄lotho缺乏可促進腎小管間質(zhì)纖維化,而抑制TGF-β1的表達及其信號通路的傳導可能是其內(nèi)在機制之一。值得注意的是,TGF-β1的表達除了受Klotho調(diào)控外,本身還可抑制組織對Klotho的表達[7-8]。本研究結(jié)果顯示,在糖尿病腎病第4周,大鼠腎組織Klotho表達明顯減少,同時伴TGF-β1表達增加,而予帕立骨化醇干預后,可逆轉(zhuǎn)腎組織Klotho及TGF-β1的表達。此結(jié)果提示,在糖尿病腎病狀態(tài)下,帕立骨化醇可通過促進腎組織Klotho的表達,從而抑制TGF-β1介導的腎小管上皮EMT及腎臟纖維化。

    總之,糖尿病腎病中Klotho及TGF-β信號通路相互調(diào)控,而Klotho表達水平下降引起TGF-β1合成增加是導致腎小管上皮EMT的重要機制。因此,通過調(diào)控腎組織Klotho表達,從而抑制TGF-β1合成,成為帕立骨化醇阻斷腎小管上皮EMT及小管間質(zhì)纖維化的內(nèi)在途徑之一。但目前帕立骨化醇對腎臟Klotho表達的調(diào)控機制尚未闡明,可能是由多個維生素D反應元件(VDREs)介導[20],仍需進一步研究。

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    Effect of paricalcitol on tubular epithelial mesenchymal transition in diabetic kidney disease


    WANG Lailiang,LUO Qun,CAI Kedan,et al.
    Department of Nephrology,Ningbo Second Municipal Hospital,Ningbo 315010,China

    2014-12-15)

    (本文編輯:嚴瑋雯)

    浙江省醫(yī)藥衛(wèi)生科研基金(2015KYA201);寧波市自然科學基金(2014A610245)

    315010 寧波市第二醫(yī)院腎內(nèi)科

    羅群,E-mail:nbluoqun@163.com

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