摘要:采用靜電紡絲技術(shù)在聚己內(nèi)酯/明膠(PCL/GE)支架的基礎(chǔ)上制備了聚己內(nèi)酯/明膠/富血小板血漿(PCL/GE/PRP)納米纖維支架,考察了該材料的密度、孔隙率、親水性、降解速率以及其細(xì)胞相容性。結(jié)果表明,PCL/GE/PRP 纖維膜的密度及孔隙率介于PCL和PCL/GE纖維膜之間,直徑集中在100~400 nm,相比于PCL/GE纖維膜,PCL/GE/PRP纖維支架的親水性更好,早期降解速度更快,且更利于大鼠脂肪源干細(xì)胞(adipose tissue-derived stem cells,ADSCs)的生長(zhǎng)、增殖。
關(guān)鍵詞:靜電紡絲;納米纖維支架;細(xì)胞相容性
中圖分類(lèi)號(hào):TB332文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A
靜電紡絲是近年來(lái)興起的一種可制備直徑在納米至微米級(jí)的超細(xì)纖維材料技術(shù)。該法制備的納米纖維具有與細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)相似的結(jié)構(gòu)特點(diǎn)和生物學(xué)功能[1],可作為細(xì)胞生長(zhǎng)的多孔支架,促進(jìn)細(xì)胞的遷移和增殖。靜電紡絲技術(shù)原料來(lái)源廣泛,其中生物相容性和力學(xué)性能較好、可降解、易加工且成本低廉的合成高分子材料聚己內(nèi)酯(PCL)已得到廣泛運(yùn)用[2]。然而由于PCL表面缺乏細(xì)胞親和位點(diǎn)、親水性能差、降解速度較慢,不利于細(xì)胞在組織支架的粘附[3],故該材料在運(yùn)用中仍需改進(jìn)。天然材料明膠(Gelatin,GE)亦被廣泛運(yùn)用于組織工程材料領(lǐng)域,它具有較好的親水性,有特異性細(xì)胞黏附位點(diǎn),但其力學(xué)性能差[4]。若將GE與PCL制成復(fù)合材料不僅能增強(qiáng)細(xì)胞黏附,改善PCL的親水性能和調(diào)節(jié)其降解速度,還令其具有良好的機(jī)械強(qiáng)度。
種子細(xì)胞、支架材料、生物活性因子是組織工程的三要素之一,其中生物活性因子可以提供恰當(dāng)?shù)募?xì)胞刺激信號(hào),從而誘導(dǎo)細(xì)胞的增殖和分化。近年來(lái)有關(guān)富血小板血漿(Platelet-rich plasma,PRP)的運(yùn)用日益增多[5-6]。PRP是利用自身血液制作的含高濃度血小板的血漿,其血小板在激活后可大量分泌具有促進(jìn)傷口、組織愈合和細(xì)胞再生的多種生長(zhǎng)因子,因而PRP亦稱(chēng)為\"富含生長(zhǎng)因子血漿\"[6-8]。本研究在PCL紡絲過(guò)程中混紡一定濃度的GE,并在此基礎(chǔ)上制備了含PRP的PCL/GE納米復(fù)合纖維材料支架,以大鼠脂肪源干細(xì)胞(ADSCs)作為實(shí)驗(yàn)細(xì)胞,考察了復(fù)合纖維膜的結(jié)構(gòu)、降解速率及其生物相容性,為制備理想的組織工程支架材料提供新思路。
1實(shí)驗(yàn)部分
1.1實(shí)驗(yàn)試劑及設(shè)備 聚己內(nèi)酯(PCL):美國(guó)Sigma公司;明膠(GE):北京索萊寶科技有限公司;α-MEM培養(yǎng)基:美國(guó)Invitrogen公司;胎牛血清:杭州四季青生物工程有限公司;胰酶:美國(guó)Gibco公司;大鼠脂肪干細(xì)胞:南昌大學(xué)一附院泌外研究所提供。
掃描電鏡(SEM):TESCAN公司VEGA3型;傅立葉紅外光譜儀:美國(guó)BRUKERTENSOR-27;接觸角儀:德國(guó)KROSSDSA100。
1.2電紡纖維膜的制備
1.2.1 PCL電紡纖維膜 常溫下稱(chēng)取0.9 g PCL溶于10 mL的TFE溶劑中,制備9wt% 的PCL電紡液。使用7號(hào)的針頭進(jìn)行電紡,電紡電壓為22 kV,接收距離15 cm,注射泵推進(jìn)速率為3.0 mL/h,溫度為37℃。關(guān)閉高壓,停止注射泵,收集到PCL纖維膜,真空冷凍干燥24 h。
1.2.2 PCL/GE電紡纖維膜 常溫下稱(chēng)取0.36 g PCL和 0.54 g GE分別溶于4 mL的TFE中,混合后加入10 μL乙酸(HAc),再補(bǔ)充2 mL TFE,得到9wt% 的PCL/GE電紡液。電紡方法與前述相同,電紡溫度為50℃。
1.2.3 PCL/GE/PRP電紡纖維膜 預(yù)先同上制備PCL/GE電紡纖維膜,隨后將PRP直接電噴在上述已紡織成功的PCL/GE纖維膜上,然后再電紡一層PCL/GE纖維膜,形成三明治結(jié)構(gòu)的復(fù)合納米纖維膜,真空冷凍干燥備用。
1.3表征測(cè)試
1.3.1纖維膜密度及孔隙率測(cè)試 采用稱(chēng)重法測(cè)量纖維膜密度,具體過(guò)程如下:將20 mL密度瓶充滿(mǎn)去離子水,稱(chēng)量其質(zhì)量m1,將質(zhì)量為m2的電紡纖維膜放入充滿(mǎn)水的密度瓶中,稱(chēng)量其質(zhì)量m3(n=4)。利用下列公式求得纖維膜密度ρ,單位為g/cm3:ρ=m2/(m1+m2-m3),得到纖維膜密度ρ后,再利用下列公式求得纖維膜孔隙率ε:ε= (1-ρ/ρ0)×100%公式中ρ0為電紡液自然凝固后的模塊密度,單位為g/cm3。
1.3.2 SEM形貌 將待測(cè)樣品噴金后在掃描電鏡下觀察其微觀形貌,得到的SEM照片使用Adobe Photoshop軟件對(duì)其中的纖維(n=100)進(jìn)行直徑測(cè)量。量取照片上所有不同位置的纖維計(jì)算每根纖維的平均直徑,然后計(jì)算纖維膜中超細(xì)纖維的平均直徑和直徑分布。
1.3.3 全反射傅里葉紅外光譜分析(ATR-FTIR) 采用傅立葉紅外光譜分析儀對(duì)各電紡纖維膜表面的化學(xué)官能團(tuán)進(jìn)行分析。
1.3.4 靜態(tài)接觸角及吸水性測(cè)定 采用靜態(tài)接觸角測(cè)試機(jī)上測(cè)試各纖維膜表面的親水性。所有測(cè)試均在室溫下進(jìn)行,所用水滴體積0.25 μL。
取纖維膜樣品(2 cm×2 cm,n=3),用分析天平稱(chēng)得初始質(zhì)量m0;在PBS緩沖溶液中浸泡24 h后取出,用濾紙吸去膜表面和邊緣的水分,稱(chēng)重得m1。取每種纖維膜三組數(shù)據(jù)取平均值,作為其吸水率數(shù)據(jù)。吸水率=(m1-m0)/m0×100%。
1.3.5體外降解性測(cè)試 干燥稱(chēng)重(W0),分別浸入模擬體液(0.01M PBS,pH=7.4)并置于37℃恒溫水箱中(n=3)。隔周換液,分別于1月、2月、3月時(shí)取出,37℃恒溫干燥48 h至恒重(Wn),失重率(W%)公式如下。W%=(W0-Wn)/W0×100%,式中,W0式樣的初始重量,Wn式樣n月后的重量,單位為g。
1.4生物學(xué)特性研究
1.4.1大鼠ADSCs的培養(yǎng) 常規(guī)培養(yǎng)大鼠ADSCs,選擇處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的ADSCs 用于實(shí)驗(yàn),將細(xì)胞濃度調(diào)整為為4×105/mL的單細(xì)胞懸液。
1.4.2體外細(xì)胞相容性檢測(cè) 將輻照消毒后的各纖維膜(面積0.8 cm×0.8 cm)分別置于24孔板中,每組3個(gè)復(fù)孔,培養(yǎng)基浸泡后,接種大鼠ADSCs單細(xì)胞懸液于24孔板內(nèi),置5% CO2、37℃的飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng),隔日半量換液。分別于接種1、3、5、7 d后固定細(xì)胞,DAPI染色、倒置熒光顯微鏡下計(jì)數(shù)纖維膜上細(xì)胞。
1.5統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 結(jié)果以均值±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示,采用SPSS18.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件、單因素方差分析(one-way ANOVA)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)運(yùn)算。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,P<0.01為差異有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2結(jié)果與討論
2.1表征測(cè)試
2.1.1纖維膜密度及孔隙率測(cè)試 PCL、PCL/GE和PCL/GE/PRP纖維膜密度分別為:(0.122±0.003)g/cm3、(0.844±0.085)g/cm3、(0.371±0.012)g/cm3,孔隙率分別為:(0.874±0.003)%、(0.158±0.085)%、(0.681±0.009)%。兩指標(biāo)組間兩兩比較差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,見(jiàn)圖2,P<0.01??梢?jiàn)GE的引入不僅可以提高纖維膜密度,且能改變?cè)兄Ъ艿目紫堵?。在PCL/GE纖維膜的基礎(chǔ)上引入PRP后,纖維膜的密度及孔隙率較PCL和PCL/GE纖維膜有不同程度改變,位于二者之間。
2.1.2 SEM形貌 PCL、PCL/GE、PCL/GE/PRP纖維膜的掃描電鏡圖,見(jiàn)圖1。所示,直徑分別為(323±138)nm、(282±109)nm、(288±149)nm。圖像分析結(jié)果表明,膜纖維直徑分布范圍主要集中在100~400 nm,屬納米級(jí)纖維,該三維立體孔隙構(gòu)架可為細(xì)胞生長(zhǎng)爬行提供有效空間。
圖1 各纖維膜掃描電鏡圖
2.1.3 ATR-FTIR圖譜形貌 a譜中1700~1760 cm-1處存在一個(gè)強(qiáng)吸收峰,此峰為C=O伸縮振動(dòng)峰,是PCL的特征吸收峰;b譜中,1700~1760 cm-1處是PCL的特征峰,GE分子有大量的氨基存在,在1640~1650 cm-1和1500~1560 cm-1 處有強(qiáng)的吸收峰,此為GE中的氮?dú)滏I(N-H)變形振動(dòng)吸收峰。PCL和GE的特征峰出現(xiàn),表明采用三氟乙醇為溶劑,可以較好混紡PCL/GE纖維;由于ATR-FTIR只能表征出材料表面的化學(xué)官能團(tuán),鑒于PRP中的各種生長(zhǎng)因子含有大量的氨基,而PCL/GE和PCL/GE/PRP支架在1640~1650 cm-1和1500~1560 cm-1處峰(即N-H變形振動(dòng)峰)面積相當(dāng)(b和c譜),可見(jiàn)PRP的引入并未影響到材料表面化學(xué)基團(tuán)的檢測(cè),說(shuō)明本研究采用電噴法將PRP夾在PCL/GE薄膜中間的方法可以將生物活性因子成功包被,見(jiàn)圖2。
圖2 各纖維膜ATR-FTIR圖譜
注:a:PCL纖維膜 b:PCL/GE纖維膜 c:PCL/GE/PRP纖維膜。
2.1.4靜態(tài)接觸角及吸水率檢測(cè) 水滴接觸角的測(cè)定用于評(píng)估材料的親水性,接觸角越小,表明材料表面親水性越強(qiáng)。在室溫下,水滴PCL纖維膜上的接觸角為109°,混紡后,PCL/GE纖維膜、PCL/GE/PRP纖維膜接觸角減小至0°??梢?jiàn)PCL的親水性差。由于GE分子鏈上帶有大量的氨基以及羧基等親水性基團(tuán),故GE混紡在PCL纖維膜后可使纖維的親水性能顯著增加,見(jiàn)圖3A。
PCL、PCL/GE和PCL/GE/PRP纖維膜在相同環(huán)境中吸水率分別為(0.219±0.013)、(3.331±0.050)、(3.082±0.094),見(jiàn)圖3B,各纖維膜親水率兩兩比較均存在統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(*P<0.05,**P<0.01)。吸水性實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)一步表明GE的引入顯著提高了PCL膜的親水性。采用夾心法將PRP引入PCL/GE纖維膜內(nèi)部后制得的PCL/GE/PRP支架的吸水率明顯高于PCL/GE纖維膜,表明引入PRP更有利于提高材料親水性。
圖3 各纖維膜的接觸角及吸水率分析(*P<0.05,**P<0.01)
2.1.5體外降解性測(cè)試 各纖維膜在不同時(shí)間點(diǎn)的體外失重率變化。從表中可以看出在各個(gè)時(shí)間點(diǎn)PCL/GE/PRP纖維膜與PCL/GE纖維膜的失重率均明顯大于PCL纖維膜(*P<0.05,**P<0.01),說(shuō)明GE的引入可以促進(jìn)復(fù)合膜中PCL膜的降解。第30 d,PCL/GE/PRP纖維膜的失重率顯著高于PCL/GE纖維膜(#P<0.05),而隨著時(shí)間的延長(zhǎng),二者的失重率趨于接近,表明PRP可在早期加速PCL膜的降解,見(jiàn)表1。
2.2體外細(xì)胞相容性檢測(cè) PCL/GE/PRP組與PCL/GE組細(xì)胞數(shù)目在各個(gè)時(shí)間點(diǎn)均顯著高于PCL組,說(shuō)明GE的引入有利于細(xì)胞的增殖,見(jiàn)圖4。第1 d PCL/GE/PRP組與PCL/GE組的細(xì)胞數(shù)目大致相等,從第3 d開(kāi)始,PCL/GE/PRP組的細(xì)胞數(shù)目明顯高于PCL/GE組,差別有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(*P<0.05,**P<0.01,##P<0.01),表明PRP在早期階段即可促進(jìn)大鼠ADSCs的增殖。
圖4 各纖維膜上大鼠ADSCs生長(zhǎng)情況(×50 μm)
3結(jié)論
本實(shí)驗(yàn)表明,PCL/GE/PRP納米纖維膜的密度、孔隙率、外觀及直徑與PCL和PCL/GE纖維膜有一定差異,其各項(xiàng)參數(shù)均符合生物工程支架的基本性能要求。就親水性能、降解時(shí)間及細(xì)胞相容性而言,PCL/GE/PRP和PCL/GE纖維膜更適用于組織工程皮膚支架,且PCL/GE/PRP纖維支架的親水性更好,早期降解速度更快,且更利于細(xì)胞的生長(zhǎng)。
參考文獻(xiàn):
[1]James R, Toti U S, Laurencin C T, et al. Electrospun nanofibrous scaffolds for engineering soft connective tissues[J]. Methods Mol Biol, 2011, 726: 243-258.
[2]Boland E D, Telemeco T A, Simpson D G, et al. Utilizing acid pretreatment and electrospinning to improve biocompatibility of poly(glycolic acid) for tissue engineering[J]. J Biomed Mater Res B Appl Biomater, 2004, 71(1): 144-152.
[3]Kumbar S G, Nukavarapu S P, James R, et al. Electrospun poly(lactic acid-co-glycolic acid) scaffolds for skin tissue engineering[J]. Biomaterials, 2008, 29(30): 4100-4107.
[4]Jeevithan E, Jeya S R, Varatharajakumar A, et al. Physico-functional and mechanical properties of chitosan and calcium salts incorporated fish gelatin scaffolds[J]. Int J Biol Macromol, 2013,60:262-267.
[5]Mardani M, Kabiri A, Esfandiari E, et al. The effect of platelet rich plasma on chondrogenic differentiation of human adipose derived stem cells in transwell culture[J]. Iran J Basic Med Sci, 2013, 16(11): 1163-1169.
[6]Kruger J P, Freymannx U, Vetterlein S, et al. Bioactive factors in platelet-rich plasma obtained by apheresis[J]. Transfus Med Hemother, 2013, 40(6): 432-440.
[7]Anitua E, Pascual C, Perez-Gonzalez R, et al. Intranasal delivery of plasma and platelet growth factors using PRGF-Endoret system enhances neurogenesis in a mouse model of Alzheimer's disease[J]. PLoS One, 2013, 8(9): e73118.
[8]Lee J W, Kwon O H, Kim T K, et al. Platelet-rich plasma: quantitative assessment of growth factor levels and comparative analysis of activated and inactivated groups[J]. Arch Plast Surg, 2013, 40(5): 530-535.
編輯/張燕