張玉鋒,段岢君,趙曉莉,陳衛(wèi)軍,趙松林
1(中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院椰子研究所,海南文昌,571339)
2(海南大學(xué)食品學(xué)院,海南???,570228)
3(國家重要熱帶作物工程技術(shù)研究中心,海南???,571101)
椰子(Cocosnucifera L.)為棕櫚科椰子屬多年生常綠喬木,是熱帶地區(qū)的一種重要水果和油料作物,除了用于生產(chǎn)食品外,還可作為椰殼活性炭、椰衣纖維、汽車坐墊等工業(yè)產(chǎn)品的原料,應(yīng)用范圍廣泛,被稱為“生命之樹”[1]。據(jù)報(bào)道,干燥后的成熟椰肉中脂肪含量高達(dá)70%,以其為原料生產(chǎn)的椰子油富含中短鏈飽和脂肪酸,具有殺菌、抗病毒、抗癌和減少心血管疾病發(fā)生危險(xiǎn)等多種功效[2]。因此,椰子油等相關(guān)產(chǎn)品的消費(fèi)量日益增加,這也意味著椰子種皮等副產(chǎn)物的大量產(chǎn)生,對(duì)這些副產(chǎn)物的加工利用已成為椰子加工業(yè)的重要課題,其高值化利用具有明顯的經(jīng)濟(jì)和社會(huì)效益。
椰子種皮是成熟椰肉上附著的一層黑褐色薄皮,每個(gè)椰果可得種皮約100 g。在椰肉榨油時(shí),如果附有種皮,會(huì)對(duì)所得油脂的色澤和性質(zhì)產(chǎn)生負(fù)面影響,不利于市場銷售,所以在榨油前將種皮削除。據(jù)統(tǒng)計(jì),海南省每年可產(chǎn)椰子種皮2.37萬t,而這些種皮多被直接丟棄,或作為培養(yǎng)基質(zhì)和動(dòng)物飼料使用,附加值和利用率均較低[3]。因此,本文以椰子種皮為原料,提取種皮油,制備提取物,并探討該提取物對(duì)氧化損傷的保護(hù)作用。
成熟的椰子,從中間剖開,取出椰肉,將附著于椰肉上的一層棕色椰子種皮削下收集,50℃烘干,粉碎,得種皮粉末。取粉末50 g,加入200 mL異丙醇,60℃超聲波輔助提取3h,真空抽濾,收集濾液;再向?yàn)V渣中加入200 mL異丙醇,重復(fù)提取3次,合并濾液,45℃旋蒸,除去溶劑,得椰子種皮油。4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
參考Seneviratne等[5]的方法,取椰子種皮油50 g,按照5∶1(mL∶g)的料液比,加入10 mL 體積分?jǐn)?shù)80%的甲醇,超聲波輔助提取10 min,然后于2 000 r/min離心30 min,收集上層清液,再加入10 mL體積分?jǐn)?shù)80%的甲醇,如此反復(fù)提取3次,合并上清液,于40℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)除去甲醇,而后冷凍干燥除去水分,得到椰子種皮油提取物。將提取物貯存于4℃冰箱中,用時(shí)取出用80%的甲醇溶解,并配制成一定濃度的溶液。
1.3.1 人血清蛋白(human serum albumin,HSA)的氧化處理[6]
10 mg/mL的人血清蛋白中分別加入等量的提取物甲醇溶液,Trolox,超純水,混勻,然后分別加入10 mmol的 H2O2,在37℃水浴中反應(yīng) 2 h。樣品與Trolox 的濃度梯度均為 0.5、1.0、1.5、2.0 和 2.5 mg/mL。
1.3.2 對(duì)蛋白質(zhì)羰基形成的抑制作用
參考Levine等人[7]的方法,并稍作修改:分別取上述混合液400 μL,加入400 μL濃度為 10 mmol/L的 2,4-二硝基苯肼(2,4-dinitrophenylhydrazine,DNPH),空白以2 mol/L HCl代替,混勻,室溫下于暗處反應(yīng)1 h,每隔10 min漩渦1次。然后加入400 μL TCA(20%)蛋白質(zhì)腙衍生物。于4℃、16 000 r/min、離心5 min,棄去上清液。沉淀用1 mL乙醇/乙酸乙酯(體積比為1∶1)洗滌3次,每次洗完于16 000 r/min、4℃離心5 min,棄去上清液。最后沉淀用1.25 mL濃度為6 mol/L的鹽酸胍溶解,離心取上清液于370 nm測吸光值。每個(gè)樣品做3個(gè)平行。
蛋白質(zhì)羰基氧化抑制率/%=(1-A樣品/A空白)×100
1.3.3 蛋白質(zhì)氫過氧化物含量的測定
本實(shí)驗(yàn)采用二甲酚橙法[8]測定氫過氧化物含量。取0.1 mL氧化后的蛋白質(zhì)溶液,分別加入1 mL硫酸亞鐵銨(0.5 mmol),1 mL 二甲酚橙(0.2 mmol),室溫下反應(yīng)30 min,于560 nm處測試吸光值。
1 mL的提取物/Trolox中依次加入1.0 mL的10 mmol/L H2O2,1.0 mL 硫酸亞鐵銨,0.3 mL 二甲酚橙,及1 mL 25 mmol/L的H2SO4,用PBS補(bǔ)充體積至5 mL,充分混勻,暗處反應(yīng)30 min,于560 nm處測試吸光值。對(duì)照組以水代替樣品,樣品對(duì)照組不添加H2O2,每個(gè)樣品做3個(gè)平行。
過氧化氫清除率/%=[1-(A樣品-A對(duì)照)/A對(duì)照]×100
羥基自由基誘導(dǎo)DNA損傷,DNA結(jié)構(gòu)由超螺旋結(jié)構(gòu)斷裂成環(huán)狀或者線性結(jié)構(gòu)。參照Wei等[10]的方法,略加改動(dòng):準(zhǔn)確稱取瓊脂糖0.25 g,放入錐形瓶中,加入25 mL的1×TAE緩沖液,加熱使瓊脂糖完全溶解,待冷卻至60℃,加入2 μL EB(溴化乙錠)染色液,混勻,倒入膠板鋪板。室溫下(約30 min后)待凝膠完全凝固,拔出梳齒,將膠板放入盛有1×TAE緩沖液的電泳槽中。終體積為25 μL的反應(yīng)液中,分別含有 50 ng/μL 的 pBR 322 DNA 2 μL,5 mmol/L的 FeSO45 μL,3%的 H2O22 μL,100 mmol/L pH 7.4的PBS,濃度為0.1 mg/mL的提取物甲醇溶液1、2、3、4和5 μL,以同濃度同體積的Trolox作對(duì)照,以超純水代替樣品做空白。37℃水浴反應(yīng)1h,加入5 μL上樣緩沖液,點(diǎn)入1%的瓊脂糖凝膠中,90V電泳30 min,凝膠成像系統(tǒng)拍照。
所有數(shù)據(jù)均用平均值±SD表示;使用Origin 8.0和Excel制作圖表,并用SPSS 17.0進(jìn)行方差分析和顯著性檢驗(yàn)(P<0.05)。
2.1.1 提取物對(duì)蛋白質(zhì)羰基氧化的抑制作用
機(jī)體內(nèi)的蛋白質(zhì)氧化會(huì)影響多種細(xì)胞功能,涉及受體、信號(hào)傳導(dǎo)機(jī)制、運(yùn)輸系統(tǒng)和各種酶類,并可導(dǎo)致其他生物分子的二次損傷,如DNA修復(fù)酶失活等。有報(bào)道稱羰基生成是由活性氧攻擊氨基酸分子中自由氨基或亞氨基,經(jīng)反應(yīng)最終生成NH3和相應(yīng)的羰基衍生物[11],可見蛋白質(zhì)羰基的產(chǎn)生是蛋白質(zhì)分子被自由基氧化修飾的一個(gè)重要標(biāo)記,因此可通過測定羰基的含量來判斷蛋白質(zhì)被氧化損傷的情況。
圖1顯示的是不同濃度的提取物對(duì)蛋白質(zhì)羰基氧化的抑制效果??梢钥闯?,雖然CEOE的抑制效果均低于同濃度的Trolox,但是該提取物也表現(xiàn)出了抑制蛋白質(zhì)羰基生成的潛能,且隨著CEOE濃度的增加,其抑制作用呈現(xiàn)逐漸增強(qiáng)的趨勢(shì),即具有明顯的劑量效應(yīng)。此外,濃度為 1.5、2.0 和 2.5 mg/mL 的CEOE 的抑制效果分別與 0.5、1.0 和 2.0 mg/mL 的Trolox的作用相當(dāng)。這就說明在一定程度上,椰子種皮油提取物可以作為一種抗氧化添加組分來降低由H2O2誘導(dǎo)的蛋白質(zhì)羰基增多的氧化損傷。
圖1 CEOE/Trolox對(duì)蛋白質(zhì)羰基氧化的抑制作用Fig.1 Inhibiting effect of CEOE/Trolox on the oxidation of protein carbonyl
2.1.2 提取物對(duì)蛋白質(zhì)氫過氧化物含量的影響
Gieseg等人[12]的研究表明,人工培養(yǎng)的U973細(xì)胞在暴露于H2O2的情況下會(huì)誘發(fā)蛋白質(zhì)氫過氧化物的生成,并且該過氧化物會(huì)作為新的自由基源與細(xì)胞內(nèi)的抗氧化劑發(fā)生反應(yīng),從而導(dǎo)致谷胱甘肽還原酶失活和DNA交聯(lián)等機(jī)體損傷。因此抑制蛋白質(zhì)氫過氧化物的形成也是抗氧化劑發(fā)揮其抗氧化作用的一種途徑。如圖2所示,與空白組(濃度為0 mg/mL組)相比,添加了CEOE與Trolox實(shí)驗(yàn)組的吸光值明顯降低,即CEOE與Trolox均可以有效降低蛋白質(zhì)氫過氧化物的含量;并且隨著濃度的增加,吸光值越來越小,表明高濃度的CEOE及Trolox更能抑制蛋白質(zhì)氫過氧化物的生成,從而降低氧化損傷。
圖2 CEOE/Trolox對(duì)蛋白質(zhì)氫過氧化物含量的影響Fig.2 Impaction effect of CEOE/Trolox on protein hydroperoxides
圖3顯示的是CEOE和Trolox對(duì)過氧化氫的清除能力。
圖3 CEOE/Trolox對(duì)過氧化氫的清除能力Fig.3 Scavenging activity of CEOE/Trolox on hydrogen peroxide
可以看出,隨著濃度的增加CEOE對(duì)H2O2的清除能力逐漸增強(qiáng),在濃度為2.5 mg/mL時(shí),清除率達(dá)(49.81±3.10)%,且其清除能力與自身濃度呈現(xiàn)正相關(guān)(R2=0.974)。有研究表明,機(jī)體內(nèi)的過氧化物和氫過氧化物一般是機(jī)體細(xì)胞組分與自由基或活性氧發(fā)生相互作用時(shí)的最初產(chǎn)物,當(dāng)機(jī)體細(xì)胞處在過氧化氫中時(shí),糖酵解反應(yīng)中的ADP磷酸化過程會(huì)被抑制,從而造成機(jī)體供能不足[13]。因此,可將CEOE開發(fā)成一種抗氧化組分添加到食品中去,以清除機(jī)體內(nèi)的過氧化氫,保證機(jī)體供能。
在Fe2+的催化作用下,過氧化氫可產(chǎn)生羥基自由基,從而引發(fā)自由基鏈?zhǔn)椒磻?yīng)。而超螺旋(SC)質(zhì)粒DNA在Fenton反應(yīng)體系中極易因氧化而使雙鏈斷裂形成開環(huán)(OC)或線性(L)結(jié)構(gòu)。在同一濃度的瓊脂糖凝膠中,超螺旋DNA分子遷移率比線性DNA分子快,線性DNA分子比開環(huán)DNA分子快[14]。由圖4可以看出,未加提取物的反應(yīng)組(Lane 2)在羥基自由基的作用下,DNA超螺旋結(jié)構(gòu)發(fā)生了嚴(yán)重的解螺旋現(xiàn)象,雙鏈斷裂形成了開環(huán)和線性結(jié)構(gòu)。而同Lane 2相比,加入100 ng CEOE的Lane 3的DNA超螺旋結(jié)構(gòu)僅發(fā)生部分?jǐn)嗔?,形成少許開環(huán)結(jié)構(gòu),且未發(fā)現(xiàn)線性DNA。此外,隨著CEOE濃度的增加,該保護(hù)作用呈現(xiàn)逐漸增強(qiáng)的趨勢(shì):當(dāng)提取物添加量達(dá)到300ng(Lane 5)時(shí),已不會(huì)出現(xiàn)解螺旋現(xiàn)象。這就說明該提取物可有效預(yù)防或者修復(fù)羥自由基誘導(dǎo)的DNA損傷。
圖4 CEOE/Trolox對(duì)羥基自由基誘導(dǎo)的DNA損傷的保護(hù)作用Fig.4 Protective effect of CEOE/Trolox on hydroxyl radical-induced DNA damage
本研究結(jié)果表明,椰子種皮油提取物(CEOE)可有效抑制因自由基或活性氧引發(fā)的蛋白質(zhì)羰基和氫過氧化物的增多,并具有一定的過氧化氫清除能力;同時(shí)該提取物還可以顯著預(yù)防和修復(fù)羥自由基誘導(dǎo)的DNA損傷;表現(xiàn)出了較好的抗氧化潛能,是一種值得開發(fā)的抗氧化劑資源。但是,提取物的主要成分以及其中發(fā)揮抗氧化作用的主要物質(zhì)組成和其抗氧化機(jī)理還有待進(jìn)一步研究。
[1] Guartea R C,Mühlbauerb W,Kellertc M.Drying characteristics of copra and quality of copra and coconut oil[J].Postharvest Biology and Technology.1996 9(3):361-372.
[2] Assa R R,Konan Konan J L,Prades A,et al.Physicochemical characteristics of kernel during fruit maturation of four coconut cultivars(Cocosnucifera L.)[J].African Journal of Biotechnology,2010,9(14):2 136-2 144.
[3] 段岢君,張玉鋒,王威,等.脫脂椰子種皮的蛋白質(zhì)功能性質(zhì)研究[J].熱帶作物學(xué)報(bào)2014,35(1):172-175.
[4] 王秀菊,王麗娟.異丙醇提取大豆油脂的研究[J].糧油加工,2008(6):48-50.
[5] Seneviratnea K N,HapuarachchIa C D,Ekanayakeb S.Comparison of the phenolic-dependent antioxidant properties of coconut oil extracted under cold and hot conditions[J].Food Chemistry,2009,114(4):1 444-1 449.
[6] CHENG F F,CHEN W J,HUANG Y L,et al.Protective effect of areca in orescence extract on hydrogen peroxideinduced oxidative damage to human serum albumin[J].Food Research International,2011,44(1):98-102.
[7] Levine R L,Wehr N,Williams J A,et al.Determination of carbonyl groups in oxidized proteins[J].Methods in Molecular Biology,2000,99:15-24.
[8] Gay C A,Gebicki J M.Perchloric acid enhances sensitivity and reproducibility of the ferric-xylenolorange peroxide assay[J].Analytical Biochemistry,2002,304(1):42-46.
[9] Gay C,Collins J,Gebicki J M.Hydroperoxide assay with the ferric-xylenol orange complex[J].Analytical Biochemistry,1999,273(2):149-155.
[10] WEI Q Y,ZHOU B,CAI Y J,et al.Synergistic effect of green tea polyphenols with trolox on free radical induced oxidative DNA damage[J].Food Chemistry,2006,96(1):90-95.
[11] Stadtman E R.Oxidation of free amino acids and residues in proteins by radiolysis and by metal-catalyzed reaction[J].Annual Review of Biochemistry,1993,62:797-821.
[12] Gieseg S,Duggan S,Gebichi J M.Peroxidation of proteins before lipids in U937 cells exposed to peroxyl radicals[J].Biochemical Journal,2000,350:215-218.
[13] Hyslop P A,Hinshaw D B,Halsey W A.et al.Mechanisms of oxidant-mediated cell injury.The glycolytic and mitochondrial pathways of ADP phosphorylation are major intracellular targets inactivated by hydrogen peroxide[J].The Journal of Biological Chemistry,1988,263:1 665-1 675.
[14] Henle E S,Han Z X,Tang N,et al.Sequence-specific DNA Cleavage by Fe2+-mediated Fenton reactions has possible biological implications[J].The Journal of Biological Chemistry,1999,274:962-971.