高云航,劉佳麗,王 巍,李秋菊,張福君,馬紅霞
(1.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,吉林 長春 130118;2.吉林正方農(nóng)牧股份有限公司,吉林 梅河 135000)
鴨疫里默氏菌(RA)是一種革蘭陰性短小桿菌。該菌引起的疾病稱鴨傳染性漿膜炎(Infectious serositis of duck)是家鴨、鵝、火雞等多種家禽和野禽的一種急性或慢性傳染病。其病理特征主要是纖維素性心包炎、肝周炎、氣囊炎、腦膜炎以及干酪性輸卵管炎、結(jié)膜炎、關(guān)節(jié)炎等。本病雛鴨較為敏感,往往引起雛鴨生長發(fā)育遲緩,惡劣的飼養(yǎng)環(huán)境可以促發(fā)本病感染。發(fā)病率與死亡率均較高,慢性耐過鴨主要表現(xiàn)神經(jīng)性癥狀,給養(yǎng)鴨業(yè)帶來了嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。OmpA蛋白族是革蘭陰性菌外膜的主要成分且較為保守[1],提純的外膜蛋白和表達(dá)的外膜蛋白具有良好的抗原性[2-7]。OmpA同樣為各血清型RA所共有的結(jié)構(gòu),在不同的血清型之間存在著差異,但這種差異不足以影響蛋白質(zhì)的抗原特性[8],因此可以作為保護(hù)多種血清型RA的亞單位疫苗的候選。白細(xì)胞介素-2(Interleukin-2,IL-2)是輔助性T細(xì)胞和NK細(xì)胞受絲裂原或抗原刺激后產(chǎn)生的一種重要細(xì)胞因子,是機(jī)體免疫調(diào)節(jié)中的核心物質(zhì)之一,目前,已有應(yīng)用IL-2的基因工程苗預(yù)防雞、鵝傳染病的相關(guān)報(bào)道,但關(guān)于IL-2的基因工程疫苗在鴨病中的應(yīng)用的報(bào)道較少。
本試驗(yàn)為了提高RA基因工程疫苗免疫效果,將RA OmpA基因與從健康鴨外周血淋巴細(xì)胞總RNA中擴(kuò)增出的DuIL-2基因,兩段基因以一段柔性linker相連,利用SOE-PCR技術(shù),構(gòu)建OmpA-DuIL-2融合基因,并進(jìn)行了原核表達(dá),經(jīng)Western-blot分析,表達(dá)出的融合蛋白同時(shí)具有OmpA和DuIL-2的免疫原性,并為進(jìn)一步開發(fā)和研制新型RA基因工程疫苗奠定了基礎(chǔ)。
1.1 菌株、質(zhì)粒和載體 大腸桿菌Rosetta(DE3),購自北京全式金生物技術(shù)有限公司;pET-28a表達(dá)載體由本實(shí)驗(yàn)室保存;pMD-JL-RA1-OmpA、pMD-DuIL-2重組質(zhì)粒由本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建并保存。
1.2 主要試劑 IPTG、卡那霉素、SDS、30%丙烯酰胺(29∶1)、Tris、TEMED、NC膜,購自北京鼎國昌盛生物技術(shù)有限責(zé)任公司;中分子量預(yù)染蛋白Marker、DAB顯色試劑盒,購自上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司;抗鴨IL-2單克隆抗體、HRP標(biāo)記羊抗鴨IgG、HRP標(biāo)記羊抗鼠IgG,購自美國KPL公司。
1.3 試驗(yàn)引物設(shè)計(jì) 根據(jù)吉林分離株JL-RA1 OmpA(登錄號HQ707077)設(shè)計(jì)特異性引物P1和P2,上游引入BamH I酶切位點(diǎn),下游引入一段互補(bǔ)的linker。DuIL-2成熟片段基因序列(登錄號AY193713)設(shè)計(jì)特異性引物P3和P4,上游引入另一段互補(bǔ)的linker,下游引入Hind III酶切位點(diǎn)。引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。
1.4 OmpA-linker、linker-DuIL-2基因的擴(kuò)增與純化OmpA-linker PCR反應(yīng)體系:pMD-JL-RA1-OmpA 0.5 μL,OmpA-P1 0.5 μL,OmpA-P2 0.5 μL,2.5 mmol/L dNTPs Mixture 2.0 μL,10×Pyrobest Buffer(Mg2+Plus)2.5 μL,Pyrobest DNA聚合酶(5 U/μL)0.15 μL,ddH2O 18.85 μL,總體積25 μL。PCR反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性1 min,51℃退火1 min,72℃延伸1 min,30個(gè)循環(huán);72℃再延伸10 min。
linker-DuIL-2 PCR反應(yīng)體系:pMD-DuIL-2 0.5 μL,DuIL-2-P3 0.5 μL,DuIL-2-P4 0.5 μL,2.5 mmol/L dNTPs Mixture 2.0 μL,10×Pyrobest Buffer(Mg2+Plus)2.5 μL,Pyrobest DNA聚合酶(5 U/μl)0.15 μL,ddH2O 18.85 μL,總體積25 μL。PCR反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性45 s,51℃退火45 s,72℃延伸1 min,30個(gè)循環(huán);72℃再延伸10 min。
PCR產(chǎn)物回收按照Axy Prep DNA凝膠回收試劑盒說明書進(jìn)行。
1.5 克隆載體pMD-OmpA-DuIL-2融合質(zhì)粒的構(gòu)建
1.5.1 SOE-PCR擴(kuò)增OmpA-DuIL-2融合基因OmpA-DuIL-2融合基因PCR反應(yīng)體系:linker-DuIL-2回收產(chǎn)物0.3 μL,OmpA-linker回收產(chǎn)物0.7 μL,OmpA-P1 0.5 μL,DuIL-2-P4 0.5 μL,2.5 mmol/L dNTPs Mixture 2.0 μL,10×Ex Taq Buffer(Mg2+Plus)2.5 μL,Ex Taq(5 U/μl)0.3 μL,ddH2O 18.2 μL,總體積25 μL。PCR反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性1 min,55℃退火1 min,72℃延伸1 min,30個(gè)循環(huán);72℃再延伸10 min。
1.5.2 pMD18-OmpA-DuIL-2重組表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建 將分離株分別按照Axy Prep DNA凝膠回收試劑盒說明書和pMD-18T Simple Vector說明書將進(jìn)行操作。并將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化DH-5α,涂布于含Amp的LB固體培養(yǎng)基中進(jìn)行篩選,并將陽性菌株用小量質(zhì)粒抽提試劑盒抽提質(zhì)粒,進(jìn)行PCR和酶切重組質(zhì)粒的鑒定。
1.6 原核表達(dá)載體pET-28a-OmpA-DuIL-2的制備 將重組質(zhì)粒pMD18-OmpA-DuIL-2和表達(dá)載體pET-28a分別以BamH I和Hind III雙酶切,OmpA-DuIL-2基因片段與pET-28a連接,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化E.coli DH-5α感受態(tài)細(xì)胞,提取質(zhì)粒,用BamH I和Hind III雙酶切鑒定、PCR鑒定。陽性質(zhì)粒由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司測序。
1.7 重組融合質(zhì)粒pET-28a-OmpA-DuIL-2的誘導(dǎo)表達(dá) 將測序正確重組質(zhì)粒pET-28a-OmpADuIL-2轉(zhuǎn)化E.coli Rosetta(DE3),37℃振蕩培養(yǎng)至OD600nm=0.7~0.8時(shí),加入IPTG進(jìn)行誘導(dǎo),取誘導(dǎo)后5 h菌液及空載體誘導(dǎo)5 h菌液,離心收集菌體,按比例加入一定量TE緩沖溶液懸浮菌體,超聲破碎儀裂解菌體10 min,革蘭染色檢測菌體裂解程度,有80%以上的菌體裂解后,分別收集上清和沉淀,進(jìn)行SDS-PAGE電泳分析。
1.8 表達(dá)產(chǎn)物Western-blot檢測 誘導(dǎo)表達(dá)5 h的融合菌體蛋白經(jīng)SDS-PAGE后,電轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,以RA陽性血清和鴨IL-2單克隆抗體分別為一抗,以HRP標(biāo)記羊抗鴨IgG、HRP標(biāo)記羊抗鼠IgG抗體為二抗,聯(lián)苯胺(DAB)為底物,進(jìn)行Western-blot分析。
2.1 OmpA-linker、linker-DuIL-2基因的擴(kuò)增序列擴(kuò)增結(jié)果 OmpA-linker基因PCR結(jié)果顯示,僅有一條目的條帶,大小約為1 182 bp,且無引物二聚體條帶,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物大小與預(yù)計(jì)目的片段大小相符;linker-DuIL-2基因PCR結(jié)果顯示,得到了大小約為381 bp的特異性DNA片段,與預(yù)期的目的片段的大小一致,見圖1。
2.2 OmpA-DuIL-2融合基因的克隆結(jié)果 運(yùn)用SOE-PCR技術(shù),以O(shè)mpA-P1和DuIL-2-P4,為一對引物,構(gòu)建OmpA-DuIL-2融合基因,經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,得到了大小約為1 551 bp的特異性DNA片段,與預(yù)期的目的片段的大小一致,見圖2。
2.3 重組融合表達(dá)載體PCR和酶切鑒定結(jié)果pET-OmpA-DuIL-2陽性質(zhì)粒經(jīng)PCR鑒定及BamH I、Hind III雙酶切鑒定,均得到了片段大小約為1 551 bp,結(jié)果表明,該融合基因已經(jīng)連接到表達(dá)載體pET-28a上,見圖3。
2.4 重組融合質(zhì)粒pET-OmpA-DuIL-2基因序列測定 陽性重組質(zhì)粒pET-OmpA-DuIL-2送往上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進(jìn)行雙向測序,結(jié)果與擴(kuò)增出OmpA和DuIL-2基因序列比對結(jié)果完全一致,沒有出現(xiàn)移位、缺失、突變及錯(cuò)配現(xiàn)象。
2.5 重組融合表達(dá)載體誘導(dǎo)表達(dá)結(jié)果 融合基因誘導(dǎo)表達(dá)產(chǎn)物SDS-PAGE電泳分析結(jié)果表明,在 OD600≈0.6~0.7,IPTG 終濃度為 1 mmol/L,誘導(dǎo)表達(dá)5 h,誘導(dǎo)菌經(jīng)超聲波破碎,檢測上清液和菌體沉淀中的蛋白含量,結(jié)果表明,表達(dá)的融合蛋白主要以包涵體的形式存在,存在于沉淀中。重組融合蛋白的分子量大小約為61 kDa,見圖4。
2.6 Western-blot檢測結(jié)果 以鴨疫里默氏菌陽性血清,鑒定OmpA表達(dá)情況,以抗鴨IL-2單克隆抗體鑒定DuIL-2的表達(dá)情況,結(jié)果表明,構(gòu)建的重組融合蛋白OmpA(圖5)和DuIL-2(圖6)均具有反應(yīng)原性。
大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)優(yōu)點(diǎn):遺傳背景清楚、培養(yǎng)操作簡單、目的基因表達(dá)水平高、培養(yǎng)周期短、成本低廉等特點(diǎn),是目前應(yīng)用最廣泛的表達(dá)系統(tǒng)。而pET系統(tǒng)是大腸桿菌中克隆和表達(dá)重組蛋白的首選。本試驗(yàn)以pET-28a為表達(dá)載體,但OmpA-DuIL-2在大腸桿菌BL21中并沒有表達(dá),推測可能與該段序列中含有較多大腸桿菌稀有密碼子有關(guān)。本試驗(yàn)將表達(dá)菌株大腸桿菌BL21換成具有可以補(bǔ)充大腸桿菌稀有密碼子Rosetta,經(jīng)IPTG誘導(dǎo)后,融合基因得到表達(dá)。
目前,已有不少學(xué)者對RA的表面免疫蛋白進(jìn)行了研究,并認(rèn)為OmpA基因是所有血清型的RA所共有的結(jié)構(gòu)基因,盡管其機(jī)理尚未完全清楚,但周祖濤[9]等用PCR方法擴(kuò)增了血清1型RAYM株的主要外膜蛋白OmpA基因,并構(gòu)建了原核表達(dá)載體pKG-OmpA,在大腸桿菌中進(jìn)行了高效表達(dá),融合蛋白大小約為68 kDa,Western-blot結(jié)果表明該表達(dá)蛋白具有良好的免疫原性。IL-2能有效的刺激機(jī)體產(chǎn)生細(xì)胞免疫和體液免疫,是世界公認(rèn)的機(jī)體免疫調(diào)節(jié)中的核心物質(zhì)之一,因此,IL-2是保障機(jī)體正常免疫功能的重要因素。IL-2具有一定的種屬特異性,家禽的IL-2不能作用于人和其他哺乳動(dòng)物。目前,已有應(yīng)用IL-2的基因工程苗預(yù)防雞、鵝傳染病的相關(guān)報(bào)道,但關(guān)于IL-2的基因工程疫苗在鴨病中的應(yīng)用的報(bào)道較少。張欣[13]等成功的擴(kuò)增出廣州白鴨IL-2成熟蛋白基因,并進(jìn)行了原核表達(dá),經(jīng)SDS-PAGE和Western-blot分析,蛋白分子量大小約為33 kDa,具有促進(jìn)淋巴細(xì)胞增殖的活性。說明,鴨IL-2能夠在原核表達(dá)系統(tǒng)中成功大量表達(dá),但鮮有鴨IL-2在免疫增強(qiáng)劑方面作用的報(bào)道。
為提高鴨疫里默氏菌疫苗的免疫保護(hù)力,本試驗(yàn)將IL-2應(yīng)用于RA的OmpA基因工程疫苗中。將RA OmpA基因與DuIL-2基因融合,OmpA去掉終止密碼子TAA,加入一段由12個(gè)氨基酸組成的柔性linker,連接DuIL-2基因,組成OmpADuIL-2融合基因。經(jīng)SDS-PAGE分析,融合蛋白加上His標(biāo)簽分子量大小約為61 kDa,融合蛋白主要以包涵體形式存在。為證明組成的融合蛋白否能影響RA外膜蛋白的免疫原性和鴨IL-2的活性,本試驗(yàn)分別用鴨疫里默氏菌陽性血清和抗鴨IL-2單克隆抗體為Western-blot的一抗,經(jīng)Western-blot分析結(jié)果表明,OmpA基因和鴨IL-2基因融合基因表達(dá)的產(chǎn)物具有較好的外膜蛋白抗原性和鴨IL-2免疫原性。但是本研究中OmpA-DuIL-2融合基因的表達(dá)量偏低,推測可能與該融合基因含多量大腸桿菌稀有密碼子Rosetta有關(guān),這就需要進(jìn)一步探索提高其表達(dá)量的方法。
[1]Weiser J N,Gotschlich E C.Outer membrane Protein A(OmpA)contributes to serum resistance and pathogenicity of Escherichia coli k-l[J].Infect immune,1991,59(7):2252-2258.
[2]Sergio S.Characterization of serotypes and outer membrane protein profiles in Enteroaggregative Escherichia coli strains[J].Microbiol Immunol,1999,43(3):210-205.
[3]李福勝,趙鳳蘭,胡軍,等.鼠傷寒沙門氏桿菌外膜蛋白免疫原性及免疫保護(hù)性的研究[J].中華微生物和免疫學(xué)雜志,1993,13(3):156-158.
[4]Gatto N T,Dabo S M,Hancock R E.Characterization of,and immune responses of mice to the purified OmpA2equivalent outer membrane protein of Pasteurella multocida serotype[J].Vet Microbiol,2002,87:221-235.
[5]Wlertz E J,Delvig A,Donders E M.T2cell responses to outer membrane proteins of Neissena meningilidis:comparative study of the Opa,Opc,and PorA proteins[J].Infect Immun,1996,64(l):298-304.
[6]Hiroya Ito.Ikuo Uchida.Molecular cloning of an Actinobacillus pleuropneurnoniae outer membrane lipoprotein(OmpA)from serotype 5a[J].Microbial Pathogenesis,1995,18:29-36.
[7]Granoff D M,Munson R S.Prospects for prevention of HaemopHilus influenzae type disease by immunization[J].J Infect Dis,1986,153:448-461.
[8]Sumat hi Subramaniam,Huang B,Loh H,et al.Characterization of a Predominant Immunogenic Outer Membrane Protein of Riemerella anatipestifer[J].Clinical And Diagnostic Laboratory Immunlogy,2000,7(2):168-174.
[9]周祖濤,陳芬芬,李自力,等.鴨疫里默氏桿菌OmpA基因的克隆與表達(dá)[J].中國獸醫(yī)學(xué)報(bào),2008,28(1):20-23.
[10]張欣,崔敏,房紅瑩,等.鴨白細(xì)胞介素-2基因克隆、原核表達(dá)及生物學(xué)活性檢測[J].華南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2008,29(4):83-86.