歐陽霞輝,侯蘭新,高丹丹,陳 紅
(西北民族大學(xué) 生命科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅 蘭州730030)
在哺乳動物中,雌激素及其受體既影響乳腺、子宮和卵巢等生殖系統(tǒng)的生長、分化及功能,又對骨骼、心血管系統(tǒng)和中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)揮作用[1].雌激素受體一旦與雌激素結(jié)合,就會發(fā)生變構(gòu)形成二聚體,然后與雌激素受體反應(yīng)元件(estrogen response element,ERE)結(jié)合,刺激靶基因轉(zhuǎn)錄,從而調(diào)節(jié)雌激素促進細(xì)胞增生、分化和維持正常的生理功能[2].ERR(Estrogen related receptor,ERR)屬于孤兒核因子受體,在結(jié)構(gòu)上和ER非常類似,它們和ER共同構(gòu)成核因子受體超家族的第三亞族,能夠直接與類固醇受體共激活子結(jié)合激活靶基因的表達 .與ER不同的是,它們不與雌激素結(jié)合,但能夠與雌激素應(yīng)答元件結(jié)合[3],表明在與共同的共激活子作用時它們之間存在相互競爭作用[4].
哺乳動物ERRs存在于ERs存在的多種靶器官和組織 .對鼠類的研究發(fā)現(xiàn),ERRα在各種胚胎組織中都有表達,在胚胎干細(xì)胞中也能檢測到ERRαmRNA的表達,表明ERRα與眾多生理和發(fā)育過程有關(guān) .幾乎在老鼠每一種成體組織中都有ERRα表達,而且在大腦、心臟、骨骼肌、腎、精巢和子宮等部位有高度表達[5,6].ERRα在ERα存在的丘腦和視丘下部和垂體前葉也有表達,推測它也可能參與了生殖調(diào)控,對ERα的表達起反饋調(diào)節(jié)作用[5].ERRβ的mRNA表達從原始生殖細(xì)胞遷移到生殖脊開始,一直持續(xù)到兩性性別出現(xiàn),ERRβ缺失引起生殖腺生殖細(xì)胞的數(shù)量明顯減少,表明ERRβ明顯參與了生殖腺生殖細(xì)胞的增殖[7].
盡管對哺乳動物ERR的研究比較深入,但在昆蟲類,雖然Genebank中存在一些昆蟲ERR的序列,也有對黑腹果蠅dERR配體的研究報道[8],但是有關(guān)ERR功能的研究很少 .何慧等對黃臉油葫蘆雌激素相關(guān)受體TeERR的研究也發(fā)現(xiàn),TeERR與黃臉油葫蘆的發(fā)育有關(guān),在幼蟲的胚胎期和生殖腺表達量很高[9].為了了解pvERR在性腺中的表達情況,我們采用原位雜交技術(shù)對擬黑多刺蟻蟻后卵巢中和雄蟻精巢中pvERR mRNA的表達進行了定位研究,以期為進一步的功能研究奠定基礎(chǔ).
以本實驗室飼養(yǎng)的擬黑多刺蟻(Polyrhachis vicina)蟻后和雄蟻為研究對象 .飼養(yǎng)條件:溫度25~28℃,相對濕度80%,光周期12L∶12D.飼料為20%的白糖水和豆餅菜葉.采用經(jīng)過消毒的刀片迅速分別將蟻后、雄蟻的腹部切下,立即放入含有0.1%DEPC的多聚甲醛固定液中固定8h.
擬黑多刺蟻ERR原位雜交試劑盒(訂制)購自武漢博士德生物工程公司,試劑盒包括:胃蛋白酶;預(yù)雜交液;ERR寡核苷酸探針雜交液(根據(jù)所測擬黑多刺蟻ERR序列設(shè)計,5'-tgaagcatatctggctcgcaagctgctaaggc-3',地高辛標(biāo)記),封閉液,生物素化鼠抗地高辛,SABC,生物素化過氧化物酶.
將固定好的材料放入30%蔗糖溶液中于4℃過夜,用冰凍包埋劑包埋,切片 .切片厚15μm,將切片粘于載玻片上,晾干備用 .實驗流程如下:①洗滌 .將貼有材料的載玻片置于高壓滅菌的0.1%DEPC水中充分洗滌.②封閉內(nèi)源性酶:切片入0.3%H2O2室溫處理30min,0.1%DEPC水洗3次.③暴露mRNA核酸片段:切片上滴加3%檸檬酸新鮮稀釋的胃蛋白酶,37℃消化5min.原位雜交用PBS洗3次,每次5min.④后固定:切片入1%多聚甲醛(含有0.1%DEPC)室溫固定10min,0.1%DEPC水洗3次.⑤預(yù)雜交:每張切片滴加20μL預(yù)雜交液,恒溫箱40℃預(yù)雜交4h.⑥雜交:每張切片滴加20μL雜交液,恒溫箱中40℃雜交過夜.⑦雜交后洗滌:37℃2×SSC洗5min×2次;37℃,0.5×SSC洗15min×1次;37℃0.2×SSC洗15min×2次.⑧滴加封閉液:37℃,30min.⑨滴加生物素化鼠抗地高辛:37℃,60min,原位雜交用PBS洗4次,每次5min.⑩滴加SABC:37℃,30min,原位雜交用PBS洗3次,每次5min.[11]滴加生物素化過氧化物酶:37℃,30min,原位雜交用PBS洗4次,每次5min.[12]DAB顯色:鏡下控制反應(yīng)時間,一般5~10min,蒸餾水終止反應(yīng) .梯度酒精脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片.Leica光學(xué)顯微鏡觀察.
陰性對照實驗是以預(yù)雜交液代替雜交液進行,其余步驟同上.
應(yīng)用Leica QWinV3圖像分析系統(tǒng)分別統(tǒng)計陽性反應(yīng)的平均灰度值(灰度分級為0~255級,0級為最黑的灰度,255級為最淺的灰度).精巢和卵巢分別取5張組織切片,每張切片取6個視野,統(tǒng)計灰度值,應(yīng)用SPSS 11.5的one-way ANOVA進行統(tǒng)計學(xué)分析 .數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布,經(jīng)方差齊性檢驗后進行單因素方差分析,并進行LSD檢驗.
采用地高辛標(biāo)記的特異寡核苷酸探針雜交結(jié)果顯示,pvERR mRNA在分化期早期的濾泡細(xì)胞胞質(zhì)中就有表達,一直持續(xù)到卵黃積累階段(圖版Ⅰ,1-4);生長期和卵黃形成期的卵母細(xì)胞胞質(zhì)中有pvERR mRNA陽性反應(yīng)(圖版Ⅰ,3-4).
變形期精細(xì)胞胞質(zhì)有pvERR mRNA陽性反應(yīng)(圖版Ⅱ,1).成熟精子的頭部和尾部有不同程度的pvERR mRNA陽性表達(圖版Ⅱ,2-3).
以預(yù)雜交液代替雜交液的對照實驗結(jié)果為陰性(圖版Ⅰ,5-6;圖版Ⅱ,4).
結(jié)果表明,卵子發(fā)生中,pvERR mRNA在濾泡細(xì)胞各個時期的表達差異顯著 .在生長期和卵黃形成期的卵母細(xì)胞表達差異顯著 .卵黃形成期卵母細(xì)胞和濾泡細(xì)胞中的表達差異不顯著(表1).精巢中,pvERR mRNA在變形期精細(xì)胞和成熟精子頭部和尾部的表達差異顯著(表1).
表1 擬黑多刺蟻精卵發(fā)生過程中pvERR mRNA原位雜交陽性反應(yīng)灰度值
圖1 pvERR mRNA在擬黑多刺蟻卵巢中的表達
昆蟲的生殖雖然受外界環(huán)境因子的影響,但主要受昆蟲體內(nèi)的內(nèi)分泌系統(tǒng)調(diào)節(jié) .外在因素的作用,常先刺激昆蟲的感受器官,所產(chǎn)生的沖動傳入神經(jīng)系統(tǒng),由此影響內(nèi)分泌系統(tǒng)的活動,內(nèi)分泌系統(tǒng)的化學(xué)信息傳遞到生殖器官,使后者產(chǎn)生相應(yīng)的生理反應(yīng),生殖腺的活動又能對內(nèi)分泌系統(tǒng)產(chǎn)生反饋式調(diào)節(jié)作用[10].在昆蟲腦中存在促性腺激素(Gonadotrophins,GtH),昆蟲性腺成熟及精卵成熟也依賴腦分泌的促性腺激素調(diào)節(jié),它能誘導(dǎo)卵巢和精巢合成蛻皮激素,而蛻皮激素能夠促使脂肪體合成卵黃原蛋白、卵胞細(xì)胞的分化以及刺激精子的發(fā)生[11~14].
擬黑多刺蟻卵巢屬于多滋式 .滋養(yǎng)細(xì)胞和卵母細(xì)胞都是由早期的卵原細(xì)胞通過有絲分裂產(chǎn)生,一個卵母細(xì)胞周圍有幾十個滋養(yǎng)細(xì)胞 .滋養(yǎng)細(xì)胞通過染色體大量復(fù)制,使其轉(zhuǎn)錄活性升高,合成大量rRNA、mRNA,甚至完整的核糖體,并通過細(xì)胞質(zhì)橋單向運輸給處在發(fā)育階段的卵母細(xì)胞 .在卵母細(xì)胞發(fā)育的一定階段滋養(yǎng)細(xì)胞分解,分解產(chǎn)物進入卵母細(xì)胞 .濾泡細(xì)胞是體細(xì)胞,卵子發(fā)生早期階段,夾雜在生殖細(xì)胞之間 .隨著卵母細(xì)胞的發(fā)育,它包圍在卵母細(xì)胞和滋養(yǎng)細(xì)胞周圍形成濾泡壁 .濾泡細(xì)胞不僅為卵母細(xì)胞提供營養(yǎng)物質(zhì)的積累,并形成卵黃膜和卵殼,并且在卵母細(xì)胞發(fā)育的過程中提供發(fā)育信息[15].
圖2 pvERR mRNA在擬黑多刺蟻精巢中的表達
本研究中原位雜交結(jié)果顯示,pvERR mRNA在卵子發(fā)生過程中濾泡細(xì)胞的胞質(zhì)都有陽性表達.隨著卵母細(xì)胞的生長,濾泡細(xì)胞中的表達量逐漸增加 .在卵黃積累階段,pvERR mRNA的表達量顯著減少 .而在卵母細(xì)胞,pvERR mRNA在生長期和卵黃發(fā)生期表達,表達量是逐漸增加的 .在卵子發(fā)生分化階段,隨著滋養(yǎng)細(xì)胞和卵母細(xì)胞分化,濾泡細(xì)胞不斷增殖分裂,所以該時期pvERR mRNA的陽性表達可能與濾泡細(xì)胞自身的增殖和分化有關(guān) .卵母細(xì)胞生長期和卵黃積累階段,濾泡細(xì)胞和卵母細(xì)胞中pvERR mRNA的陽性表達趨勢(濾泡細(xì)胞中逐漸減少,卵母細(xì)胞中逐漸增多)可能說明濾泡細(xì)胞給卵母細(xì)胞提供了發(fā)育信息 .卵黃生成期卵母細(xì)胞中pvERR mRNA的表達可能說明pvERR與卵黃物質(zhì)的形成有關(guān) .蛻皮激素受體通過信號通路調(diào)控卵母細(xì)胞的發(fā)育,控制卵黃蛋白的合成[16~18].而研究表明,蛻皮激素受體和雌激素受體的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑非常相似[19~20],所以推測pvERR可能也是通過蛻皮激素受體信號通路來發(fā)揮作用的.
昆蟲精子的發(fā)生一般包括三個階段:第一階段主要在胚胎發(fā)育時就已經(jīng)完成,指精原干細(xì)胞在遷移到生殖嵴途中及生殖嵴中進行多次有絲分裂,精原干細(xì)胞的數(shù)目增加;第二階段指幼蟲期的精原干細(xì)胞經(jīng)過增殖和更新成精原細(xì)胞,精原細(xì)胞經(jīng)過兩次連續(xù)的減數(shù)分裂產(chǎn)生四個精子細(xì)胞;第三階段是精子形成期,大多數(shù)種類在成蟲羽化時已經(jīng)有成熟的精子 .在成熟的擬黑多刺蟻雄蟻精巢,本研究中沒有觀察到精子發(fā)生早期的精原細(xì)胞和精母細(xì)胞,可能說明在變態(tài)為成蟲之前精子發(fā)生就已經(jīng)開始,生精細(xì)胞發(fā)育的同步性比較高.通過原位雜交發(fā)現(xiàn),變形期的精細(xì)胞胞質(zhì)和成熟精子頭部有很強的pvERR mRNA表達,說明pvERR可能參與了精細(xì)胞的發(fā)育調(diào)控和精子的成熟 .對東亞飛蝗體外抑制實驗研究發(fā)現(xiàn),蛻皮激素對于飛蝗精子發(fā)生是必需的,能夠保證產(chǎn)生正常發(fā)育的精細(xì)胞和精子[16].所以推測pvERR可能通過蛻皮激素受體信號途徑對精子進行調(diào)控.
采用地高辛標(biāo)記的特異性寡核苷酸探針對擬黑多刺蟻性腺中pvERR mRNA的表達進行了原位雜交檢測,結(jié)果顯示:pvERR mRNA在卵子發(fā)生過程中濾泡細(xì)胞的胞質(zhì)和生長期、卵黃發(fā)生期的卵母細(xì)胞有表達,在變形期的精細(xì)胞胞質(zhì)和成熟精子頭部有很強的表達 .在卵子發(fā)生分化階段,pvERR mRNA的陽性表達可能與濾泡細(xì)胞自身的增殖和分化有關(guān) .卵母細(xì)胞生長階段,濾泡細(xì)胞和卵母細(xì)胞中pvERR mRNA的表達模式可能說明濾泡細(xì)胞給卵母細(xì)胞提供了發(fā)育信息,而卵黃生成期卵母細(xì)胞中pvERR mRNA的表達可能說明pvERR與卵黃物質(zhì)的形成有關(guān) .變形期的精細(xì)胞胞質(zhì)和成熟精子頭部pvERR mRNA的表達,說明pvERR可能參與了精細(xì)胞的發(fā)育調(diào)控和精子的成熟.
[1]焦園園,葉棋濃,黃翠芬.細(xì)胞膜雌激素受體研究進展[J].腫瘤研究與臨床,2004,16(2):128-130.
[2]馬蘭,張一娜,李穎.雌激素對大腦皮質(zhì)細(xì)胞的神經(jīng)保護作用[J].中國臨床康復(fù),2004,8(7):1280-1282.
[3]Giguère V,Yang N,Segui P,et al.Identification of a new class of steroid hormone receptors[J].Nature,1988,331(6151):91-94.
[4]Fujimoto J,Nakagawa Y,Toyoki H,et al.Estrogen-related receptor expression in placenta throughout gestation[J].Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology,2005,94(1-3):67-79.
[5]Bonnelye E,Vanacker J M,Spruyt N,et al.Expression of the estrogen-related receptor 1(ERR-1)orphan receptor during mouse development[J].Mechanics of Development,1997a,65:71-85.
[6]Giguère V.To ERR in the estrogen pathway[J].Trends in Endocrinology and Metabolism,2002,13:220-225.
[7]Mitsunaga K,Araki K,Mizusaki H,et al.Loss of PGC-specific expression of the orphan nuclear receptor ERRβresults in reduction of germ cell number in mouse embryos[J].Mechanics of Development,2004,121(3):237-246.
[8]Ostberg T,Jacobsson M,Attersand A,et al.A triple mutant of the Drosophila ERR confers ligand-induced suppression of activity[J].Biochemistry,2003,42(21):6427-6435.
[9]He H,Xi G,Lu X.2010.Molecular cloning,characterization,and expression analysis of an estrogen receptor-related receptor homologue in the cricket,Teleogryllus emma[J].Journal of Insect Science,10:188.
[10]郭郛.關(guān)于昆蟲的激素控制生殖的一些問題[J].昆蟲知識,1963,1:31-36.
[11]Davey K G.Hormonal controls on reproduction in female hetero[J].Insect Biochemistry and physiology,1997,35:443-453.
[12]Kozhanova N.Hormonal regulation of gametogenesis in insect[J].Tsitologiia,2000,42(2):115-127.
[13]Loeb M J,De Loof A,Gelman D B,Hakim R S,Jaffe H,Kochansky J P et al.Testis ecdysiotropin,an insect gonasotropin that induces synthesis of ecdysteroid[J].Archives of Insect Biochemistry and Physiology,2001,47(4):181-188.
[14]Siga S.Anatomy and functions of brain neurosecretory cells in diptera[J].Microscopy Research and Technique,2003,62(2):114-131.
[15]楊佐娟,何建平.昆蟲卵子發(fā)生過程中細(xì)胞凋亡的研究進展[J].昆蟲知識,2006,43(4):447-452.
[16]趙國秀,奚耕思.神經(jīng)激素對蝗蟲配子發(fā)生的影響[J].陜西師范大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2004,32(sup):60-66.
[17]Carney G E,Bender M.The drosophila ecdysone receptor(EcR)gene is required maternally for normal oogenesis[J].Genetics,2000,154(3):1203-1211.
[18]Sun X,Song Q,Barrett B.Effect of ecdysone agonists on vitellogenesis and the expression of EcR and USP in codling moth(Cydia pomonella)[J].Archives of Insect Biochemistry and Physiology,2003,52(3):115-129.
[19]Martinez E,Givel F,Wahli W.A common ancestor DNA motif for invertebrate and vertebrate hormone response elements[J].The EMBO Journal,1991,10(2):263-268.
[20]Cherbas L,Lee K,Cherbas P.Identification of ecdysone response elements by analysis of the Drosophila Eip28/29 gene[J].Genes and Development,1991,5(1):120-31.