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      土壤中抗生素殘留對(duì)土壤微生物活性與功能的影響

      2014-10-23 11:24:07袁德梽
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2014年8期
      關(guān)鍵詞:呼吸氨化抗生素

      袁德梽

      摘要:通過研究抗生素殘留對(duì)土壤呼吸以及氨化的作用,以探討抗生素對(duì)土壤微生物活性與功能的影響。結(jié)果表明,3種抗生素殘留對(duì)土壤呼吸有不同程度的抑制作用,最大抑制率為15%,并且隨著時(shí)間延長(zhǎng)和濃度升高,呼吸抑制效果更加明顯??股貧埩魧?duì)土壤氨化起抑制作用,土壤銨態(tài)氮含量呈先增加后降低再增加的趨勢(shì),處理3 d后土壤銨態(tài)氮含量最高,抑制率在90%~99%。由此可見,土壤抗生素殘留對(duì)土壤微生物活性功能有很大影響,對(duì)土壤抗生素的生態(tài)毒理性研究很有必要。

      關(guān)鍵詞:抗生素;土壤;微生物活性;呼吸;氨化

      中圖分類號(hào):S154.3 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A

      文章編號(hào):1002-1302(2014)08-0319-03

      抗生素是世界上用量最大、使用最廣泛的藥物之一。全球抗生素年均使用總量為10萬~20萬t,我國每年有成千上萬噸的抗生素類藥物被用于畜禽養(yǎng)殖。含有殘留獸藥的糞便作為有機(jī)肥施入農(nóng)田,造成土壤污染,對(duì)人類健康和生態(tài)系統(tǒng)產(chǎn)生潛在危害。養(yǎng)殖業(yè)使用的主要獸藥種類為抗生素類藥物,且用量逐年增加,目前土壤中獸藥殘留濃度范圍為 μg/kg 級(jí)到g/kg級(jí)。本試驗(yàn)在總結(jié)國內(nèi)外相關(guān)研究的基礎(chǔ)上,重點(diǎn)研究抗生素殘留對(duì)土壤微生物群落功能和結(jié)構(gòu)的影響[1]。

      1 材料與方法

      1.1 抗生素標(biāo)準(zhǔn)樣品

      本試驗(yàn)主要針對(duì)4種抗生素進(jìn)行研究,分別是四環(huán)素類四環(huán)素(tetracycline,純度為98%)、金霉素(CTC,純度為95%),喹諾酮類諾氟沙星(BR,純度為99%),以上均產(chǎn)自上海卒瑞生物科技有限公司;喹諾酮類環(huán)丙沙星(Ciprofloxacin hydrochloride,98%),產(chǎn)自阿拉丁試劑有限公司。

      1.2 抗生素標(biāo)準(zhǔn)溶液配制

      2 000 μg/mL標(biāo)準(zhǔn)溶液:取100 mg抗生素加入蒸餾水中,并定容至50 mL。取1.25 mL標(biāo)準(zhǔn)溶液定容至25 mL,配制濃度為1 μg/g;量取6.25 mL標(biāo)準(zhǔn)溶液定容至25 mL,配制濃度為5 μg/g;取12.5 mL標(biāo)準(zhǔn)溶液定容至25mL,配制濃度為10 μg/g。

      1.3 氨化培養(yǎng)基的配制

      (1)液體培養(yǎng)基:取磷酸氫二鉀0.5 g,氯化鈉1 g,七水合硫酸鎂0.25 g,硫酸亞鐵0.2 g,葡萄糖2.5 g,硫酸銨1.0 g,加入水中,并定容至500 mL,調(diào)節(jié)pH值至7.2~7.4,在滅菌鍋中120 ℃滅菌30 min。

      (2)0.2%蛋白胨:將1 g蛋白胨粉末加入水中,并定容至500 mL,在滅菌鍋中120 ℃滅菌30 min。

      1.4 抗生素污染土壤配制與模擬

      1.4.1 供試土壤及前處理

      試驗(yàn)土壤采集于重慶三峽職業(yè)學(xué)院校園內(nèi),將采集后的土壤過20目篩,去除雜質(zhì),并風(fēng)干 1 d,常溫保存。

      1.4.2 土壤含水率的選擇與確定

      經(jīng)測(cè)定原土壤含水率約為10%,取土樣80 g即含8 g水、72 g干土。在80 g土壤中分別加入10、15、21、29 mL水,使其含水率分別為15%、20%、30%、40%。

      1.5 土壤呼吸作用的測(cè)定

      測(cè)定土壤微生物呼吸最常用的方法是直接吸收法,具體的試驗(yàn)步驟為:稱50 g的供試土壤放在100 mL的廣口瓶中,共20份,然后向土壤中添加4種抗生素,分別是四環(huán)素、金霉素、諾氟沙星和環(huán)丙沙星,并且保證4種抗生素的濃度均為0、1、5、25、50 mg/kg等5個(gè)處理,其中0 mg/kg處理作為對(duì)照,同時(shí)5個(gè)處理均設(shè)1個(gè)重復(fù)。同時(shí)將盛放有5 mL的0.1 mol/L氫氧化鈉溶液的小玻璃瓶放在一個(gè)密閉容器的底部,然后將廣口玻璃瓶進(jìn)行密封。將密封好的廣口玻璃瓶放入恒溫為 25 ℃ 的人工培養(yǎng)箱中1、3、5、7、9、11 d,在盛有氫氧化鈉的高型燒杯中加入1 mL的1 mol/L氯化鋇溶液,另外加入2~3滴酚酞試劑,以起到指示劑的作用,運(yùn)用0.05 mol/L鹽酸滴定來觀察酚酞的變化,并記錄鹽酸的消耗量,同時(shí)換盛有新鮮氫氧化鈉溶液的小玻璃瓶[2]。

      1.6 土壤氨化作用的測(cè)定

      測(cè)定土壤氨化作用的具體步驟為:先取5支500 mL的三角瓶,稱取100 g的供試土壤分別放入每支三角瓶中,然后加入5 mL用于滅菌的濃度為0.2%蛋白胨以及2 mL的氨化菌液體培養(yǎng)基,并分別加入四環(huán)素、金霉素、諾氟沙星,使其終濃度分別為0(CK)、1、5、10、20 μg/g土,最終土 ∶水=3 ∶1。把上述5支三角瓶均塞上棉塞后放入恒溫為28 ℃的培養(yǎng)箱。然后進(jìn)行康維皿擴(kuò)散試驗(yàn):首先從三角瓶中稱取土壤20 g,向土壤中加入80 mL的1 mol/L氯化鉀溶液,將加入溶液的土壤振蕩浸提1 h后進(jìn)行過濾,過濾后吸取濾液4 mL放在康維皿外室,在中心小室加入0.1 mol/L硫酸 2 mL。蓋上皿蓋,留1個(gè)小孔,然后快速用滴管從小孔中加入40%氫氧化鈉溶液1 mL。蓋緊瓶蓋后,將康維皿進(jìn)行搖動(dòng),然后放入溫度為 40 ℃ 的恒溫箱4 h,將10 mL的蒸餾水滴入中心小室,然后分4次將溶液轉(zhuǎn)移到50 mL的容量瓶中。鈉氏試劑顯色的方法與銨態(tài)氮標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制有異曲同工之妙,對(duì)照標(biāo)準(zhǔn)曲線每3 d測(cè)定1次,一共需要測(cè)定6次[3]。

      1.7 銨態(tài)氮標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制方法

      取6支25 mL的容量瓶,分別放入0、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 mL的銨態(tài)氮標(biāo)準(zhǔn)溶液,然后以蒸餾水進(jìn)行稀釋,稀釋到10 mL,在溶液中再分別加入0.8 mL的鈉氏試劑并將溶液搖勻。向每個(gè)容量瓶中緩慢加入4 mL的1 mol/L氫氧化鈉溶液,待鈉氏試劑顯色后稀釋至刻度。10 min過后,在分光光度計(jì)上波長(zhǎng)460 nm的地方測(cè)定其吸光度。在繪制曲線時(shí)以銨態(tài)氮濃度為縱坐標(biāo),以吸光度為橫坐標(biāo)。endprint

      2 結(jié)果與分析

      2.1 抗生素殘留對(duì)土壤呼吸作用的影響

      由圖1可知,4種不同濃度的四環(huán)素殘留對(duì)土壤呼吸均表現(xiàn)為抑制作用,并且抗生素殘留濃度越大,抑制水平相對(duì)越高。同時(shí),四環(huán)素殘留在土壤中總體表現(xiàn)前9 d抑制能力較弱,9 d后抑制能力較強(qiáng),11 d后對(duì)土壤呼吸作用的抑制作用最強(qiáng),抑制率在5%~15%。

      3 結(jié)論

      4種不同濃度的抗生素殘留對(duì)土壤呼吸作用基本表現(xiàn)出抑制作用,并且抗生素殘留濃度越大,抑制水平相對(duì)越高。同時(shí),抗生素殘留在土壤中總體表現(xiàn)前 7 d抑制能力較弱, 7 d后土壤呼吸抑制能力較強(qiáng)。并且土壤中抗生素添加濃度越大,其對(duì)土壤呼吸抑制作用就越強(qiáng),抑制效果越明顯。其中,四環(huán)素對(duì)土壤呼吸主要起到抑制的作用;金霉素在處理后的處理1、7 d表現(xiàn)為激活作用,但是其他時(shí)間對(duì)土壤呼吸作用均起抑制作用;諾氟沙星在濃度較低時(shí)對(duì)土壤呼吸作用起到抑制作用,但在濃度較高時(shí)對(duì)土壤呼吸作用起到激活作用,在進(jìn)行處理15 d后,所有經(jīng)過處理的微生物呼吸作用都基本上恢復(fù)到了對(duì)照水平,表明微生物對(duì)其能夠產(chǎn)生適應(yīng)性[4]

      抗生素殘留對(duì)土壤氨化在1~3 d內(nèi)促進(jìn)作用明顯,3 d以后銨態(tài)氮含量逐漸減少。四環(huán)素和金霉素殘留對(duì)土壤氨化有刺激作用,而諾氟沙星殘留則會(huì)對(duì)其起抑制作用。6 d后四環(huán)素和諾氟沙星殘留對(duì)土壤氨化有一定的刺激作用,金霉素殘留會(huì)抑制土壤的氨化作用。四環(huán)素殘留對(duì)土壤氨化作用有刺激作用,而諾氟沙星和金霉素殘留則會(huì)對(duì)其起抑制作用。土壤氨化作用強(qiáng)度與土壤的供氮能力在一定程度上有很大關(guān)系。因此,如果土壤中抗生素殘留一直保持較高濃度,會(huì)大大影響土壤的供氮能力[5]。

      參考文獻(xiàn):

      [1]王金花,朱魯生,王 軍,等. 4種典型抗生素對(duì)土壤微生物呼吸的影響[J]. 農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2011,30(11):2232-2236.

      [2]Beyer L. Intersite characterization and variability of soil respiration in different arable and forest soils[J]. Biology and Fertility of Soils,1991,12:122-126.

      [3]Buyanovsky G A,Wagner G H,Gantzer C J. Soil respiration in a winter wheat ecosystem[J]. Soil Science Society of America Journal,1986,50:338-344.

      [4]Zelles L,Bahig M E. Measurement of bioactivity based on CO2-released and ATP content in soil after different treatments[J]. Chemosphere,1984,13(8):899-913.

      [5]Zhu L S,Zhang Y F,F(xiàn)an D F,et al. Study on the effects of phoxim,fenpropathrin and its mixture on respiration of soil microbe[J]. A Groenvironmental Protection,1999,18(1):25-27.endprint

      2 結(jié)果與分析

      2.1 抗生素殘留對(duì)土壤呼吸作用的影響

      由圖1可知,4種不同濃度的四環(huán)素殘留對(duì)土壤呼吸均表現(xiàn)為抑制作用,并且抗生素殘留濃度越大,抑制水平相對(duì)越高。同時(shí),四環(huán)素殘留在土壤中總體表現(xiàn)前9 d抑制能力較弱,9 d后抑制能力較強(qiáng),11 d后對(duì)土壤呼吸作用的抑制作用最強(qiáng),抑制率在5%~15%。

      3 結(jié)論

      4種不同濃度的抗生素殘留對(duì)土壤呼吸作用基本表現(xiàn)出抑制作用,并且抗生素殘留濃度越大,抑制水平相對(duì)越高。同時(shí),抗生素殘留在土壤中總體表現(xiàn)前 7 d抑制能力較弱, 7 d后土壤呼吸抑制能力較強(qiáng)。并且土壤中抗生素添加濃度越大,其對(duì)土壤呼吸抑制作用就越強(qiáng),抑制效果越明顯。其中,四環(huán)素對(duì)土壤呼吸主要起到抑制的作用;金霉素在處理后的處理1、7 d表現(xiàn)為激活作用,但是其他時(shí)間對(duì)土壤呼吸作用均起抑制作用;諾氟沙星在濃度較低時(shí)對(duì)土壤呼吸作用起到抑制作用,但在濃度較高時(shí)對(duì)土壤呼吸作用起到激活作用,在進(jìn)行處理15 d后,所有經(jīng)過處理的微生物呼吸作用都基本上恢復(fù)到了對(duì)照水平,表明微生物對(duì)其能夠產(chǎn)生適應(yīng)性[4]

      抗生素殘留對(duì)土壤氨化在1~3 d內(nèi)促進(jìn)作用明顯,3 d以后銨態(tài)氮含量逐漸減少。四環(huán)素和金霉素殘留對(duì)土壤氨化有刺激作用,而諾氟沙星殘留則會(huì)對(duì)其起抑制作用。6 d后四環(huán)素和諾氟沙星殘留對(duì)土壤氨化有一定的刺激作用,金霉素殘留會(huì)抑制土壤的氨化作用。四環(huán)素殘留對(duì)土壤氨化作用有刺激作用,而諾氟沙星和金霉素殘留則會(huì)對(duì)其起抑制作用。土壤氨化作用強(qiáng)度與土壤的供氮能力在一定程度上有很大關(guān)系。因此,如果土壤中抗生素殘留一直保持較高濃度,會(huì)大大影響土壤的供氮能力[5]。

      參考文獻(xiàn):

      [1]王金花,朱魯生,王 軍,等. 4種典型抗生素對(duì)土壤微生物呼吸的影響[J]. 農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2011,30(11):2232-2236.

      [2]Beyer L. Intersite characterization and variability of soil respiration in different arable and forest soils[J]. Biology and Fertility of Soils,1991,12:122-126.

      [3]Buyanovsky G A,Wagner G H,Gantzer C J. Soil respiration in a winter wheat ecosystem[J]. Soil Science Society of America Journal,1986,50:338-344.

      [4]Zelles L,Bahig M E. Measurement of bioactivity based on CO2-released and ATP content in soil after different treatments[J]. Chemosphere,1984,13(8):899-913.

      [5]Zhu L S,Zhang Y F,F(xiàn)an D F,et al. Study on the effects of phoxim,fenpropathrin and its mixture on respiration of soil microbe[J]. A Groenvironmental Protection,1999,18(1):25-27.endprint

      2 結(jié)果與分析

      2.1 抗生素殘留對(duì)土壤呼吸作用的影響

      由圖1可知,4種不同濃度的四環(huán)素殘留對(duì)土壤呼吸均表現(xiàn)為抑制作用,并且抗生素殘留濃度越大,抑制水平相對(duì)越高。同時(shí),四環(huán)素殘留在土壤中總體表現(xiàn)前9 d抑制能力較弱,9 d后抑制能力較強(qiáng),11 d后對(duì)土壤呼吸作用的抑制作用最強(qiáng),抑制率在5%~15%。

      3 結(jié)論

      4種不同濃度的抗生素殘留對(duì)土壤呼吸作用基本表現(xiàn)出抑制作用,并且抗生素殘留濃度越大,抑制水平相對(duì)越高。同時(shí),抗生素殘留在土壤中總體表現(xiàn)前 7 d抑制能力較弱, 7 d后土壤呼吸抑制能力較強(qiáng)。并且土壤中抗生素添加濃度越大,其對(duì)土壤呼吸抑制作用就越強(qiáng),抑制效果越明顯。其中,四環(huán)素對(duì)土壤呼吸主要起到抑制的作用;金霉素在處理后的處理1、7 d表現(xiàn)為激活作用,但是其他時(shí)間對(duì)土壤呼吸作用均起抑制作用;諾氟沙星在濃度較低時(shí)對(duì)土壤呼吸作用起到抑制作用,但在濃度較高時(shí)對(duì)土壤呼吸作用起到激活作用,在進(jìn)行處理15 d后,所有經(jīng)過處理的微生物呼吸作用都基本上恢復(fù)到了對(duì)照水平,表明微生物對(duì)其能夠產(chǎn)生適應(yīng)性[4]。

      抗生素殘留對(duì)土壤氨化在1~3 d內(nèi)促進(jìn)作用明顯,3 d以后銨態(tài)氮含量逐漸減少。四環(huán)素和金霉素殘留對(duì)土壤氨化有刺激作用,而諾氟沙星殘留則會(huì)對(duì)其起抑制作用。6 d后四環(huán)素和諾氟沙星殘留對(duì)土壤氨化有一定的刺激作用,金霉素殘留會(huì)抑制土壤的氨化作用。四環(huán)素殘留對(duì)土壤氨化作用有刺激作用,而諾氟沙星和金霉素殘留則會(huì)對(duì)其起抑制作用。土壤氨化作用強(qiáng)度與土壤的供氮能力在一定程度上有很大關(guān)系。因此,如果土壤中抗生素殘留一直保持較高濃度,會(huì)大大影響土壤的供氮能力[5]

      參考文獻(xiàn):

      [1]王金花,朱魯生,王 軍,等. 4種典型抗生素對(duì)土壤微生物呼吸的影響[J]. 農(nóng)業(yè)環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2011,30(11):2232-2236.

      [2]Beyer L. Intersite characterization and variability of soil respiration in different arable and forest soils[J]. Biology and Fertility of Soils,1991,12:122-126.

      [3]Buyanovsky G A,Wagner G H,Gantzer C J. Soil respiration in a winter wheat ecosystem[J]. Soil Science Society of America Journal,1986,50:338-344.

      [4]Zelles L,Bahig M E. Measurement of bioactivity based on CO2-released and ATP content in soil after different treatments[J]. Chemosphere,1984,13(8):899-913.

      [5]Zhu L S,Zhang Y F,F(xiàn)an D F,et al. Study on the effects of phoxim,fenpropathrin and its mixture on respiration of soil microbe[J]. A Groenvironmental Protection,1999,18(1):25-27.endprint

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