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(1.浙江工業(yè)大學(xué) 藥學(xué)院,浙江 杭州 310014;2.浙江大學(xué) 生物系統(tǒng)工程與食品科學(xué)學(xué)院,浙江 杭州 310058)
糖尿病視網(wǎng)膜病變(Diabetic retinopathy, DR)是一種糖尿病微血管并發(fā)癥,帶給患者極大的痛苦.同時(shí),DR也是當(dāng)前人類致盲的主要原因之一,且發(fā)病人數(shù)以每年15%的速度遞增[1-2],而糖尿病患者隨著病情加深其失明的可能性是普通人的25~30倍.DR的發(fā)病機(jī)理目前仍不清楚,可能與高糖導(dǎo)致的一系列功能和生化代謝異常有關(guān).以往研究認(rèn)為,導(dǎo)致DR的原因包括:血液流變學(xué)異常[3],多元醇通路活化[4],氧化應(yīng)激增多[5-6],晚期糖基化終產(chǎn)物積聚[7],細(xì)胞因子活化以及基因影響等[8-9].脂肪酸是視網(wǎng)膜的主要組分,其組成變化是包括糖尿病視網(wǎng)膜病變?cè)趦?nèi)的多種視網(wǎng)膜病變發(fā)生和發(fā)展的原因和基礎(chǔ),已有研究表明高血脂將提高糖尿病人視網(wǎng)膜病變的發(fā)病率.而視網(wǎng)膜中n-3/n-6長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸的比例發(fā)生改變也與多種視網(wǎng)膜病變的發(fā)生和發(fā)展有關(guān).
現(xiàn)代研究認(rèn)為,炎性因子的表達(dá)與糖尿病視網(wǎng)膜病變發(fā)生發(fā)展有密切關(guān)系.白介素6(Interleukin 6,IL-6)是一種促炎性因子,可以引起急性炎癥反應(yīng)并且增加血管通透性[10].IL-6已被證明可以通過誘導(dǎo)血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(Vascular endothelial growth factor,VEGF)的表達(dá)有效促進(jìn)血管新生[10-11].也有實(shí)驗(yàn)證明IL-6表達(dá)的水平與DR的嚴(yán)重程度呈正相關(guān)[12-13].VEGF是最直接的眼球內(nèi)新生血管生長(zhǎng)因子,在高血糖環(huán)境中,視網(wǎng)膜及相關(guān)組織處于缺氧狀態(tài),可刺激VEGF的表達(dá),而VEGF則促進(jìn)新血管形成,并改變血管通透性的能力[14].John PS等[15]對(duì)長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸影響視網(wǎng)膜健康與病變做了全面的綜述,他們認(rèn)為n-3長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸(PUFAs),特別是DHA是視網(wǎng)膜的重要組成部分,影響著視網(wǎng)膜的健康和功能.同時(shí),PUFAs對(duì)炎性因子及VEGF表達(dá)有顯著影響,EPA可以有效抑制VEGF特異性酪氨酸激酶受體的激活及表達(dá).在前人研究的基礎(chǔ)上,筆者著重探索了PUFAs對(duì)糖尿病視網(wǎng)膜病變的影響,通過構(gòu)建RF/6A細(xì)胞高糖逆境模型,研究了AA,EPA及DHA三種長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸對(duì)高糖環(huán)境下誘導(dǎo)的RF/6A細(xì)胞過度增殖的影響,并通過分析高糖環(huán)境對(duì)PUFAs吸收的影響,RF/6A細(xì)胞脂肪酸組成以及IL-6和VEGF表達(dá)水平的變化,以期揭示PUFAs對(duì)糖尿病視網(wǎng)膜病變的影響及其作用機(jī)制,為后續(xù)糖尿病視網(wǎng)膜病變防治藥物的開發(fā)和探索提供新的實(shí)驗(yàn)和理論依據(jù).
RF/6A購(gòu)買自中國(guó)科學(xué)院細(xì)胞庫(kù);胎牛血清購(gòu)買自杭州四季青生物工程材料有限公司;高糖DMEM培養(yǎng)基購(gòu)自Gibco公司;胰蛋白酶和牛血清白蛋白購(gòu)自上海生物工程有限公司;青霉素及鏈霉素購(gòu)自杭州紅會(huì)醫(yī)院;3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽、花生四烯酸(Arachidonic acid,AA)、二十碳五烯酸(Eicosapentaenoic acid,EPA)和二十二碳六烯酸(Docosahexaenoic acid,DHA)購(gòu)自美國(guó)Sigma公司.
RF/6A細(xì)胞培養(yǎng)于高糖DMEM培養(yǎng)液,pH 7.2.培養(yǎng)液中添加10%已滅活胎牛血清和雙抗(青霉素100 U/mL,鏈霉素100 U/mL).細(xì)胞于37 ℃,5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),48 h換液,每72 h傳代一次.細(xì)胞培養(yǎng)及分析用容器徹底清洗后用124 ℃濕熱滅菌30 min.
將AA,EPA,DHA樣品溶解于無水乙醇中并經(jīng)0.22 μm濾膜過濾除菌配制成濃度為20 mmol/L的儲(chǔ)備液,-20 ℃儲(chǔ)存.將PUFAs的儲(chǔ)備液用含有無脂肪酸牛血清白蛋白的無血清培養(yǎng)液稀釋至60~200 μmol/L.BSA將被作為PUFAs的載體,脂肪酸與其的摩爾比維持在5∶1[16].
3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴鹽(MTT)[17]分析是測(cè)試細(xì)胞存活率和代謝能力的一種常規(guī)手段.該方法主要是因?yàn)辄S色的MTT可以被活細(xì)胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶和細(xì)胞色素c代謝生成藍(lán)色不溶于水的甲臜(Formazan).甲臜可以溶于DMSO中并通過酶標(biāo)儀在550 nm波長(zhǎng)處測(cè)定光密度OD值.而死細(xì)胞則不能生成甲臜.MTT的配制:稱取MTT以5 mg/mL的濃度溶于磷酸緩沖溶液(Phosphate buffer solution,PBS),經(jīng)0.22 μm濾膜過濾除菌,4 ℃儲(chǔ)存?zhèn)溆?將處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的RF/6A細(xì)胞接種于96孔板,細(xì)胞密度為104個(gè)/孔,培養(yǎng)24 h后,換液并加入一定濃度的處理試劑,每組設(shè)8個(gè)平行,對(duì)照孔加入培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)一定時(shí)間后.取出96孔板并甩出孔內(nèi)培養(yǎng)液,加入20 μL的MTT,放入培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3 h,之后取出加入150 μL DMSO,用水平振蕩器使孔內(nèi)甲臜完全溶解,然后用酶標(biāo)儀在550 nm處OD值.存活率=實(shí)驗(yàn)組OD值/對(duì)照組OD值×100%.
將處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的RF/6A細(xì)胞接種于細(xì)胞瓶中用含有體積分?jǐn)?shù)為10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng),細(xì)胞密度為3×105個(gè)/瓶.培養(yǎng)24 h后,吸出以前的培養(yǎng)液,每瓶加入5 700 μL含體積分?jǐn)?shù)為10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)基和300 μL的處理試劑.培育結(jié)束以后,用胰酶消化離心收集,用PBS沖洗兩遍后轉(zhuǎn)入離心管中快速加入體積分?jǐn)?shù)為5%鹽酸甲醇3 mL,立即密封放入100 ℃恒溫箱中,反應(yīng)3 h,然后取出冷卻至室溫,加入等體積的高純水,用3 mL正己烷分三次萃取,回收正己烷相,用無水硫酸鈉除水并經(jīng)0.22 μm濾膜過濾,氮?dú)獯蹈?,用正己烷定容?00 μL并進(jìn)樣至安捷倫氣相色譜(Agilent 7890A),色譜柱為DB-23(0.25 mm,60 m).程序升溫條件:130 ℃保留1 min,6.5 ℃/min升至180 ℃,然后2.5 ℃/min升至225 ℃并保持10 min.
將處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的RF/6A細(xì)胞接種于六孔板瓶中用含有體積分?jǐn)?shù)為10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng),細(xì)胞密度為2×105個(gè)/瓶.培養(yǎng)24 h后,吸出以前的培養(yǎng)液,每瓶加入3 800 μL含體積分?jǐn)?shù)為10%胎牛血清的高糖DMEM培養(yǎng)基和200 μL的處理試劑.培養(yǎng)結(jié)束以后將培養(yǎng)液分裝到離心管中密封儲(chǔ)存于-20 ℃冰箱中備用.利用市面上可以購(gòu)買到的猴源VEGF和IL-6 ELISA試劑盒來檢測(cè)培養(yǎng)液中由細(xì)胞所表達(dá)的VEGF和IL-6的水平,分別按照其試劑盒說明書操作,最后在酶標(biāo)儀中以450 nm波長(zhǎng)檢測(cè)吸光度.
數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析采用t-test和SPSS 14.0進(jìn)行,繪圖采用Microsoft Excel 2003進(jìn)行,數(shù)值表示為平均值±SD.
選用40,50,60,70 mmol/L濃度的D-葡萄糖處理RF/6A細(xì)胞,采用MTT法測(cè)定細(xì)胞存活率.由圖1可知:作用72 h,50 mmol/L及60 mmol/L葡萄糖處理能誘導(dǎo)RF/6A細(xì)胞大量增殖(**為p<0.01),而70 mmol/L葡萄糖處理,RF/6A細(xì)胞存活率有下降趨勢(shì),較對(duì)照無顯著性差異,故選擇60 mmol/L葡萄糖處理構(gòu)建高糖模型.同時(shí),由圖2可知:40~70 mmol/L甘露醇處理對(duì)RF/6A細(xì)胞生長(zhǎng)無影響,說明高糖誘導(dǎo)的RF/6A細(xì)胞存活率變化與滲透壓無關(guān).
圖1 葡萄糖處理72 h對(duì)RF/6A細(xì)胞存活率的影響
圖2 不同濃度甘露醇作用72 h對(duì)存活率的影響
采用120,140,160,180,200 μmol/L濃度的AA,EPA及DHA處理高糖環(huán)境下的RF/6A細(xì)胞,圖3顯示,高糖與PUFAs共同處理下,隨著PUFAs濃度的升高,RF/6A細(xì)胞存活率先升高后降低.AA濃度為180 μmol/L可顯著抑制高糖誘導(dǎo)的細(xì)胞增殖,其存活率與空白細(xì)胞無顯著性差異;EPA濃度為160 μmol/L時(shí)可顯著抑制高糖誘導(dǎo)的細(xì)胞增殖;200 μmol/L DHA處理可顯著抑制高糖誘導(dǎo)的細(xì)胞增殖.因此,本實(shí)驗(yàn)選擇180 μmol/L AA,160 μmol/L EPA及200 μmol/L DHA用于后續(xù)研究.
采用葡萄糖及PUFAs處理RF/6A細(xì)胞,并采用氣相色譜測(cè)定不同處理RF/6A細(xì)胞脂肪酸組成.由表1,2可知:高糖處理的RF/6A細(xì)胞,細(xì)胞培養(yǎng)基中無添加脂肪酸的情況下,脂肪酸組成較空白對(duì)照組變化不明顯;AA,EPA及DHA處理均能改變RF/6A細(xì)胞脂肪酸組成.同時(shí),AA處理RF/6A細(xì)胞,細(xì)胞中AA的質(zhì)量分?jǐn)?shù)顯著升高(45.29%),而AA與高糖同時(shí)處理,則AA含量較AA單獨(dú)處理組高(63.24%),說明高糖環(huán)境促進(jìn)了RF/6A細(xì)胞對(duì)AA的吸收.EPA和DHA單獨(dú)處理RF/6A細(xì)胞,分別使細(xì)胞中EPA和DHA含量升高(EPA=8.26%;DHA=14.87%);而高糖環(huán)境下,EPA和DHA單獨(dú)處理后,RF/6A細(xì)胞中EPA和DHA含量較單獨(dú)EPA、DHA處理降低(EPA的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為6.20%;DHA的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為8.92%),則說明高糖環(huán)境抑制了RF/6A細(xì)胞對(duì)EPA和DHA的吸收.由此,高糖環(huán)境可改變視網(wǎng)膜細(xì)胞對(duì)不同種類脂肪酸的吸收,這可能是高血糖導(dǎo)致視網(wǎng)膜脂肪酸組成變化的重要機(jī)制.
1—空白對(duì)照組;2—60 mmol/L葡萄糖模型組;3—120 μmol/L脂肪酸和60 mmol/L葡萄糖處理組;4—140 μmol/L 脂肪酸和60 mmol/L葡萄糖處理組;5—160 μmol/L脂肪酸和60 mmol/L葡萄糖處理組;6—180 μmol/L脂肪酸和60 mmol/L葡萄糖處理組;7—200 μmol/L脂肪酸和60 mmol/L葡萄糖處理組;*為p<0.05;** 為p<0.01
表1 PUFAs和葡萄糖處理的RF/6A細(xì)胞的脂肪酸組分1)
表2 高濃度葡萄糖及PUFAs對(duì)RF/6A細(xì)胞S/U及n-6/n-3比例的影響1)
采用n-6長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸AA處理RF/6A細(xì)胞,細(xì)胞中n-3脂肪酸含量顯著升高,而n-6脂肪酸含量較空白及高糖處理降低;而在高糖環(huán)境下,采用AA處理,RF/6A細(xì)胞中n-6脂肪酸含量顯著提高,可達(dá)80.35%.采用EPA處理,RF/6A細(xì)胞中n-3脂肪酸含量顯著提高,而高糖環(huán)境下,EPA處理則使RF/6A細(xì)胞中n-6脂肪酸含量升高,而n-3脂肪酸含量較EPA單獨(dú)處理時(shí)降低.同時(shí),采用DHA處理,RF/6A細(xì)胞中n-3脂肪酸含量顯著提高,在高糖環(huán)境下,n-3及n-6脂肪酸含量均明顯降低,而n-9及SFA含量提高.由此,高糖環(huán)境不僅影響RF/6A細(xì)胞對(duì)脂肪酸的吸收,也影響RF/6A細(xì)胞脂肪酸代謝.另一方面,本實(shí)驗(yàn)結(jié)果也表明三種長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸處理對(duì)RF/6A細(xì)胞脂肪酸組成有影響.
由圖4可知:高糖處理下,RF/6A細(xì)胞中IL-6濃度提高;AA處理對(duì)高糖誘導(dǎo)的IL-6表達(dá)有促進(jìn)作用.而采用EPA及DHA處理后,IL-6濃度較高糖處理顯著降低,與空白對(duì)照無顯著性差異,表明兩種n-3長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸對(duì)高糖誘導(dǎo)的IL-6表達(dá)具有抑制作用.
1—空白對(duì)照組;2—60 mmol/L葡萄糖模型組;3—180 μmol/L AA和60 mmol/L葡萄糖處理組;4—160 μmol/L EPA和60 mmol/L葡萄糖處理組;5—200 μmol/L DHA和60 mmol/L葡萄糖處理組;*為p<0.05;**為p<0.01
由圖4可知:高糖處理下,RF/6A細(xì)胞中VEGF濃度升高,但與空白對(duì)照組無顯著性差異;而采用三種長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸處理后,VEGF含量較高糖處理升高,特別是AA及EPA對(duì)VEGF表達(dá)具有顯著促進(jìn)作用,而DHA處理VEGF濃度較對(duì)照組無顯著性差異.
由此,高濃度葡萄糖顯著促進(jìn)IL-6表達(dá),可能是糖尿病視網(wǎng)膜病變的重要機(jī)制;高糖環(huán)境下,AA處理促進(jìn)了IL-6及VEGF表達(dá);EPA處理能顯著抑制IL-6表達(dá),但對(duì)VEGF表達(dá)有促進(jìn)作用;DHA處理可顯著抑制高糖誘導(dǎo)的IL-6表達(dá),對(duì)VEGF表達(dá)無顯著性促進(jìn)作用.由此,DHA在糖尿病視網(wǎng)膜病變的防治方面更具開發(fā)潛力,而其作用機(jī)制仍值得進(jìn)一步探索.
糖尿病視網(wǎng)膜病變一般分為兩個(gè)階段.第一個(gè)階段為非增殖性糖尿病視網(wǎng)膜病變,其特點(diǎn)是黃斑水腫,微小血管瘤等.第二個(gè)階段為增殖性糖尿病視網(wǎng)膜病變,其特點(diǎn)是有大量的新生血管形成,并極易造成視網(wǎng)膜脫落.不論是前期還是后期,內(nèi)皮細(xì)胞都表現(xiàn)為增殖.因此抑制內(nèi)皮細(xì)胞在高糖環(huán)境下增殖就成為相關(guān)藥物篩選的主要指標(biāo).實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:180 μmol/L AA,160 μmol/L EPA及200 μmol/L DHA可顯著抑制高糖誘導(dǎo)的細(xì)胞增殖.值得注意的是,三種長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸對(duì)RF/6A細(xì)胞增殖影響的結(jié)果背后存在不同的機(jī)理.氣相色譜檢測(cè)結(jié)果發(fā)現(xiàn),三種長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸處理對(duì)RF/6A細(xì)胞脂肪酸組成和代謝的影響不同.采用VEGF和IL-6 ELISA試劑盒檢測(cè)其結(jié)果則顯示,高糖環(huán)境下,AA處理組IL-6及VEGF含量均達(dá)到最高,這可能是因?yàn)樵诟咛敲{迫的細(xì)胞模型中加入AA,可以刺激n-6脂肪酸的轉(zhuǎn)化和集聚.同時(shí),AA又大量轉(zhuǎn)化成其他促炎分子,導(dǎo)致了大量的VEGF和IL-6的表達(dá),而炎性因子的大量表達(dá)促使細(xì)胞凋亡,所以得到了180 μmol/L AA處理組細(xì)胞增殖被抑制的情況.EPA處理后,細(xì)胞中的EPA部分轉(zhuǎn)化為抗炎分子,部分轉(zhuǎn)化為促炎分子,因此其可抑制IL-6表達(dá),但對(duì)VEGF表達(dá)有一定的促進(jìn)作用.DHA處理后,細(xì)胞中的DHA并不能直接轉(zhuǎn)化為促炎分子,但可轉(zhuǎn)化為抗炎分子,因此其對(duì)IL-6表達(dá)具有良好的抑制作用,對(duì)VEGF不表現(xiàn)促進(jìn)作用.總體上,三種長(zhǎng)鏈多不飽和脂肪酸處理,DHA對(duì)高糖誘導(dǎo)的視網(wǎng)膜細(xì)胞增殖具有最好的效果,值得進(jìn)一步深入探索.
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