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      姜黃素對糖尿病大鼠心肌的保護作用*

      2014-08-08 07:24:30劉忠和吳基良
      中國病理生理雜志 2014年4期
      關(guān)鍵詞:肌鈣蛋白姜黃空腹

      劉忠和, 余 薇, 劉 超, 吳基良

      (1咸寧市中醫(yī)院內(nèi)科, 2湖北科技學(xué)院糖尿病心腦血管病變湖北省重點實驗室, 湖北 咸寧 437100)

      糖尿病心肌病(diabetic cardiomyopathy,DCM)是由糖尿病引起的一種心臟結(jié)構(gòu)和功能障礙,獨立于高血壓、冠狀動脈粥樣硬化性心臟病、心臟瓣膜病及其它已知心臟疾病[1]。DCM引起舒張期和(或)收縮期心功能改變,最終可能引發(fā)心肌缺血和心衰,成為糖尿病患者的重要致死原因之一。DCM的發(fā)病機理目前尚不完全清楚,心肌細胞糖脂代謝紊亂、炎癥、氧化應(yīng)激、心肌纖維化、心肌細胞凋亡以及線粒體損傷被認為是DCM發(fā)生和發(fā)展的可能機制[2]。姜黃素(curcumin,Cur)是從姜科植物中提取的一種黃色酚類化合物,現(xiàn)代藥理學(xué)研究表明姜黃素能通過疏水性作用同血漿白蛋白結(jié)合運輸,易于滲透細胞質(zhì),富集于膜性結(jié)構(gòu)如質(zhì)膜、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)和核膜,發(fā)揮抗氧化、抗腫瘤、抗炎、降血脂和抗微生物等藥理作用[3]。為此,本研究通過復(fù)制2型糖尿病大鼠模型,探討姜黃素對大鼠糖尿病心肌病的保護作用及可能機制。

      材 料 和 方 法

      1 儀器與試劑

      血糖測試儀(長沙三諾生物傳感技術(shù)股份有限公司);pH計(Mettler Toledo公司);3-18K高速冷凍離心機(Sigma);自動發(fā)光凝膠成像系統(tǒng)(Syngene)。

      姜黃素(陜西森弗生物技術(shù)有限公司);鏈脲佐菌素 (streptozotocin,STZ;Sigma);谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)測試盒和丙二醛(malondialdehyde,MDA)測試盒(南京建成研究所);心肌鈣蛋白I(cardiac troponin I,cTnI)酶聯(lián)免疫吸附測定試劑盒(武漢優(yōu)爾生科技股份有限公司);β-actin和蛋白激酶C(protein kinase C,PKC)α抗體(Santa Cruz);其余均為進口或者國產(chǎn)分析純化學(xué)試劑。

      2 動物分組及給藥

      雄性SPF級Wistar大鼠,體重70~90 g[湖南省實驗動物中心(SCXK 2009-0012)]。適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周,動物飼養(yǎng)在溫度控制在(22±2)℃、濕度為40%的SPF級動物房,并保持12 h的晝夜節(jié)律和自由進食進水。實驗方案經(jīng)過華中科技大學(xué)同濟醫(yī)學(xué)院動物倫理委員會批準,批準號為2011-S238。

      適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,動物隨機分為正常對照組(control組,n=10)和糖尿病模型組(n=65)。正常對照組大鼠給予標準普通飼料喂養(yǎng),糖尿病模型組大鼠以高糖高脂飼料(在普通飼料的基礎(chǔ)上加入20%蔗糖和20%豬油)喂養(yǎng)。飼養(yǎng)8 周后,禁食12 h,糖尿病模型組大鼠一次性腹腔注射小劑量STZ 40 mg/kg,用pH 4.4的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液溶解配制),正常對照組大鼠腹腔注射等容量檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液。STZ腹腔注射3 d和7 d后,禁食12 h,鼠尾取血測定空腹血糖。糖尿病模型成功大鼠診斷標準為:連續(xù)2次空腹血糖 ≥11.6 mmol/L,未達成模標準者剔除。糖尿病模型成功大鼠隨機分為DCM組 (n=20)、Cur小劑量治療組(DCM+Cur 100 mg/kg組,n=12)和Cur大劑量治療組(DCM+Cur 200 mg/kg組,n=12)。Cur小劑量和大劑量組每日分別經(jīng)口灌胃(ig)Cur 100 mg/kg和200 mg/kg。正常對照組和DCM組大鼠每日ig等容量羥甲基纖維素鈉。繼續(xù)原飼料喂養(yǎng)16周,每2周禁食12 h,鼠尾取血檢測空腹血糖1次。實驗期間動物自由進水,未使用胰島素及其它降糖藥物。

      3 主要方法

      3.1血清中cTnI含量測定 實驗?zāi)?,腹主動脈取血,3 000 r/min離心10 min,取上清,按照酶聯(lián)免疫分析法檢測cTnI含量。

      3.2心肌組織中MDA含量和GSH-Px活力測定 藥物治療16周后取出心臟,制備成心臟勻漿,提取上清,按照試劑盒相關(guān)程序操作。

      3.3Western blotting檢測心肌組織中PKC表達 取100 mg左心室組織置于EP管中,按照體重∶體積=1∶9的比例加入900 μL組織裂解液,冰上勻漿后,13 000 r/min、4 ℃離心15 min后,取上清液,按BCA法測定蛋白濃度。用微量進樣器上樣后,濃縮膠電泳電壓為80 V,分離膠電泳電壓為100~120 V電泳,至溴酚藍到凝膠底部。用濕轉(zhuǎn)法將蛋白質(zhì)從凝膠轉(zhuǎn)移至PVDF膜后5%脫脂牛奶室溫封閉。加入用TBST適當稀釋的Ⅰ抗PKCα(1∶200)和β-actin(1∶500),置于4 ℃冰箱過夜后,加入HRP標記的羊抗兔的IgG抗體(1∶5 000)室溫孵育1 h。TBST漂洗后,加入ECL熒光液,用SYNGENE自動發(fā)光凝膠成像系統(tǒng)檢測目的蛋白表達情況。

      4 統(tǒng)計學(xué)處理

      數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準誤(mean±SEM)表示,用SPSS 11.5統(tǒng)計學(xué)軟件分析,行One-way ANOVA檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

      結(jié) 果

      1 實驗動物的基本情況

      整個實驗期間,正常對照組大鼠毛色光白,活潑易動,雙眼靈活有神;糖尿病組大鼠毛色逐漸失去光澤直至灰暗,消瘦,精神萎靡,行動遲緩,部分大鼠出現(xiàn)爛尾現(xiàn)象,其中有3只出現(xiàn)糖尿病性白內(nèi)障。Cur大劑量治療組大鼠毛色有光澤,對周圍變化反應(yīng)靈敏,精神狀態(tài)較糖尿病組明顯好轉(zhuǎn)。

      2 動物體重的變化

      注射STZ之前,4組之間比較體重無顯著差異(P>0.05)。注射STZ后1周即藥物治療前,與正常對照組比較,各造模組大鼠體重開始下降,顯著差異(P<0.05)。實驗?zāi)c正常對照組相比,糖尿病大鼠體重均下降明顯(P<0.05)。但與糖尿病組比較,Cur大劑量治療組大鼠體重顯著升高(P<0.05),見圖1。

      Figure 1. Effect of curcumin (Cur) on body weight of STZ-induced diabetic rats.Mean±SEM.n=8~12.*P<0.05 vs control group; #P<0.05 vs DCM group.

      3 動物血糖的變化

      如圖2所示,注射STZ之前,4組之間比較空腹血糖無顯著差異(P>0.05)。注射STZ后1周即藥物治療前,糖尿病模型成功大鼠空腹血糖較正常對照組大鼠均明顯升高(P<0.05)。實驗?zāi)悄虿〗M大鼠空腹血糖呈持續(xù)性升高,與正常對照組比較明顯增高(P<0.05),而Cur各治療組空腹血糖較糖尿病組顯著降低(P<0.05)。

      Figure 2. Effect of curcumin (Cur) on fasting blood glucose in STZ-induced diabetic rats.Mean±SEM.n=8~12.*P<0.05 vs control group; #P<0.05 vs DCM group.

      4 心肌組織中GSH-Px活性以及MDA含量的變化

      與正常對照組比較,糖尿病組GSH-Px活性顯著下降,而MDA含量顯著升高(P<0.05)。Cur治療后可呈劑量依賴性地升高心肌GSH-Px活性,同時降低MDA含量(P<0.05),見表1。

      5 血清中cTnI含量的變化

      與正常對照組比較,糖尿病組大鼠血清中cTnI含量顯著升高(P<0.05),Cur可顯著降低糖尿病大鼠血清cTnI的含量(P<0.05),見表1。

      表1 Cur對STZ所誘導(dǎo)的糖尿病大鼠cTnI、MDA含量以及GSH-Px活力的影響

      6 心肌組織中PKC的變化

      如圖3所示,與正常對照組比較,糖尿病組大鼠心肌組織中PKCα表達顯著增加,而Cur大劑量治療組可逆轉(zhuǎn)糖耐所致的PKCα表達增加(P<0.05)。

      討 論

      在本實驗中,我們首次選擇70~90 g左右的Wistar大鼠給予高糖高脂飲食8周造成胰島素抵抗后,小劑量STZ(40 mg/kg)一次性腹腔注射,成功地復(fù)制出2型糖尿病大鼠模型。我們采用的糖尿病大鼠診斷標準為連續(xù)2次測定空腹血糖≥11.6 mmol/L為模型成功大鼠。糖尿病大鼠在給予STZ腹腔注射72 h后空腹血糖開始增加,并在隨后的整個實驗過程中呈現(xiàn)出持續(xù)的高血糖,表現(xiàn)出高血糖所致的葡萄糖代謝紊亂。糖尿病大鼠經(jīng)過姜黃素治療后可顯著降低動物空腹血糖,改善動物的體重減輕的癥狀。

      肌鈣蛋白(troponin,Tn)是橫紋肌收縮的重要調(diào)節(jié)蛋白,由肌鈣蛋白C(TnC)、肌鈣蛋白T(TnT)和肌鈣蛋白I(TnI)3個亞基組成。TnI也有3種亞型:快骨骼肌亞型、慢骨骼肌亞型和心肌亞型。cTnI僅存于心肌細胞中,為心肌特異型的肌鈣蛋白,參與鈣離子誘導(dǎo)的肌肉收縮,其敏感性和特異性比CK-MB高,是高度特異和靈敏的反映心肌細胞損傷壞死的標志物[4]。有文獻報道,糖尿病大鼠6周即出現(xiàn)糖尿病性心肌損傷。在本研究中,我們觀察到糖尿病大鼠血清cTnI的釋放明顯增加,而姜黃素可逆轉(zhuǎn)cTnI水平改變,表明姜黃素可抑制糖尿病所致的心肌損傷。

      Figure 3. Curcumin (Cur) decreased PKCα expression in the rat hearts with STZ-induced diabetic cardiomyopathy.Mean±SEM.n=3.*P<0.05 vs control group; #P<0.05 vs DCM group.

      正常情況下活性氧簇(reactive oxygen species,ROS)能被體內(nèi)的抗氧化酶系統(tǒng)如SOD、GSH-Px等和非酶系統(tǒng)如維生素E和維生素C清除,使體內(nèi)氧化系統(tǒng)和抗氧化系統(tǒng)處于動態(tài)平衡中,維持細胞內(nèi)ROS處于穩(wěn)定水平[5]。然而,糖尿病時ROS還可通過脂質(zhì)β氧化、葡萄糖自身氧化代謝等多種途徑產(chǎn)生,因此糖尿病時心肌可產(chǎn)生更多ROS從而造成細胞DNA損傷和細胞凋亡[6]。測定MDA含量的變化以及抗氧化酶GSH-Px活力可反映心肌細胞脂質(zhì)過氧化程度。據(jù)報道Cur具有較強的抗氧化能力,幾乎是天然抗氧化劑維生素E的10倍左右[7]。實驗中我們發(fā)現(xiàn)糖尿病大鼠心肌組織GSH-Px活力顯著降低而MDA含量顯著增高,給予Cur治療后心肌GSH-Px活力顯著升高,而脂質(zhì)代謝產(chǎn)物MDA顯著下降,表明Cur具有較強的抗氧化能力。

      PKC是一種鈣、磷脂依賴性蛋白磷酸化酶,具有多種亞型,在靜息狀態(tài)下主要以無活性的形式存在于胞漿中,是細胞內(nèi)信息傳遞的重要分子[8]。當體內(nèi)氧化應(yīng)激增強時,活化的PKC通過使心肌Na+-K+-ATP酶、肌鈣蛋白、微管蛋白等底物蛋白磷酸化,進而抑制肌原纖維ATP酶的活性,從而影響心肌收縮力和舒張功能[9]。在本研究中我們觀察到糖尿病大鼠心肌組織中PKCα的表達明顯增加,而Cur治療后可顯著減少心肌PKCα的表達。

      綜上所述,Cur對2型糖尿病大鼠心肌病具有保護作用,其機制可能與抑制氧化應(yīng)激、下調(diào)心肌PKCα表達有關(guān),本研究為尋求開發(fā)新的抗糖尿病心肌病的藥物提供了新的思路。

      [參 考 文 獻]

      [1] Tarquini R, Lazzeri C, Pala L, et al. The diabetic cardiomyopathy[J]. Acta Diabetol, 2011, 48(3):173-181.

      [2] Khavandi K, Khavandi A, Asghar O, et al. Diabetic cardiomyopathy: a distinct disease?[J]. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab, 2009, 23(3):347-360.

      [3] Shehzad A, Ha T, Subhan F, et al. New mechanisms and the anti-inflammatory role of curcumin in obesity and obesity-related metabolic diseases[J]. Eur J Nutr, 2011,50(3):151-161.

      [4] Ahmad F, Banerjee SK, Lage ML, et al. The role of cardiac troponin T quantity and function in cardiac development and dilated cardiomyopathy[J]. PLoS One, 2008, 3(7):e2642.

      [5] Sadi G, Guray T. Gene expressions of Mn-SOD and GPx-1 in streptozotocin-induced diabetes: effect of antioxidants[J]. Mol Cell Biochem, 2009, 327(1-2):127-134.

      [6] Wang J, Wang H, Hao P, et al. Inhibition of aldehyde dehydrogenase 2 by oxidative stress is associated with cardiac dysfunction in diabetic rats[J]. Mol Med, 2011, 17(3-4):172-179.

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      [9] Kooij V, Zhang P, Piersma SR, et al. PKCα-specific phosphorylation of the troponin complex in human myocardium: a functional and proteomics analysis[J]. PLoS One, 2013, 8(10):e74847.

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