李艷+孫海燕+周麗珍+劉冬
摘要: 以重組血管緊張素轉(zhuǎn)化酶抑制肽(ACEIP)工程菌E.coli BL21(pGEX-4T-2-AHP)破碎率、破碎液中目的融合蛋白濃度(GST-AHP)為主要考察指標(biāo),對重組血管緊張素抑制肽工程菌破碎條件進行了優(yōu)化。結(jié)果表明,其最佳工藝條件為每克濕菌體重懸于3 mL含有2 mmol/L EDTA的1×PBS緩沖液中,加溶菌酶至終濃度20 000 U/mL,室溫放置30 min后超聲破碎30 min,4 ℃ 10 000 r/min離心10 min取上清液。在此最佳工藝條件下破碎液中可溶性GST-AHP濃度達到1.83 g/L。
關(guān)鍵詞:重組血管緊張素轉(zhuǎn)化酶抑制肽(ACEIP);工程菌E.coli BL21(pGEX-4T-2-AHP);破碎條件
中圖分類號:TQ925文獻標(biāo)識碼:A文章編號:0439-8114(2014)09-2127-03
Optimization of Cell-Disrupting Conditions for Genetic Engineering Strain E.coli BL21
LI Yan,SUN Hai-yan,ZHOU Li-zhen,LIU Dong
(Shenzhen Polytecnic/Shenzhen Key Laboratory of Fermentation Precision Measurement,Shenzhen 518055,Guangdong,China)
Abatract: The cell-disrupting conditions of genetic engineering strain, E. coli BL21(pGEX-4T-2-AHP) expressed recombinant angiotensin converting enzyme inhibitory peptide were optimized using disrupting rate and the fusion protein (GST-AHP) content in disrupted solution as indices. The results showed that the optimal cell-disrupting process was suspending pellet in 3 mL of 1×PBS with 2 mmol/mL EDTA per g bacterial cells, adding lysozyme to 20 000 U/mL disrupted by ultrasonic 30 min after stored at ambient temperature for 30 min, taking supernatant after centrifuged at 10 000 r/min for 10 min at 4 °C. Under these conditions, the concentration of GST-AHP in disrupted solution was 1.83 g/L.
Key words:recombinant angiotensin converting enzyme inhibitory peptide; genetic engineering strain; cell-disrupting condition
血管緊張素轉(zhuǎn)化酶抑制肽(ACEIP)是一類通過抑制血管緊張素轉(zhuǎn)化酶活性從而達到降低血壓的小分子多肽,具有降壓效果明顯、無毒副作用等特點[1-4]。ACEIP可通過特異性酶解從天然動植物和微生物蛋白中提取,但由于天然蛋白中ACEIP含量很低,因而產(chǎn)率低、成本高,難以產(chǎn)業(yè)化。化學(xué)合成方法可以按照人們的意愿合成制備任意活性的ACEIP,但大都因成本高、副反應(yīng)物多及化合物殘留等問題制約其產(chǎn)業(yè)化發(fā)展。近年來利用微生物基因工程技術(shù)生產(chǎn)蛋白質(zhì)多肽藥物和食品原料由于具有表達高效、產(chǎn)量高、成本低等優(yōu)點而越來越得到廣泛應(yīng)用。
本研究通過分析ACEIP結(jié)構(gòu)與降血壓活性之間的關(guān)系,設(shè)計出高活性的ACEIP單體,并利用基因工程手段克隆到大腸桿菌融合表達載體pGEX-4T-2之上,構(gòu)建了能高效穩(wěn)定表達ACEIP的基因工程菌E. coli BL21(pGEX-4T-2-AHP)[5]。由于該工程菌表達的ACEIP屬胞內(nèi)表達,因而如何通過經(jīng)濟高效的細(xì)胞破碎工藝將胞內(nèi)表達的ACEIP溶出成為ACEIP分離純化的關(guān)鍵步驟之一[6]。因此,本研究以細(xì)胞破碎率、破碎液中目的融合蛋白濃度為主要考察指標(biāo),對構(gòu)建的基因工程菌的細(xì)胞破碎條件進行了優(yōu)化。研究結(jié)果將為后續(xù)的進一步分離純化奠定基礎(chǔ)。
1材料與方法
1.1材料與儀器
基因工程菌E.coli BL21(pGEX-4T-2-AHP)自制;二硫蘇糖醇(DTT),加拿大BBI分裝,超純;三羥甲基氨基甲烷(Tris)、甘氨酸、Triton X-100、溶菌酶(lysozyme, 20 000 U/mg),加拿大BBI公司產(chǎn)品;丙烯酰胺、亞甲雙丙烯酰胺、N,N,N,N,-四甲基乙烯二胺(TEMED)、過硫酸胺(APS)、β-ME(β-巰基乙醇),美國Amresco公司產(chǎn)品;十二烷基磺酸鈉(SDS)、考馬斯亮藍R-250,Fluka產(chǎn)品;Protein Molecular Weight Marker(M.W.14.4~116.0 kDa),購自Fermentas公司;BCA蛋白檢測試劑盒,購自Pierce公司。
Biostat C型 30 L發(fā)酵罐,德國貝朗公司;垂直電泳槽、CONSORT E861型電泳儀,美國UVP公司;GeneGenius凝膠成像系統(tǒng),Syngene公司;超聲波破碎儀(VC×600型),Sonics公司;核酸蛋白檢測儀,德國Eppendorf公司。
1.2試驗方法
1.2.1發(fā)酵液的制備活化基因工程菌E.coli BL21(pGEX-4T-2-AHP),通過菌種擴增,再進行高密度發(fā)酵。具體操作如下:活化后的基因工程菌按1%接種量轉(zhuǎn)接至100 mL含氨芐青霉素(Amp)的 2×YTA培養(yǎng)基,37 ℃、250 r/min培養(yǎng)8 h。再按10%接種量轉(zhuǎn)接至含20 L發(fā)酵培養(yǎng)基的30 L發(fā)酵罐中,控制溶氧40%,pH7.0,37 ℃進行發(fā)酵。培養(yǎng)2 h后開始補料,補料速度1 mL/min,補料1 h,培養(yǎng)3 h后加入誘導(dǎo)劑誘導(dǎo)6 h,共發(fā)酵9 h制得發(fā)酵液。
1.2.2目的蛋白含量的測定采用SDS-PAGE蛋白電泳法,用凝膠成像系統(tǒng)照相保存,用Gene Tool軟件分析目的融合蛋白(GST-AHP)含量。
1.2.3總蛋白含量的測定采用BCA法。堿性條件下,蛋白質(zhì)將Cu2+還原為Cu+, Cu+與BCA試劑形成紫顏色的絡(luò)合物,測定其在562 nm處的吸光度,并與標(biāo)準(zhǔn)曲線對比,即可計算出待測蛋白的濃度。具體操作如下:將標(biāo)準(zhǔn)蛋白牛血清白蛋白(BSA)用1×PBS稀釋成濃度分別為25、125、250、500、1 000、1 500、2 000 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)品溶液,取100 μL不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)品溶液加入1 mL工作液,37 ℃反應(yīng)30 min,測定OD562 nm。以蛋白質(zhì)濃度(μg/mL)為橫坐標(biāo),以吸光度為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.4GST-AHP濃度的確定根據(jù)“1.2.3”所得總蛋白含量及“1.2.2”所得GST-AHP含量計算GST-AHP濃度。
1.2.5酶法與反復(fù)凍融法相結(jié)合破碎菌體發(fā)酵液4 000 r/min離心15 min,棄上清液收集菌體沉淀,用1×PBS緩沖液洗滌2次,稱重記錄濕菌體的質(zhì)量。按每克濕菌體加3 mL含有2 mmol/L EDTA的 1×PBS的比例將菌體沉淀重懸,加溶菌酶至終濃度20 000 U/mL,冰?。常?min后,-70 ℃冷凍、25 ℃水浴消融,反復(fù)凍融8次。每凍融1次,鏡檢計算破碎率;同時取1 mL 細(xì)胞裂解液,用針筒將20%Triton X-100強行注入黏的細(xì)胞裂解液中至終濃度為1%,溫和混合30 min后,加入DNase和RNase至終濃度為5 μg/mL,4 ℃振蕩10 min。10 000 r/min離心10 min收集上清液,?。保?μL上清液進行SDS-PAGE電泳,用Gene Tool分析,比較不同凍融次數(shù)對GST-AHP濃度的影響。
1.2.6酶法與超聲波法相結(jié)合破碎菌體按每克濕菌體加3 mL含有2 mmol/L EDTA的 1×PBS的比例將菌體沉淀重懸,加溶菌酶至終濃度20 000 U/mL,室溫放置30 min。?。玻埃?mL酶解液超聲波破碎,每破碎5 min取樣1次,鏡檢計算破碎率;同時取樣1 mL,離心收集上清液取10 μL上樣進行SDS-PAGE電泳檢測,用Gene Tool分析,比較不同超聲時間對GST-AHP濃度的影響。超聲波處理參數(shù):Ф13 mm螺紋探頭和Ф13 mm螺紋探頭可換尖端,振幅75%,開5 s,停5 s。共破碎40 min。
2結(jié)果與分析
2.1標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖1。以蛋白質(zhì)濃度(μg/mL)為橫坐標(biāo),以吸光度為縱坐標(biāo),得回歸方程:y=0.001 3x+0.045 9,R2=0.997。
2.2酶法與反復(fù)凍融法相結(jié)合的破碎條件研究結(jié)果
2.2.1凍融次數(shù)對菌體破碎率的影響結(jié)果見圖2。由圖2可見,隨著凍融次數(shù)的增多,菌體破碎率增加,當(dāng)反復(fù)凍融5次時,破碎率已達90%,6次時即達100%。
2.2.2凍融次數(shù)對GST-AHP濃度的影響結(jié)果見圖3和圖4。由圖3和圖4可見,反復(fù)凍融6次時,上清液中GST-AHP濃度已達到最大。因此反復(fù)凍融的次數(shù)確定為6次。此時,上清液中GST-AHP濃度達1.86 g/L。
2.3酶法和超聲波法相結(jié)合的破碎條件研究結(jié)果
2.3.1超聲時間對菌體破碎率的影響結(jié)果見圖5。由圖5可見,隨著超聲時間的延長,菌體破碎率增加,當(dāng)超聲時間達到30 min時,菌體破碎率達到100%。
2.3.2超聲時間對GST-AHP濃度的影響結(jié)果見圖6和圖7。由圖6和圖7可見,超聲時間達30 min時,上清液中GST-AHP濃度達到最大(1.83 g/L),超聲時間進一步延長,GST-AHP濃度不再增加。因此確定超聲破碎時間以30 min為宜。
2.4兩種方法的破碎效果比較
反復(fù)凍融6次或超聲波破碎30 min,細(xì)胞破碎率均可達到100%,此時,上清液中GST-AHP濃度達到最大,分別為1.86和1.83 g/L。反復(fù)凍融法操作較繁瑣,耗時長,需要添加價格昂貴的DNase和RNase降解DNA及RNA以降低破碎液黏度,且每次處理量不能太大;而超聲波破碎時間短、效率高,且對細(xì)胞破碎所釋放的DNA、RNA具有一定剪切作用,破碎同時能有效降低其黏度,綜合考慮選擇超聲波破碎為工程菌細(xì)胞破碎條件。
3結(jié)論
試驗結(jié)果表明,重組血管緊張素轉(zhuǎn)化酶抑制肽工程菌E.coli BL21(pGEX-4T-2-AHP)破碎的最優(yōu)工藝條件為:每克濕菌體重懸于3mL含有2mmol/L EDTA的1×PBS緩沖液中,加溶菌酶至終濃度為20 000 U/mL,室溫放置30 min后超聲波破碎30 min,4 ℃ 10 000 r/min離心10 min取上清液。超聲波破碎條件:Sonics(VC×600型)超聲波破碎儀,Ф13 mm螺紋探頭和Ф13 mm螺紋探頭可換尖端,振幅75%,開5 s,停5 s。此條件下上清液中可溶性GST-AHP濃度達到1.83 g/L。
參考文獻:
[1] YAMAMOTO N,EJIRI M, MIZUNO S. Biogenic peptides and their potential use[J].Curr Pharm Des,2003,9(16):1345-1355.
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[4] FITZ GERALD R J,MEISEL H.Milk protein-derived peptide inhibitors of angiotensin-I-converting enzyme[J]. Br J Nutr, 2000, 84(Suppl1):S33-S37.
[5] LIU D, SUN H Y, ZHANG L J,et al. High-level expression of milk-derived antihypertensive peptide in Escherichia coli and its bioactivity[J]. J Agric Food Chem,2007,55:5109-5112.
[6] 劉冬,吳亞麗,張麗君,等.重組降血壓肽基因工程菌破碎方法研究[J].河南工業(yè)大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版),2006,27(3):53-56.
1.2.4GST-AHP濃度的確定根據(jù)“1.2.3”所得總蛋白含量及“1.2.2”所得GST-AHP含量計算GST-AHP濃度。
1.2.5酶法與反復(fù)凍融法相結(jié)合破碎菌體發(fā)酵液4 000 r/min離心15 min,棄上清液收集菌體沉淀,用1×PBS緩沖液洗滌2次,稱重記錄濕菌體的質(zhì)量。按每克濕菌體加3 mL含有2 mmol/L EDTA的 1×PBS的比例將菌體沉淀重懸,加溶菌酶至終濃度20 000 U/mL,冰?。常?min后,-70 ℃冷凍、25 ℃水浴消融,反復(fù)凍融8次。每凍融1次,鏡檢計算破碎率;同時?。?mL 細(xì)胞裂解液,用針筒將20%Triton X-100強行注入黏的細(xì)胞裂解液中至終濃度為1%,溫和混合30 min后,加入DNase和RNase至終濃度為5 μg/mL,4 ℃振蕩10 min。10 000 r/min離心10 min收集上清液,取10 μL上清液進行SDS-PAGE電泳,用Gene Tool分析,比較不同凍融次數(shù)對GST-AHP濃度的影響。
1.2.6酶法與超聲波法相結(jié)合破碎菌體按每克濕菌體加3 mL含有2 mmol/L EDTA的 1×PBS的比例將菌體沉淀重懸,加溶菌酶至終濃度20 000 U/mL,室溫放置30 min。取200 mL酶解液超聲波破碎,每破碎5 min取樣1次,鏡檢計算破碎率;同時取樣1 mL,離心收集上清液?。保?μL上樣進行SDS-PAGE電泳檢測,用Gene Tool分析,比較不同超聲時間對GST-AHP濃度的影響。超聲波處理參數(shù):Ф13 mm螺紋探頭和Ф13 mm螺紋探頭可換尖端,振幅75%,開5 s,停5 s。共破碎40 min。
2結(jié)果與分析
2.1標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖1。以蛋白質(zhì)濃度(μg/mL)為橫坐標(biāo),以吸光度為縱坐標(biāo),得回歸方程:y=0.001 3x+0.045 9,R2=0.997。
2.2酶法與反復(fù)凍融法相結(jié)合的破碎條件研究結(jié)果
2.2.1凍融次數(shù)對菌體破碎率的影響結(jié)果見圖2。由圖2可見,隨著凍融次數(shù)的增多,菌體破碎率增加,當(dāng)反復(fù)凍融5次時,破碎率已達90%,6次時即達100%。
2.2.2凍融次數(shù)對GST-AHP濃度的影響結(jié)果見圖3和圖4。由圖3和圖4可見,反復(fù)凍融6次時,上清液中GST-AHP濃度已達到最大。因此反復(fù)凍融的次數(shù)確定為6次。此時,上清液中GST-AHP濃度達1.86 g/L。
2.3酶法和超聲波法相結(jié)合的破碎條件研究結(jié)果
2.3.1超聲時間對菌體破碎率的影響結(jié)果見圖5。由圖5可見,隨著超聲時間的延長,菌體破碎率增加,當(dāng)超聲時間達到30 min時,菌體破碎率達到100%。
2.3.2超聲時間對GST-AHP濃度的影響結(jié)果見圖6和圖7。由圖6和圖7可見,超聲時間達30 min時,上清液中GST-AHP濃度達到最大(1.83 g/L),超聲時間進一步延長,GST-AHP濃度不再增加。因此確定超聲破碎時間以30 min為宜。
2.4兩種方法的破碎效果比較
反復(fù)凍融6次或超聲波破碎30 min,細(xì)胞破碎率均可達到100%,此時,上清液中GST-AHP濃度達到最大,分別為1.86和1.83 g/L。反復(fù)凍融法操作較繁瑣,耗時長,需要添加價格昂貴的DNase和RNase降解DNA及RNA以降低破碎液黏度,且每次處理量不能太大;而超聲波破碎時間短、效率高,且對細(xì)胞破碎所釋放的DNA、RNA具有一定剪切作用,破碎同時能有效降低其黏度,綜合考慮選擇超聲波破碎為工程菌細(xì)胞破碎條件。
3結(jié)論
試驗結(jié)果表明,重組血管緊張素轉(zhuǎn)化酶抑制肽工程菌E.coli BL21(pGEX-4T-2-AHP)破碎的最優(yōu)工藝條件為:每克濕菌體重懸于3mL含有2mmol/L EDTA的1×PBS緩沖液中,加溶菌酶至終濃度為20 000 U/mL,室溫放置30 min后超聲波破碎30 min,4 ℃ 10 000 r/min離心10 min取上清液。超聲波破碎條件:Sonics(VC×600型)超聲波破碎儀,Ф13 mm螺紋探頭和Ф13 mm螺紋探頭可換尖端,振幅75%,開5 s,停5 s。此條件下上清液中可溶性GST-AHP濃度達到1.83 g/L。
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1.2.4GST-AHP濃度的確定根據(jù)“1.2.3”所得總蛋白含量及“1.2.2”所得GST-AHP含量計算GST-AHP濃度。
1.2.5酶法與反復(fù)凍融法相結(jié)合破碎菌體發(fā)酵液4 000 r/min離心15 min,棄上清液收集菌體沉淀,用1×PBS緩沖液洗滌2次,稱重記錄濕菌體的質(zhì)量。按每克濕菌體加3 mL含有2 mmol/L EDTA的 1×PBS的比例將菌體沉淀重懸,加溶菌酶至終濃度20 000 U/mL,冰?。常?min后,-70 ℃冷凍、25 ℃水浴消融,反復(fù)凍融8次。每凍融1次,鏡檢計算破碎率;同時取1 mL 細(xì)胞裂解液,用針筒將20%Triton X-100強行注入黏的細(xì)胞裂解液中至終濃度為1%,溫和混合30 min后,加入DNase和RNase至終濃度為5 μg/mL,4 ℃振蕩10 min。10 000 r/min離心10 min收集上清液,?。保?μL上清液進行SDS-PAGE電泳,用Gene Tool分析,比較不同凍融次數(shù)對GST-AHP濃度的影響。
1.2.6酶法與超聲波法相結(jié)合破碎菌體按每克濕菌體加3 mL含有2 mmol/L EDTA的 1×PBS的比例將菌體沉淀重懸,加溶菌酶至終濃度20 000 U/mL,室溫放置30 min。?。玻埃?mL酶解液超聲波破碎,每破碎5 min取樣1次,鏡檢計算破碎率;同時取樣1 mL,離心收集上清液?。保?μL上樣進行SDS-PAGE電泳檢測,用Gene Tool分析,比較不同超聲時間對GST-AHP濃度的影響。超聲波處理參數(shù):Ф13 mm螺紋探頭和Ф13 mm螺紋探頭可換尖端,振幅75%,開5 s,停5 s。共破碎40 min。
2結(jié)果與分析
2.1標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖1。以蛋白質(zhì)濃度(μg/mL)為橫坐標(biāo),以吸光度為縱坐標(biāo),得回歸方程:y=0.001 3x+0.045 9,R2=0.997。
2.2酶法與反復(fù)凍融法相結(jié)合的破碎條件研究結(jié)果
2.2.1凍融次數(shù)對菌體破碎率的影響結(jié)果見圖2。由圖2可見,隨著凍融次數(shù)的增多,菌體破碎率增加,當(dāng)反復(fù)凍融5次時,破碎率已達90%,6次時即達100%。
2.2.2凍融次數(shù)對GST-AHP濃度的影響結(jié)果見圖3和圖4。由圖3和圖4可見,反復(fù)凍融6次時,上清液中GST-AHP濃度已達到最大。因此反復(fù)凍融的次數(shù)確定為6次。此時,上清液中GST-AHP濃度達1.86 g/L。
2.3酶法和超聲波法相結(jié)合的破碎條件研究結(jié)果
2.3.1超聲時間對菌體破碎率的影響結(jié)果見圖5。由圖5可見,隨著超聲時間的延長,菌體破碎率增加,當(dāng)超聲時間達到30 min時,菌體破碎率達到100%。
2.3.2超聲時間對GST-AHP濃度的影響結(jié)果見圖6和圖7。由圖6和圖7可見,超聲時間達30 min時,上清液中GST-AHP濃度達到最大(1.83 g/L),超聲時間進一步延長,GST-AHP濃度不再增加。因此確定超聲破碎時間以30 min為宜。
2.4兩種方法的破碎效果比較
反復(fù)凍融6次或超聲波破碎30 min,細(xì)胞破碎率均可達到100%,此時,上清液中GST-AHP濃度達到最大,分別為1.86和1.83 g/L。反復(fù)凍融法操作較繁瑣,耗時長,需要添加價格昂貴的DNase和RNase降解DNA及RNA以降低破碎液黏度,且每次處理量不能太大;而超聲波破碎時間短、效率高,且對細(xì)胞破碎所釋放的DNA、RNA具有一定剪切作用,破碎同時能有效降低其黏度,綜合考慮選擇超聲波破碎為工程菌細(xì)胞破碎條件。
3結(jié)論
試驗結(jié)果表明,重組血管緊張素轉(zhuǎn)化酶抑制肽工程菌E.coli BL21(pGEX-4T-2-AHP)破碎的最優(yōu)工藝條件為:每克濕菌體重懸于3mL含有2mmol/L EDTA的1×PBS緩沖液中,加溶菌酶至終濃度為20 000 U/mL,室溫放置30 min后超聲波破碎30 min,4 ℃ 10 000 r/min離心10 min取上清液。超聲波破碎條件:Sonics(VC×600型)超聲波破碎儀,Ф13 mm螺紋探頭和Ф13 mm螺紋探頭可換尖端,振幅75%,開5 s,停5 s。此條件下上清液中可溶性GST-AHP濃度達到1.83 g/L。
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