6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)化學(xué)元素的特征1)

宋曉霞 王 琦 李 玉

(食藥用菌教育部工程研究中心(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué))，長(zhǎng)春，130118)

6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)化學(xué)元素的特征1)

宋曉霞 王 琦 李 玉

(食藥用菌教育部工程研究中心(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué))，長(zhǎng)春，130118)

在對(duì)黏菌絨泡菌目淡黃絨泡菌、煤絨菌、針箍菌、大孢鈣皮菌、鱗鈣皮菌和暗孢鈣皮菌6種原生質(zhì)團(tuán)形態(tài)特征進(jìn)行觀察的基礎(chǔ)上，利用能量色散X射線(xiàn)分析(EDX)技術(shù)對(duì)其凍干粉末進(jìn)行化學(xué)元素組成及質(zhì)量分?jǐn)?shù)分析。結(jié)果表明：6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)的化學(xué)元素組成及質(zhì)量分?jǐn)?shù)與其形態(tài)特征有密切的聯(lián)系。它們共同含有C、O、Na、Mg、P、S、K、Ca 8種元素，部分含有Al、Si和Cl元素；不同物種中各元素的質(zhì)量分?jǐn)?shù)不同，C、Na、P和Ca元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)的變化規(guī)律與6種黏菌隸屬的科分類(lèi)階元有關(guān)，O、S、K、Mg質(zhì)量分?jǐn)?shù)與6種原生質(zhì)團(tuán)在統(tǒng)一培養(yǎng)條件下爬行時(shí)偏好的形態(tài)特征有關(guān)。

黏菌；顯型原生質(zhì)團(tuán)；形態(tài)特征；化學(xué)元素；能量色散X射線(xiàn)分析

黏菌是一類(lèi)廣泛分布在溫帶森林生態(tài)系統(tǒng)中的微生物，它的營(yíng)養(yǎng)體——原生質(zhì)團(tuán)是一個(gè)內(nèi)部包含許多細(xì)胞核的單細(xì)胞結(jié)構(gòu)，通過(guò)與細(xì)菌、真菌、原生動(dòng)物等生物之間的相互協(xié)作關(guān)系積極參與著森林生態(tài)系統(tǒng)中倒木、枯枝落葉等物質(zhì)的降解、氮元素的固定等[1-3]。目前，黏菌原生質(zhì)團(tuán)主要分為：原始型原生質(zhì)團(tuán)、隱型原生質(zhì)團(tuán)、團(tuán)毛型原生質(zhì)團(tuán)和顯型原生質(zhì)團(tuán)4種類(lèi)型[4]。其中，顯型原生質(zhì)團(tuán)因其形態(tài)較大，不僅能經(jīng)常在野外被觀察到，而且很容易在實(shí)驗(yàn)室培養(yǎng)成功，已經(jīng)被廣泛作為生物學(xué)科研、教學(xué)，細(xì)胞衰老和癌癥研究，生物趨食物性策略和選擇機(jī)理研究的重要模式材料[5-7]。生物與其生境的相互選擇是兩者長(zhǎng)期進(jìn)化的結(jié)果，生境中的資源和約束條件塑造了生物的形態(tài)和生理，其中生物內(nèi)部所含有的化學(xué)元素就是環(huán)境資源在生物體內(nèi)遺留的印跡之一[8]。能量色散X射線(xiàn)分析(EDX)技術(shù)是一種能快速檢測(cè)物體表面化學(xué)元素的技術(shù)，已經(jīng)被廣泛用于活生物體各結(jié)構(gòu)表面的化學(xué)元素分析[9-10]。但目前在黏菌中，EDX技術(shù)只被用于子實(shí)體囊被和柄結(jié)構(gòu)表面的化學(xué)元素分析[11-18]，尚無(wú)用于對(duì)淡黃絨泡菌(Physarummelleum)、煤絨菌(Fuligosepica)、針箍菌(Physarellaoblonga)、鱗鈣皮菌(Didymiumsquamulosum)、大孢鈣皮菌(Didymiummegalosporum)和暗孢鈣皮菌(Didymiummelanospermum)6種顯型原生質(zhì)團(tuán)的化學(xué)元素研究。因此，在比對(duì)分析6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)形態(tài)特征的基礎(chǔ)上，采用EDX技術(shù)對(duì)其化學(xué)元素特征進(jìn)行分析，從而來(lái)探尋各種化學(xué)元素在原生質(zhì)團(tuán)形態(tài)和生理活動(dòng)中的作用。

1 材料與方法

1.1 供試材料

6種黏菌采集信息見(jiàn)表1，物種鑒定詳細(xì)過(guò)程參照朱鶴等[19]。

1.2 原生質(zhì)團(tuán)培養(yǎng)方法

原生質(zhì)團(tuán)的培養(yǎng)方法參照Liu Pu等[20]，所用培養(yǎng)基為3%燕麥瓊脂培養(yǎng)基，20～25 ℃培養(yǎng)。

表1 黏菌采集信息

1.3 化學(xué)元素測(cè)定方法

用蓋玻片水平切取6種成熟原生質(zhì)團(tuán)部分扇形前沿區(qū)域放入離心管中，用液氮速凍后經(jīng)凍干機(jī)凍干，在離心管中用玻璃研磨棒將凍干的原生質(zhì)團(tuán)研碎備用。在體式顯微鏡下，將原生質(zhì)團(tuán)粉末均勻涂抹在樣品臺(tái)上的電用雙面膠表面。用掃描電鏡確定分析面后，用能量色散X射線(xiàn)自動(dòng)記錄各分析樣面表面化學(xué)元素種類(lèi)的分布圖譜及質(zhì)量分?jǐn)?shù)(每個(gè)元素的質(zhì)量所占總元素質(zhì)量的比例)，加速電壓為15 kV，測(cè)試時(shí)間為100 s，每個(gè)原生質(zhì)團(tuán)分別取3個(gè)分析樣面進(jìn)行測(cè)定和統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)形態(tài)特征

6種黏菌都為絨泡菌目物種，它們的原生質(zhì)團(tuán)都具有顯型原生質(zhì)團(tuán)典型的伸展面扇形、后端網(wǎng)脈狀的結(jié)構(gòu)[4]，其中隸屬于絨泡菌科的淡黃絨泡菌、煤絨菌、針箍菌都為淡黃色，隸屬于鈣皮菌科的大孢鈣皮菌和暗孢鈣皮菌都為黃綠色、鱗鈣皮菌為白色(圖1)。

A.淡黃絨泡菌；B.煤絨菌；C.針箍菌；D.大孢鈣皮菌；E.暗孢鈣皮菌；F.鱗鈣皮菌。

顯型原生質(zhì)團(tuán)可以通過(guò)內(nèi)部細(xì)胞核的持續(xù)有絲分裂、與其它原生質(zhì)團(tuán)進(jìn)行融合來(lái)不斷改變?cè)|(zhì)團(tuán)的生物量；通過(guò)內(nèi)部細(xì)胞質(zhì)的節(jié)律性往返運(yùn)動(dòng)和重新分配來(lái)不斷改變?cè)|(zhì)團(tuán)爬行形狀和方向[21]。雖然在這一點(diǎn)上6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)具有共性，但是在3%燕麥瓊脂統(tǒng)一培養(yǎng)條件下，6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)在爬行時(shí)呈現(xiàn)出對(duì)一些形態(tài)特征的偏好性，可分為兩大類(lèi)：一類(lèi)是以煤絨菌原生質(zhì)團(tuán)為主；一類(lèi)是以大孢鈣皮菌原生質(zhì)團(tuán)為主。在爬行時(shí)，煤絨菌原生質(zhì)團(tuán)經(jīng)常選擇向不同方向獨(dú)立伸出幾個(gè)長(zhǎng)主脈的方式向前移動(dòng)(圖2A)，即使伸展面為扇形結(jié)構(gòu)時(shí)，其旁邊也能經(jīng)常觀察到獨(dú)立的一個(gè)分支(圖1B)。一般伸展面為扇形結(jié)構(gòu)的后端網(wǎng)孔都比較大，呈不規(guī)則狀(圖1B，圖2A)。鱗鈣皮菌原生質(zhì)團(tuán)也經(jīng)常選擇伸出一個(gè)長(zhǎng)主脈的方式向前移動(dòng)(圖2B)，并且其前端的菌脈可完全斷裂呈一個(gè)原生質(zhì)不均勻分布的聚集區(qū)(圖2C)。大孢鈣皮菌原生質(zhì)團(tuán)經(jīng)常以一個(gè)扇形結(jié)構(gòu)整體向前移動(dòng)，伸展面前沿的細(xì)胞質(zhì)邊緣明確(圖1D)，而且可在菌脈的兩側(cè)同時(shí)伸出偽足，呈現(xiàn)一個(gè)近似無(wú)網(wǎng)孔的原生質(zhì)團(tuán)結(jié)構(gòu)(圖2E)。在這一點(diǎn)上，淡黃絨泡菌(圖2F)和暗孢鈣皮菌(圖2G)與大孢鈣皮菌一致。另外，針箍菌對(duì)這兩類(lèi)形態(tài)特征的偏好性無(wú)差異，能經(jīng)常同時(shí)觀察到這2種形態(tài)特征(圖2D，圖2H)。

2.2 原生質(zhì)團(tuán)化學(xué)元素特征

經(jīng)EDX技術(shù)檢測(cè)(表2)：6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)共同含有C、O、Na、Mg、P、S、K、Ca 8種元素，它們是生命中的大量元素。其中，C元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高(45%～66%)，其次是O元素(21%～45%)。這符合它們作為生命物質(zhì)基本元素的特征，主要以有機(jī)態(tài)參與著生物組織、器官等結(jié)構(gòu)的構(gòu)建和各種生物大分子的組成，所以在形態(tài)特征上存在共性的6種原生質(zhì)團(tuán)中檢測(cè)到了差異不大的C元素含量，其中3個(gè)鈣皮菌科物種的質(zhì)量分?jǐn)?shù)比3個(gè)絨泡菌科物種略高。另外，除了有機(jī)態(tài)外，O元素還是生物生存所必需的無(wú)機(jī)態(tài)水分子中的最主要組成元素之一，這可能是6種原生質(zhì)團(tuán)中O元素含量差異較大的主要原因。由于凍干時(shí)會(huì)造成原生質(zhì)團(tuán)水分的散失，這樣含水量較高的原生質(zhì)團(tuán)經(jīng)凍干后O元素的含量最低，相反則最高。在爬行時(shí)偏好整體呈扇形結(jié)構(gòu)的大孢鈣皮菌、暗孢鈣皮菌和淡黃絨泡菌原生質(zhì)團(tuán)的O元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)為25.06%～33.73%，偏好延伸主脈的煤絨菌和鱗鈣皮菌原生質(zhì)團(tuán)O元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)在42%以上，爬行時(shí)2種形態(tài)特征都偏好的針箍菌原生質(zhì)團(tuán)O元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)最低，為21.85%，說(shuō)明原生質(zhì)團(tuán)爬行時(shí)偏好的形態(tài)特征與其內(nèi)部的含水量有關(guān)。

A.煤絨菌；B-C.鱗鈣皮菌；D、H.針箍菌；E.大孢鈣皮菌；F.淡黃絨泡菌；G.暗孢鈣皮菌。

表2 黏菌原生質(zhì)團(tuán)的化學(xué)元素種類(lèi)及質(zhì)量分?jǐn)?shù) %

Ca、Mg、K和Na元素主要以離子態(tài)參與著生物的各種生命活動(dòng)，如細(xì)胞滲透平衡和營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)運(yùn)輸?shù)?。?個(gè)原生質(zhì)團(tuán)中，它們的質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為2.00%～15.00%，0.29%～0.76%，0.58%～10.00%、0.27～0.68%。已有研究證明顯型原生質(zhì)團(tuán)——多頭絨泡菌(Physarumpolycephalum)中含有Ca、Mg、K、Na 4種離子[22-23]，特別是前3種離子與原生質(zhì)團(tuán)運(yùn)動(dòng)有關(guān)，是原生質(zhì)團(tuán)收縮蛋白聚合和收縮時(shí)必需的元素[24-25]。研究表明原生質(zhì)團(tuán)不同部位存在的各元素離子態(tài)的濃度不同，Mg2+在胞內(nèi)和胞外的濃度相差不大，Ca2+濃度在胞外較大[23]，而且在爬行中的原生質(zhì)團(tuán)前端平均濃度比后端高[26]。由于取樣主要取的是每個(gè)原生質(zhì)團(tuán)的扇形前沿部分，直接檢測(cè)凍干粉末，暫時(shí)還不能確定各種元素位于胞外還是胞內(nèi)。但4種元素的質(zhì)量分?jǐn)?shù)在6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)中的分布有規(guī)律性，與3個(gè)絨泡菌科物種相比，3個(gè)鈣皮菌科物種具有較低的Ca元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)、較高的Na元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)；爬行時(shí)偏好2種形態(tài)特征的針箍菌原生質(zhì)團(tuán)具有較高的Mg和K元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)，其次是偏好整體呈扇形結(jié)構(gòu)的淡黃絨泡菌、大孢鈣皮菌和暗孢鈣皮菌，最后是偏好主脈延伸的煤絨菌和鱗鈣皮菌。

P元素不僅是磷脂、核蛋白的主要組成成分，而且是許多酶、ATP的主要成分，它積極參與著原生質(zhì)團(tuán)的新陳代謝、內(nèi)部原生質(zhì)流的節(jié)律性往返運(yùn)動(dòng)等[27]，6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)的P質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.8%～4.0%，其中3個(gè)鈣皮菌科物種的P質(zhì)量分?jǐn)?shù)都高于3個(gè)絨泡菌科物種；S元素是蛋白質(zhì)的重要組成成分之一，積極參與著許多酶和多糖等重要生命化合物的組成，在爬行時(shí)采用2種方式的針箍菌擁有最高的S元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)，為9.09%；采用扇形結(jié)構(gòu)的淡黃絨泡菌、大孢鈣皮菌和暗孢鈣皮菌質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1.11%～3.65%；采用主脈延伸的煤絨菌和鱗鈣皮菌質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.40%～0.58%。它還是產(chǎn)生黃色的主要元素之一，在6個(gè)原生質(zhì)團(tuán)中唯一不帶黃色的鱗鈣皮菌原生質(zhì)團(tuán)具有最低的S元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)，僅0.4%。另外，Cl元素是天然淡水和海洋中的大量元素，而Al和Si主要是土壤中的大量元素，而顯型原生質(zhì)團(tuán)在森林生態(tài)系統(tǒng)中偏愛(ài)的基物類(lèi)型就是潮濕的與土壤接觸的枯枝落葉或腐爛倒木等[4]，這可能是在部分原生質(zhì)團(tuán)中檢測(cè)到該元素的原因，其中針箍菌原生質(zhì)團(tuán)擁有最高的3種元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)，其次是暗孢鈣皮菌，最后是淡黃絨泡菌(Al和Si元素)和煤絨菌(Cl)。

3 結(jié)論與討論

6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)在形態(tài)特征上存在共性而且易變，除顏色部分略有差異之外，很難從原生質(zhì)團(tuán)形態(tài)特征上來(lái)區(qū)別，而且它們?cè)诨瘜W(xué)元素組成上也有共性，共同含有C、O、Na、Mg、P、S、K、Ca 8種元素，部分物種中檢測(cè)到Al、Si和Cl元素。從這11種元素在6種原生質(zhì)團(tuán)所占的質(zhì)量分?jǐn)?shù)來(lái)看，與它們?cè)谏?xì)胞中所占比例的規(guī)律相似，明顯與水、土壤、巖石、空氣等無(wú)生命物體主要含有的化學(xué)元素不同。雖然暫時(shí)無(wú)法確定每個(gè)物種所含元素的具體質(zhì)量，但是從各化學(xué)元素的相對(duì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)來(lái)看，與隸屬于絨泡菌科的淡黃絨泡菌、煤絨菌和針箍菌原生質(zhì)團(tuán)相比，隸屬于鈣皮菌科的大孢鈣皮菌、鱗鈣皮菌和暗孢鈣皮菌擁有較高的C、Na和P元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)，較低的Ca元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

6種黏菌原生質(zhì)團(tuán)在同一培養(yǎng)條件下，爬行時(shí)偏好的形態(tài)特征不同：煤絨菌和鱗鈣皮菌偏好延伸主脈，大孢鈣皮菌、暗孢鈣皮菌和淡黃絨泡菌偏好整體呈扇形結(jié)構(gòu)，針箍菌2種形態(tài)特征都偏好。三者含有的相同化學(xué)元素相比，第三者含有最低的O元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)，最高的S、K和Mg元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)；第一者含有最高的O元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)，最低的S、K和Mg元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)；第二者位于兩者之間。前面已經(jīng)提到O元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)的差異可能是原生質(zhì)團(tuán)內(nèi)部含水量的不同所造成的，這樣主要以離子態(tài)存在于生物體中的K和Mg元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)與之相反，則成為可能。說(shuō)明不同培養(yǎng)條件下生理?xiàng)l件的不同可能是原生質(zhì)團(tuán)形態(tài)特征易變的主要因素。

由于EDX技術(shù)無(wú)法明確各種化學(xué)元素在生物體內(nèi)各存在形式的質(zhì)量比例，但是基于各化學(xué)元素的原子結(jié)構(gòu)，C、S、O和P元素主要以結(jié)合態(tài)存在于生物體內(nèi)，Na、Ca、K和Mg元素主要以離子態(tài)存在于生物體內(nèi)。對(duì)Ca元素來(lái)說(shuō)，石灰質(zhì)可能是其存在于絨泡菌目物種中的最主要形式，已有研究證明它廣泛存在于絨泡菌目物種的原生質(zhì)團(tuán)和子實(shí)體中[11，17，28-29]。Schoknecht[11]利用EDX技術(shù)檢測(cè)絨泡菌科和鈣皮菌科物種子實(shí)體囊被表面的石灰質(zhì)化學(xué)元素時(shí)就發(fā)現(xiàn)：檢測(cè)的11種絨泡菌科物種中都含有Ca和P元素(包括針箍菌)；10種鈣皮菌科物種中都含有Ca元素(包括鱗鈣皮菌和暗孢鈣皮菌)，其中僅有1種含有微量的P。說(shuō)明各化學(xué)元素質(zhì)量分?jǐn)?shù)之間的差異除了生理?xiàng)l件的影響之外，可能還具有系統(tǒng)分類(lèi)學(xué)的劃分意義。

[1] Stephenson S L, Schnittler M, Novozhilov Y K. Myxomycete diversity and distribution from the fossil record to the present[J]. Biodiversity and Conservation,2008,17(2):285-301.

[2] Kalyanasundaram I. A positive ecological role for tropical myxomycetes in association with bacteria[J]. Systematics and Geography of Plants,2004,74(2):239-242.

[3] Dudka I O, Romanenko K O. Co-existence and interaction between myxomycetes and other organisms in shared niches[J]. Acta Mycologica,2006,41(1):99-112.

[4] Keller H W, Kilgore C M, Everhart S E, et al. Myxomycete plasmodia and fruiting bodies: unusual occurrences and user-friendly study techniques[J]. Fungi,2008,1(1):24-37.

[5] Keller H W, Everhart S E. Importance of Myxomycetes in biological research and teaching[J]. Fungi,2010,3:13-27.

[6] Dussutour A, Latty T, Beekman M, et al. Amoeboid organism solves complex nutritional challenges[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2010,107(10):4607-4611.

[7] Latty T, Beekman M. Irrational decision-making in an amoeboid organism: transitivity and context-dependent preferences[J]. Proceedings of the Royal Society B,2011,278:307-312.

[8] Malmstorm C. Ecologists study the interactions of organisms and their environment[J]. Nature Education Knowledge,2012,3(10):88.

[9] Smith S A, Richards K S. Ultrastructure and microanalysis of the protoscoles hooks ofEchinococcusgranulosus[J]. Parasitology,1991,103(2):267-274.

[10] Heckmann R A, Amin O M, Radwan N A E, et al. Comparative chemical element analysis using energy dispersive X-ray microanalysis (EDXA) for four species of Acanthocephala[J]. Scientica Parasitologica,2012,13(1):27-35.

[11] Schoknecht J D. SEM and X-ray microanalysis of calcareous deposits in myxomycete fructifications[J]. Transactions of the American Microscopical Society,1975,94(2):216-213.

[12] Nelson R K, Scheets R W, Alexopoulos C J. Elemental composition ofMetatrichiavespariumsporangia[J]. Mycotaxon,1977,5(2):365-375.

[13] Nelson R K, Scheetz R W. Elemental composition ofClastodermadebaryanumstalks[J]. Mycologia,1982,74(6):1016-1020.

[14] Aldrich H C. Influence of inorganic ions on color of lime in the Myxomycetes[J]. Mycologia,1982,74(3):404-411.

[15] Chapman C P, Nelson R K, Orlowski M. Chemical composition of the spore case of the acellular slime moldFuligoseptica[J]. Experimental Mycology,1983,7(1):57-65.

[16] Setala A, Nuorteva P. High metal contents found inFuligosepticaL. Wiggers and some other slime molds (Myxomycetes)[J]. Karstenia,1989,19(1):37-44.

[17] 陳雙林,馬芳,陳萍,等.兩種粘菌子實(shí)體表面鈣質(zhì)沉積物的掃描電鏡觀察和微區(qū)分析[J].電子顯微學(xué)報(bào),2005,24(3):226-229.

[18] 陳雙林,鐘成剛,吳鳴謙,等.發(fā)網(wǎng)菌目黏菌子實(shí)體微量元素的初步分析[J].菌物研究,2008,6(4):220-225.

[19] 朱鶴,李姝,宋曉霞,等.內(nèi)蒙古樟子松林黏菌資源報(bào)道[J].東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2013,41(1):124-128.

[20] Liu Pu, Wang Qi, Li Yu. Spore-to-spore agar culture of the myxomycetePhysarumglobuliferum[J]. Archives of Microbiology,2010,192(2):97-101.

[21] Gray W D, Alexopoulos C J. Biology of the Myxomycetes[M]. New York: Ronald Press,1968.

[22] Kuroda R, Kuroda H. Calcium accumulation in vacuoles ofPhysarumpolycephalumfollowing starvation[J]. Journal of Cell Science,1980,44:75-85.

[23] Nagai R, Ishima Y, Kukita F, et al. Calcium and magnesium contents of ectoplasm and endoplasm ofPhysarumpolycephalumplasmodium[J]. Protoplasma,1975,86(1/3):169-174.

[24] Adelman M R. Physarum action observations on its presence, stability, and assembly in plasmodial extracts and development of an improved purification procedure[J]. Biochemistry,1977,16(22):4862-4871.

[25] Hinssen H, D’Haese J. Synthetic fibrils fromPhysarumactomyosin-self assembly, organization and contraction[J]. Cytobiologie,1976,13:132-157.

[26] Natsume K, Miyake Y, Yano M, et al. Development of spatio-temporal pattern of Ca2+on the chemotactic behaviour ofPhysarumpolycephalum[J]. Protoplasma,1992,166(1/2):55-60.

[27] Mori Y, Ueda T, Kobatake Y. NAD(P)H oscillation in relation to the rhythmic contraction in thePhysarumplasmodium[J]. Protoplasma,1987,139(2/3):141-144.

[28] 王曉麗,李艷雙,李玉.幾種黏菌顯型原質(zhì)團(tuán)培養(yǎng)研究[J].吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2005,27(2):140-143.

[29] Pobequin T. Contribution a I’étude des carbonates de calcium, précipitation du calcaire par les végétaux comparaison avec le monde animal[J]. Annales des Sciences Naturelles: Botanique,1954,15:29-104.

Chemical Element Characteristics of Six Plasmodia in Myxomycetes/

Song Xiaoxia, Wang Qi, Li Yu(Engineering Research Center of Chinese Ministry of Education for Edible and Medicinal Fungi, Jilin Agricultural University, Changchun 130118, P. R. China)//Journal of Northeast Forestry University.-2014,42(1).-112～115，121

Myxomycetes; Phaneroplasmodium; Morphological characteristics; Chemical elements; Energy dispersive X-ray analysis (EDX)

1) 國(guó)家自然科學(xué)基金(31070012)；博士學(xué)科點(diǎn)專(zhuān)項(xiàng)科研基金(20102223110001)。

宋曉霞，女，1983年9月生，食藥用菌教育部工程研究中心(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué))，博士研究生。

王琦，食藥用菌教育部工程研究中心(吉林農(nóng)業(yè)大學(xué))，教授。E-mail：qwang2003@hotmail.com。

2013年4月9日。

Q939

責(zé)任編輯：程 紅。

The experiment was conducted to study the type and relative content of chemical element among freeze-dried powder of six plasmodia in Myxomycetes, involvingPhysarummelleum,Fuligoseptica,Physarellaoblonga,Didymiummegalosporum,DidymiumsquamulosumandDidymiummelanospermum, by Energy Dispersive X-ray analysis (EDX) based on their morphological characteristics. The characteristics of chemical element are closely relative to their morphological characteristics. Eight elements, including carbon, oxygen, sodium, magnesium, phosphorus, sulphur, potassium and calcium, are in all six plasmodia, and three elements, including aluminium, silicon and chlorine, are only in part of plasmodia. The relative content of chemical element is different in each plasmodium. The relative contents of carbon, sodium, phosphorus and calcium in each plasmodium are close to its belonged families, and those of oxygen, sulphur, potassium and magnesium are close to its preferred morphological characteristics under same cultured condition.