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    miR-29a抑制胃癌細胞內靶基因VEGF-A的表達及意義

    2014-07-25 11:29:15王國威王宗華王仙園范亞川鄒利全李學成
    西南國防醫(yī)藥 2014年1期
    關鍵詞:腺病毒細胞株熒光素酶

    王國威,王宗華,王仙園,范亞川,鄒利全,李學成,陳 陵

    miR-29a抑制胃癌細胞內靶基因VEGF-A的表達及意義

    王國威,王宗華,王仙園,范亞川,鄒利全,李學成,陳 陵

    目的 驗證胃癌細胞株SGC-7901內miR-29a對靶基因VEGF-A的直接調控作用。方法 采用負載miR-29a的腺病毒載體(Ad-miR29a)感染人胃癌細胞株SGC-7901,上調SGC-7901細胞內miR-29a的表達豐度后,采用RT-qPCR及Western blot法分別檢測SGC-7901細胞內VEGF-A在mRNA及蛋白水平的表達;進一步采用雙熒光素酶實驗及突變實驗,驗證miR-29a是否通過結合在VEGF-A 3'UTR而直接抑制靶基因表達。結果 與感染陰性對照Ad-LacZ的SGC-7901細胞相比,感染Ad-miR29a的SGC-7901細胞內VEGF-A蛋白表達下降(0.42±0.02 vs.0.91±0.03,P<0.01),且VEGF-A mRNA水平亦下調(0.75±0.21 vs.1.15±0.25,P<0.05);熒光素酶實驗顯示,與陰性對照相比,轉染miR-29a mimic后,HEK293細胞螢火蟲熒光素酶活性明顯下降(0.56±0.13 vs.0.93±0.06,P<0.05);而在VEGF-A 3'UTR與miR-29a的結合位點被突變之后,HEK293細胞螢火蟲熒光素酶活性得以恢復。結論 miR-29a通過結合于VEGF-A 3'UTR相應位點,直接抑制VEGF-A在mRNA及蛋白水平的表達。miR-29a可能成為胃癌基因治療的有效靶標。

    微RNAs;血管內皮生長因子;miR-29a;胃癌

    胃癌是一種最常見的惡性腫瘤,難以預測的復發(fā)性導致高死亡率。由于早期胃癌無明顯癥狀,大多數患者就診時已到中晚期,致使治療效果不理想。因此,了解及掌握胃癌的發(fā)病機制,尋找新的診斷用生物標記,對于胃癌的早期發(fā)現、診斷及治療至關重要。miRNAs作為一類內源性非編碼的小RNAs,通過與靶基因特異性作用,從而參與調節(jié)腫瘤發(fā)生、發(fā)展與轉移等關鍵環(huán)節(jié)而成為近年來的研究熱點。其中miR-29a是新近發(fā)現可能與腫瘤密切相關的miRNA分子之一,其在眾多實體腫瘤如神經膠質瘤、肝細胞癌、肉瘤、腦腫瘤等中均呈現低表達狀態(tài),通過抑制靶基因的表達而作為腫瘤抑制基因存在,在腫瘤發(fā)生、發(fā)展及侵襲轉移中發(fā)揮著至關重要的作用[1-2]。本課題前期研究發(fā)現,miR-29a可抑制胃癌細胞株SGC-7901的增殖與侵襲能力[3-4];且胃癌組織內miR-29a與血管內皮細胞生長因子A(VEGF-A)呈負相關[5],因此推測miR-29a可能通過抑制VEGF-A從而抑制胃癌增殖與轉移。本研究擬采用表達調控實驗及雙熒光素酶實驗,驗證miR-29a對其靶基因VEGF-A的直接調控作用。

    1 材料與方法

    1.1 材料 人胃腺癌細胞株SGC-7901、人胚腎細胞株HEK-293(中科院上海生科院細胞資源中心);標準胎牛血清、高糖DMEM培養(yǎng)液、RPMI 1640培養(yǎng)液(HyClone);RNAiso RNA抽提試劑、逆轉錄試劑盒及SYBR Premix Ex Taq試劑盒(TaKaRa);miR-29a mimic、陰性對照Scrambled RNA、miR-29a引物套裝(廣州銳博);Lipofectamin2000轉染試劑(Invitrogen);VEGF-A mRNA的RT-qPCR引物由上海生工合成純化,其上游序列[6]:5'-CCTTGCTGCTCTACCTCCAC-3';下游序列:5'- ATGATTCTGCCCTCCTCCTT-3',擴增片段長度74 bp;Western blot ECL檢測試劑盒(上海碧云天);雙熒光素酶試劑盒(Promega);小鼠抗人VEGF-A單克隆抗體(Santa Cruz);小鼠抗人GAPDH單克隆抗體(上??党?;負載有miR-29a表達序列的復制缺陷型腺病毒(Ad-miR29a),由本室包裝保存[7];負載有β-半乳糖苷酶(β-gal)基因LacZ 的復制缺陷型腺病毒,由本室保存[8];負載VEGF-A 3'UTR的螢火蟲熒光素酶報告質粒和突變質粒,由重慶金麥構建;7500實時熒光定量PCR儀(ABI);多功能酶標儀(Thermo)。

    1.2 細胞培養(yǎng) SGC-7901細胞培養(yǎng)于含有10%標準胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)液中,置于37 ℃、5% CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。HEK293細胞培養(yǎng)于含有10%標準胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)液中,置于37 ℃、5% CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    1.3 腺病毒感染SGC-7901細胞 將腺病毒液以20∶1的感染復數(MOI)感染SGC-7901細胞,繼續(xù)培養(yǎng)96 h后收集細胞,分別檢測miR-29a、VEGF-A mRNA以及VEGF-A蛋白表達水平。以感染Ad-LacZ 的SGC-7901細胞作為陰性對照,未感染腺病毒的SGC-7901細胞作為空白對照。

    1.4 RT-qPCR檢測VEGF-A mRNA的表達 以U6管家基因為內參,按照RNAiso試劑說明書提取總RNA,并測定mRNA濃度;按照TaKaRa RT逆轉錄試劑盒說明書合成cDNA;以U6為內參,按照SYBR Premix Ex Taq試劑盒說明書進行RT-qPCR檢測目的基因。20 μl體系配置如下:SYBR Green PCR Master Mix 10 μl,10 mol/L上下游引物各0.5 μl,cDNA 1 μl,ddH2O 8 μl,混勻;預變性95 ℃ 30 s,反應40個循環(huán),條件為95 ℃ 5 s,60 ℃ 34 s,72 ℃延伸3 min。采用2-△△Ct法進行結果分析[9],比較各組RQ值(RQ=2-△△Ct)。

    1.5 Western blot法檢測VEGF-A的表達 各組細胞樣本經SDS裂解液裂解后,提取總蛋白,經BCA法定量后,12%SDS-PAGE電泳后,轉膜至碳酸纖維膜上,5%脫脂奶粉封閉2 h,經TBST洗滌液洗滌后,分別加入鼠抗人VEGF-A多克隆抗體(1∶1000稀釋)或GAPDH單克隆抗體(1∶2000稀釋),4 ℃孵育過夜,羊抗鼠二抗孵育1 h,化學發(fā)光試劑盒顯色。采用Image J軟件對條帶的灰度值進行分析。

    1.6 熒光素報告實驗 細胞轉染前24 h,將處于對數生長期的HEK293細胞接種于24孔板,繼續(xù)培養(yǎng)至80%~90%融合度時進行轉染。參照Lipofectamin2000說明書操作,共轉染熒光素酶報告質粒(pMIR-Report-VEGF-A 3'UTR)和內參質粒pRL-TK,以及相應miRNA或Inhibitor。孵育48 h后,采用雙熒光素酶試劑盒檢測熒光素酶強度。

    1.7 統(tǒng)計學方法 所有實驗均重復3次,采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件進行分析,計量資料采用t檢驗,P<0.05為差異具有統(tǒng)計學意義。

    2 結果

    2.1 SGC-7901細胞內VEGF-A 蛋白表達 Western blot 結果顯示,miR-29a過表達后的SGC-7901細胞內,VEGF-A表達顯著低于Ad-LacZ腺病毒對照組(0.42±0.02 vs.0.91±0.03,P<0.01,圖1)。

    2.2 miR-29a對VEGF-A mRNA表達的影響 在感染Ad-miR29a后,SGC-7901細胞內VEGF-A mRNA表達受到明顯下調(0.75±0.21 vs.1.15±0.25,P<0.05),而未感染的空白對照組及LacZ腺病毒對照組的組間差異并無統(tǒng)計學意義(圖2)。

    圖1 Western blot檢測SGC-7901細胞內VEGF-A表達情況

    圖2 RT-qPCR檢測Ad-miR29a感染后VEGF-A mRNA的表達情況

    2.3 雙熒光素酶實驗 與陰性對照相比,轉染miR-29a mimic并共轉染雙熒光素酶質粒后,HEK293細胞內VEGF-A 3'UTR野生型熒光素酶活性顯著下降(0.56±0.13 vs.0.93±0.06,P<0.05);而在VEGF-A 3'UTR相應結合位點突變之后(圖3A),HEK293細胞內螢火蟲熒光素酶活性恢復(圖3B)。

    圖3 雙熒光素酶實驗結果

    A:miR-29a與VEGF-A 3'UTR結合位點及突變位點設計;B:各組HEK293細胞內相對熒光素酶活性檢測

    3 討論

    miRNAs發(fā)現10余年來,由于其廣泛的基因調控及在眾多生物學行為中發(fā)揮重要作用而備受關注。越來越多研究發(fā)現,miRNAs在腫瘤發(fā)生、發(fā)展過程中發(fā)揮著巨大的作用。已有研究顯示,胃癌中存在許多miRNA分子表達異常,其生物學行為和一些miRNA分子有著密切關系。其中miR-29a被認為是一種腫瘤抑制性miRNA,通過調節(jié)多種靶基因(Mcl-1[10-11]、DNMT[12-13]、CDK6[1]及CCND2等[14])參與腫瘤的發(fā)生發(fā)展及凋亡過程。miRNA對靶基因的調控較為復雜,一條miRNA可能調控多個靶基因,而一個靶基因亦可能受到多條miRNA的調控。因此,miR-29a可能還可通過抑制其他靶基因而發(fā)揮抑癌作用。本課題前期研究發(fā)現,miR-29a在胃癌組織[15]及胃癌患者血清中低表達[16],臨床病理分析進一步提示,miR-29在胃癌組織中高表達能抑制腫瘤淋巴結轉移進而改善預后[15]。體外實驗發(fā)現,miR-29a可抑制胃癌細胞株SGC-7901的增殖與侵襲能力[3-4];且胃癌組織中miR-29a表達水平與瘤內微血管密度(MVD)呈負相關[17]。瘤內MVD與VEGF-A密切相關。VEGF-A是血管生成過程中的關鍵因子,參與腫瘤血管生成和淋巴管形成,阻斷VEGF-A信號途徑可抑制腫瘤的生長和轉移[7-8]。且前期結果還發(fā)現胃癌組織內miR-29a與VEGF-A呈負相關[5],因此miR-29a可能通過抑制VEGF-A從而抑制胃癌轉移。進一步采用表達調控實驗發(fā)現,以Ad-miR29a病毒載體上調人胃腺癌SGC-7901細胞株miR-29a表達水平后,細胞內VEGF-A表達水平無論在mRNA水平還是蛋白水平均顯著下調。這表明miR-29a可抑制VEGF-A蛋白的表達水平。

    為進一步明確miR-29a抑制VEGF-A表達的機制,本研究采用生物信息學技術(http://www.targetscan.org/)預測發(fā)現,VEGF-A 3'UTR存在與miR-29a穩(wěn)定結合的位點,提示VEGF-A很可能是miR-29a的直接靶基因,miR-29a通過結合于VEGF-A 3'UTR相關位點,抑制VEGF-A的表達。因此,本研究進一步采用雙熒光素酶實驗及突變實驗進行驗證。結果發(fā)現,miR-29a可通過結合于VEGF-A 3'UTR相應位點,阻礙螢火蟲熒光素酶表達,而突變該位點后,螢火蟲熒光素酶表達得以恢復。這一結果表明,與此前其他研究者發(fā)現的miR-29a靶基因Mcl-1[10,18]、DNMT[12-13]、CDK6[1]及CCND2等[14]一樣,VEGF-A亦是miR-29a發(fā)揮抑癌作用的一個關鍵靶基因。抑制VEGF-A表達是miR-29a抑制胃癌增殖與轉移的重要機制之一。

    [1] Zhao JJ,Lin J,Lwin T,et al.microRNA expression profile and identification of miR-29 as a prognostic marker and pathogenetic factor by targeting CDK6 in mantle cell lymphoma[J].Blood,2010,115(13):2630-2639.

    [2] Wang XS,Gong JN,Yu J,et al.MicroRNA-29a and microRNA-142-3p are regulators of myeloid differentiation and acute myeloid leukemia[J].Blood,2012,119(21):4992-5004.

    [3] 覃志偉,王宗華,鄒利全,等.負載人miR-29慢病毒的包裝鑒定及對人胃癌細胞株增殖的影響[J].中國腫瘤,2011,20(6):453-456.

    [4] 劉志鵬,王宗華,盧斌,等.腺病毒介導miR-29a過表達抑制人胃癌細胞的增殖[J].中國腫瘤生物治療雜志,2013,20(3):1-5.

    [5] 李學成,盧斌,王宗華,等.胃癌組織內miR-29a與VEGF-A表達的相關性研究[J].腫瘤學雜志,2013,19(1):38-41.

    [6] Ghosh R,Lipson KL,Sargent KE,et al.Transcriptional regulation of VEGF-A by the unfolded protein response pathway[J].PLOS ONE,2010,5(3):e9575.

    [7] 高軍,范亞川,王軍,等.負載人miR-29a復制缺陷型腺病毒的包裝及鑒定[J].西南國防醫(yī)藥,2011,21(10):1045-1048.

    [8] Chen L,Tang XD,Yu ST,et al.Induction of anti-tumour immunity by dendritic cells transduced with hTERT recombinant adenovirus in mice[J].J Pathol,2009,217(5):685-692.

    [9] Livak KJ,Schmittgen TD.Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T))Method[J].Methods,2001,25(4):402-408.

    [10] Mott JL,Kobayashi S,Bronk SF,et al.mir-29 regulates Mcl-1 protein expression and apoptosis[J].Oncogene,2007,26(42):6133-6140.

    [11] Desjobert C,Renalier MH,Bergalet J,et al.MiR-29a down-regulation in ALK-positive anaplastic large cell lymphomas contributes to apoptosis blockade through MCL-1 overexpression[J].Blood,2011,117(24):6627-6637.

    [12] Fabbri M,Garzon R,Cimmino A,et al.MicroRNA-29 family reverts aberrant methylation in lung cancer by targeting DNA methyltransferases 3A and 3B[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2007,104(40):15805-15810.

    [13] Braconi C,Kogure T,Valeri N,et al.microRNA-29 can regulate expression of the long non-coding RNA gene MEG3 in hepatocellular cancer[J].Oncogene,2011,30(47):4750-4756.

    [14] Li L,Sarver AL,Alamgir S,et al.Downregulation of microRNAs miR-1,-206 and -29 stabilizes PAX3 and CCND2 expression in rhabdomyosarcoma[J].Lab Invest,2012,92(4):571-583.

    [15] 陳陵,李學成,李向紅,等.miR-29在胃癌中的表達及其臨床意義[J].臨床腫瘤學雜志,2011,16(4):315-317.

    [16] 陳陵,陳先華,李學成,等.miR-29在胃癌患者血清中的表達及對預后的影響[J].分子診斷與治療雜志,2011,3(2):17-20.

    [17] 陳陵,李學成,王軍,等.miR-29在胃癌中的表達及其與微血管密度的相關性[J].腫瘤學雜志,2011,17(4):241-244.

    [18] Desjobert C,Renalier MH,Bergalet J,et al.MiR-29a downregulation in ALK-positive anaplastic large-cell lymphomas contributes to apoptosis blockade through MCL-1 overexpression[J].Blood,2011,117(24):6627-6637.

    Suppression of target gene VEGF-A expression in gastric cancer cells by miR-29a and its significance

    Wang Guowei1,Wang Zonghua2,Wang Xianyuan2,Fan Yachuan1,Zou Liquan1,Li Xucheng3,Chen Ling1

    1.Department of Digestion,Hospital 324 of PLA,Chongqing,400020,China;2.Nursing School,the Third Military Medical University,Chongqing,400037,China;3.Emei Sanatorium of Chengdu Military Command,Emeishan City,Sichuan,614200,China

    Objective To identify the direct control effect of miR-29a in gastric cancer cell strain SGC-7901 on target gene VEGF-A.Methods Adenovirus vector Ad-miR29a which was loaded with miR-29a was used to infect the human gastric cancer cell strain SGC-7901.After the up-regulation of the miR-29a expression abundance in SGC-7901 cell,RT-qPCR and Western blot assay were used to examine the expression of VEGF-A in SGC-7901 cells.Furthermore,dual luciferase experiment and mutation experiment were carried out to identify whether miR-29a inhibited directly the expression of target gene through the combination with VEGF-A 3'UTR.Results The protein expression level of VEGF-A decreased in the SGC-7901 cells infected with Ad-miR29a compared with the level in those with negative infection with Ad-LacZ(0.42±0.02 vs.0.91±0.03,P<0.01),and the mRNA level of VEGF-A also down-regulated(0.75±0.21 vs.1.15±0.25,P<0.05).The luciferase experiment indicated that compared with the negative control group,the activity of firefly luciferase in HEK293 cells decreased significantly after the transfection of miR-29a mimic(0.56±0.13 vs.0.93±0.06,P<0.05).After the binding site of VEGF-A 3'UTR and miR-29a was mutated,the activity of firefly luciferase in HEK293 cell was recovered.Conclusion Through the combination to the relative sites of VEGF-A 3'UTR,miR-29a can directly inhibit the expression of VEGF-A in mRNA and the protein level.MiR-29a may become an effective target in the gene therapy for gastric cancer.

    microRNAs;vascular endothelial growth factor A;miR-29a;gastric cancer

    重慶市自然科學基金資助項目(cstc2011jjA10111;cstc2011jjA10114)

    400020 重慶,解放軍324醫(yī)院消化內科(王國威,范亞川,鄒利全,陳 陵);第三軍醫(yī)大學護理學院(王宗華,王仙園);成都軍區(qū)峨眉療養(yǎng)院(李學成)

    陳 陵,E-mail:lingcong_008@126.com

    R 739

    A

    1004-0188(2014)01-0006-04

    10.3969/j.issn.1004-0188.2014.01.003

    2013-07-22)

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