閆序東,王彩云,云戰(zhàn)友
(內(nèi)蒙古伊利實(shí)業(yè)集團(tuán)股份有限公司技術(shù)中心,呼和浩特010110)
乳鐵蛋白(LF)對(duì)熱敏感,容易變性失活。關(guān)于乳鐵蛋白的熱穩(wěn)定性,已有一些研究報(bào)道。HIROAKI等[1]研究了在酸性條件下牛乳鐵蛋白的熱穩(wěn)定性,發(fā)現(xiàn)脫鐵乳鐵蛋白在酸性條件下非常穩(wěn)定。CELIA等[2]研究了熱對(duì)LF抑菌活性的影響,發(fā)現(xiàn)85℃保溫10 min的熱處理強(qiáng)度未降低LF的抑菌活性。LUIS等[3]研究發(fā)現(xiàn)72℃保溫20 s或135℃保溫8 s的熱處理?xiàng)l件幾乎不影響LF的鐵結(jié)合能力,然而兩種溫度下更長(zhǎng)的時(shí)間則會(huì)降低鐵結(jié)合能力。MARIE等[4]研究了不同鐵飽和度的LF在巴殺和UHT后的結(jié)構(gòu)和抑菌活性變化,發(fā)現(xiàn)UHT造成LF的完全變性和抑菌性喪失,而巴殺對(duì)LF的抑菌活性沒(méi)有影響。
通過(guò)文獻(xiàn)報(bào)道可知,乳鐵蛋白對(duì)熱敏感,在其生產(chǎn)及應(yīng)用過(guò)程中應(yīng)注意保護(hù)其活性,以免失去功效。但以往的研究結(jié)果存在一些分歧甚至矛盾,因此有必要研究LF在乳制品加工常用熱處理?xiàng)l件下的熱穩(wěn)定性,評(píng)價(jià)LF在實(shí)際加工過(guò)程中的結(jié)構(gòu)和生物活性變化。
乳鐵蛋白,E.coli K99,ANS試劑,DTNB; 磷酸二氫鈉、SDS、丙烯酰胺等均為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?/p>
UHT設(shè)備,水浴恒溫振蕩器,熒光分光光度計(jì),電泳儀,TV-1810紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì)。
1.2.1 熱處理
以蒸餾水溶解乳鐵蛋白,配制為40 g/L(質(zhì)量濃度)的乳鐵蛋白溶液,進(jìn)行不同強(qiáng)度的熱處理,熱處理?xiàng)l件分別為:63 ℃/30 min,72 ℃/15 s,85 ℃/15 s,85℃/10 min,95 ℃/5 min和 138 ℃/4 s,138 ℃/4 s的受熱條件以UHT設(shè)備處理,其他受熱條件在水浴鍋中處理。熱處理后將乳鐵蛋白溶液冷凍備用。
1.2.2 濃度測(cè)定
采用還原SDS-PAGE和非還原SDS-PAGE分別測(cè)定熱處理前后的乳鐵蛋白質(zhì)量濃度變化。非還原SDS-PAGE與還原SDS-PAGE相比未加β-巰基乙醇。分離膠質(zhì)量分?jǐn)?shù)15%,濃縮膠質(zhì)量分?jǐn)?shù)5%,上樣量3.3 μg,恒壓120V。
1.2.3 表面疏水性測(cè)定
ANS方法[5],以0.01 mol/L,pH 7.0的磷酸鹽緩沖溶液將乳鐵蛋白配制成0.01~0.4 mg/mL的濃度,取不同濃度的蛋白溶液3 mL,加入40 μL的ANS溶液(以濃度為0.1 mol/L pH 7.0的磷酸鹽緩沖溶液配制的濃度為8 mmol/L的ANS溶液),以熒光分光光度計(jì)在380 nm激發(fā)波長(zhǎng)、480 nm發(fā)射波長(zhǎng),狹縫均為5 nm的條件下測(cè)定熒光值,以熒光值對(duì)蛋白質(zhì)濃度做出曲線并外推至蛋白濃度為0,曲線初始部分的斜率即為蛋白質(zhì)分子的表面疏水性指數(shù)。
1.2.4 游離巰基測(cè)定
參考BEVERIDGE的方法[6],將LF蛋白樣品進(jìn)行適度稀釋,取稀釋樣品1 mL加入2.0 mL Tris-甘氨酸緩沖溶液(pH8.0)和0.02 mL的Ellman試劑(采用Tris一甘氨酸緩沖溶液(pH8.0)配制的濃度為4 g/L DTNB,25℃保溫5 min,412 nm下測(cè)定吸光度值。以不加樣品,而加Ellman試劑為空白,以不加Ellman試劑,而加樣品溶液測(cè)其混濁度,巰基量的計(jì)算:
-SH(μmol/g)=(75.53×A412×D)/C,
式中:A412=加DTNB時(shí)樣品的吸光度-不加DTNB時(shí)樣品的吸光度;D為稀釋倍數(shù);C為樣品固形物質(zhì)量分?jǐn)?shù)。
1.2.5 鐵結(jié)合能力測(cè)定
參考盧蓉蓉方法[7],配制質(zhì)量分?jǐn)?shù)為2%的LF溶液,取0.9 mL此溶液,與0.1 mL新鮮配制濃度為0.1 mol/L的NaHCO3溶液混合,并與1.0 mL濃度為0.6 mmol/L的Fe(NH4)2(SO4)2·6H2O的(含0.01 mol/L的HCl)溶液混合。在25℃下反應(yīng)10 min,于465 nm處測(cè)定吸光值A(chǔ)。因?yàn)橘|(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%鐵飽和的LF(Fe-LF)的A465為0.57,因此鐵結(jié)合能力=A/0.57×100%。
1.2.6 抑菌性測(cè)定
將E.coli K99活化兩代,第一代活化16 h,第二代活化1 h,再稀釋10倍備用。將熱處理后的40 mg/mL乳鐵蛋白溶液融化進(jìn)行測(cè)試,8.5 mL緩沖蛋白胨水中加入0.5 mL乳鐵蛋白溶液和1 mL菌液,于37℃,65 r/min水浴振蕩搖床中培養(yǎng),每2 h測(cè)定一次600 nm下的OD值,培養(yǎng)至第24 h時(shí)進(jìn)行平板計(jì)數(shù)。
熱處理前后LF的還原和非還原電泳結(jié)果如圖1所示。
由圖1可以看出,非還原電泳可以很好的反映乳鐵蛋白受熱損失的情況。63℃(30 min)的熱處理后,LF形成了少量的聚集體,這種聚集體不能進(jìn)入分離膠,但可以進(jìn)入濃縮膠。72℃(15 s)的熱處理?xiàng)l帶與未熱處理的LF幾乎相同,這種熱處理?xiàng)l件對(duì)LF造成的損害是最小的。85℃(15 s)熱處理后LF也形成了少量不能進(jìn)入分離膠的聚集體,但聚集體的數(shù)量少于63℃(30 min)的。 而85 ℃(10 min)和95 ℃(5 min)熱處理后,LF除形成了不能進(jìn)入分離膠的聚集體外,還形成了更大的不能進(jìn)入濃縮膠的聚集體,95℃(5 min)對(duì)LF造成的損失明顯高于85℃(10 min)。UHT后LF幾乎全部形成了很大的聚集體,這種聚集體全部不能進(jìn)入濃縮膠,而且形成這種聚集體的作用不能被β-巰基乙醇所破壞,因此還原電泳圖中UHT條帶與非還原電泳中相似。UHT外的其他熱處理形成的LF聚集物都能被β-巰基乙醇還原為單體蛋白。
圖1 熱處理前后LF的SDS-PAGE
熱處理前后LF的表面疏水性如圖2所示。
圖2 熱處理前后LF的表面疏水性
蛋白質(zhì)的表面疏水性對(duì)于蛋白質(zhì)的溶解性、乳化起泡能力具有十分重要的作用。由圖2可以看出,熱處理對(duì)于LF的表面疏水性影響很大,熱處理有助于LF表面疏水性的增大,說(shuō)明熱處理后LF結(jié)構(gòu)發(fā)生變化使更多原本折疊埋藏在分子內(nèi)部的疏水區(qū)域暴露到分子表面。
熱處理前后LF的游離巰基數(shù)量如圖3所示。
圖3 熱處理前后LF的游離巰基數(shù)量
天然未變性的LF分子內(nèi)有17個(gè)二硫鍵,但沒(méi)有游離的巰基。由圖3可以看出,85℃(10 min)的熱處理后LF游離巰基數(shù)量略有上升,95℃(5 min)和UHT后,游離巰基數(shù)量增加很多,其他熱處理?xiàng)l件下,LF的游離巰基數(shù)量與未加熱前近似。這表明比較強(qiáng)烈的熱處理打斷了LF分子內(nèi)的二硫鍵從而釋放出游離的巰基,因?yàn)槎蜴I對(duì)于維持蛋白質(zhì)的二級(jí)和三級(jí)結(jié)構(gòu)非常重要,因此可以判斷二硫鍵的破壞必然伴隨著LF分子結(jié)構(gòu)的巨大改變。
熱處理前后LF的鐵結(jié)合能力如圖4所示。
圖4 熱處理前后LF的鐵結(jié)合能力
由圖4可以看出,溫度85 ℃(10 min)、95 ℃(5 min)和UHT處理后,LF的鐵結(jié)合能力受到明顯損害,其他熱處理?xiàng)l件下鐵結(jié)合能力下降不大。圖4中顯示的UHT處理后鐵結(jié)合能力反而高于95℃(5 min)是因?yàn)閁HT處理后LF溶液渾濁度增加很多,因此對(duì)于鐵結(jié)合能力的檢測(cè)結(jié)果干擾較大。
熱處理前后LF對(duì)大腸桿菌K99抑制作用的OD曲線如圖5所示,平板計(jì)數(shù)得到抑菌率如圖6所示。
圖5 熱處理前后LF對(duì)大腸桿菌K99抑制作用的OD曲線
圖6 熱處理前后LF對(duì)大腸桿菌K99抑制作用的24 h抑菌率
由圖5和圖6可以看出,常規(guī)的乳制品巴殺操作對(duì)乳鐵蛋白抑菌活性的影響不大,而85℃(10 min)及更強(qiáng)的熱處理強(qiáng)度會(huì)降低乳鐵蛋白的抑菌活性。
乳鐵蛋白是熱敏性物質(zhì),乳制品加工中的各種常規(guī)熱處理都會(huì)或多或少造成乳鐵蛋白結(jié)構(gòu)或生物活性的改變,乳鐵蛋白所遭受的熱處理強(qiáng)度越高,則變性和失活的程度也越高。特別是乳鐵蛋白在遭受UHT等強(qiáng)熱處理后,其特征電泳條帶損失很大,自由巰基和表面疏水性變化也指示乳鐵蛋白結(jié)構(gòu)發(fā)生了顯著改變,同時(shí)鐵結(jié)合能力和抑菌活性這兩大乳鐵蛋白主要的生物活性也降低很多。但巴氏殺菌對(duì)乳鐵蛋白結(jié)構(gòu)及生物活性的影響較小。因此在乳鐵蛋白生產(chǎn)和應(yīng)用過(guò)程中,應(yīng)該盡量減少乳鐵蛋白受到強(qiáng)度較高的熱處理,以保證乳鐵蛋白的優(yōu)良生物活性得到較好保留。
[1]HIROAKI A,HITOSHI S,HIROSHI M,et al.Heat Stability of Bovine Lactoferrin at Acidic pH[J].J.Dairy Sci.,1991,74(1):65-71.
[2]CELIA C,CARMEN R,EDUARDO C,et al.Effect of Heat Treatment on the Antibacterial Activity of Bovine Lactoferrin Against Three Food Borne Pathogens[J].International Journal of Dairy Technology,2010,63(2):209-215.
[3]LUIS M,LOURDES S,DENIS R H,et al.Thermal Denaturation of Human Lactoferrin and Its Effect on the Ability To Bind Iron[J].J.A-gric.Food Chem,1998,46:3964-3970.
[4]MARIE A P,ULLA S,ALUGUPALU R K,et al.Thermal Behavior of Bovine Lactoferrin in Water and Its Relation to Bacterial Interaction and Antibacterial Activity[J].J.Dairy Sci.,1993,76:3711-3720.
[5]AKIO K,SHURYO N.Hydrophobicity Determined by a Fluorescence Probe Method and Its Correlation with Surface Properties of Proteins[J].Biochimica et Biophysica Acta,1980,624:13-20.
[6]BEVERIDGE T,TOMA S J,NAKAI S.Determination of SH-And SS-groups in Some Food Proteins Using Ellman’s Reagent[J].Journal of Food Science,1974,39:49-51.
[7]盧蓉蓉.乳鐵蛋白的分離、純化及其生物活性功能[D].無(wú)錫:江南大學(xué),2003.