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    豬到食蟹猴異種小腸移植后受體凝血功能變化的研究

    2014-07-07 10:06:54姚丹華李幼生王劍毛琦郭明曉張少一孔文成任樂樂黎介壽
    中華移植雜志(電子版) 2014年4期
    關(guān)鍵詞:食蟹異種存活

    姚丹華 李幼生 王劍 毛琦 郭明曉 張少一 孔文成 任樂樂 黎介壽

    超急性異種排斥反應(yīng)(hyperacute xenograft rejection,HAXR)是決定異種器官在移植后早期能否存活的關(guān)鍵因素[1]。HAXR 是由異種天然抗體介導(dǎo)的體液免疫反應(yīng),通常發(fā)生在移植器官再灌注后數(shù)分鐘到24 h 內(nèi)。異種天然抗體通過識別異種器官血管內(nèi)皮細(xì)胞表面的異種抗原,引起補(bǔ)體系統(tǒng)的鏈?zhǔn)郊せ睿瑥亩鴮?dǎo)致血管內(nèi)皮細(xì)胞損傷。內(nèi)皮細(xì)胞大量損傷時,其表達(dá)的抗凝物質(zhì)如組織因子途徑抑制物、抗凝血酶、活化蛋白C、活化蛋白S 等明顯減少;而組織因子、凝血酶等促凝物質(zhì)增加,導(dǎo)致血小板、纖維蛋白等物質(zhì)在血管內(nèi)聚集,引起血栓形成[2]。同時,由于血管內(nèi)皮細(xì)胞的破壞,血液滲出到組織間隙,引起器官間質(zhì)出血。因此,HAXR 的典型病理表現(xiàn)為血管內(nèi)皮細(xì)胞大量破壞,血管內(nèi)大量抗體、補(bǔ)體沉積,血管內(nèi)血栓形成及組織間質(zhì)廣泛出血[2-3]。實時檢測器官移植受體凝血功能的變化,可以從一定程度上了解HAXR 的發(fā)生情況。我們通過建立豬到食蟹猴異位節(jié)段小腸移植模型,采用常規(guī)凝血功能檢測方法和血栓彈力圖(thrombelastogram,TEG)檢測受體在移植后不同時間點(diǎn)的凝血功能,研究HAXR過程中受體凝血功能變化,現(xiàn)報道如下。

    1 材料與方法

    1.1 實驗動物和主要試劑

    供體為3 只雄性白色雜種豬,5 ~6 周齡,體質(zhì)量15 ~18 kg(購自南京軍區(qū)南京總醫(yī)院比較醫(yī)學(xué)科)。術(shù)前12 h 禁食,自由飲水。受體為5 只食蟹猴,雌雄不限,3 ~4 周齡,體質(zhì)量為2.8 ~3.7 kg(購自漢南新正源生物科技有限公司)。術(shù)前8 h 禁食,自由飲水。

    主要試劑為活化部分凝血活酶時間(activated partial thromboplastin time,APTT)檢測試劑盒以及凝血酶原時間(prothrombin time,PT)檢測試劑盒(均為美國Heamoscope 公司)。

    1.2 手術(shù)方式

    常規(guī)消毒、麻醉后,獲取供體末端回腸約50 cm的小腸,保留支配相關(guān)腸管的腸系膜前動、靜脈分支,分別與受體腎下腹主動脈、腎下下腔靜脈行端側(cè)吻合。保留移植小腸兩端腸管呈結(jié)扎狀態(tài),不與受體腸管吻合。

    1.3 凝血功能檢測

    分別采集受體移植前以及移植小腸再灌注后15,30,60,120 min 各時間點(diǎn)的血液標(biāo)本。經(jīng)頸外靜脈取血約2.5 mL,裝入枸櫞酸鈉抗凝采血管,立即行常規(guī)凝血功能檢測和TEG 檢測。

    1.4 移植小腸存活情況的判斷

    由兩位經(jīng)驗豐富的臨床醫(yī)師連續(xù)觀察移植小腸的存活情況,計算受體移植小腸的存活時間。同時發(fā)現(xiàn)腸黏膜散在出血點(diǎn)、無肉眼可見正常黏膜、腸壁及腸系膜血管搏動消失時,可診斷為移植小腸丟失。當(dāng)判定為移植小腸丟失時,靜脈注射氯化鉀6 g,處死受體。本研究符合動物實驗相關(guān)倫理要求。

    2 結(jié) 果

    2.1 受體凝血功能的變化

    本研究共行豬到食蟹猴異種小腸移植術(shù)5 例。血管吻合成功率為100%,移植小腸中位存活時間為165 min (55 ~245 min)。受體移植前以及移植小腸再灌注后15,30,60,120 min 凝血功能監(jiān)測顯示,受體纖維蛋白原(fibrinogen,F(xiàn)ib)水平、血小板(platelet,Plt)計數(shù)以及抗凝血酶Ⅲ(antithrombinⅢ,AT Ⅲ)活性在移植小腸再灌注后,呈逐漸下降趨勢,詳見表1。Fib 術(shù)前初始值為(1.81 ±0.24)g/L,再灌注后120 min 降至最低,為(0.76±0.17)g/L;Plt術(shù)前初始值為(340 ±81)×109,再灌注后120 min降至最低,為(155 ±7)×109;AT Ⅲ術(shù)前初始值為(100 ±19)%,再灌注后30 min 降至最低,為(54 ±16)%。受體PT、APTT、D-二聚體以及國際標(biāo)準(zhǔn)化比值(international normalized ratio,INR)在移植小腸再灌注后,呈現(xiàn)逐漸升高的趨勢。PT 術(shù)前初始值為(11 ±2)s,再灌注后30 min 升至最高,為(20 ±5)s;APPT 術(shù)前初始值為(21 ±3)s,再灌注后30 min 升至最高(88 ±29)s;D-二聚體術(shù)前初始值為(0.09 ±0.07)mg/L,再灌注后60 min 升至最高,為(0.70 ±0.49)mg/L;INR 初始值為1.0 ± 0. 2,再灌注后30 min 升至最高,為1.7 ±0.3。

    受體TEG 指標(biāo)中,R 值、K 值及LY30 呈逐漸升高的趨勢,最大振幅(maximun amplitude,MA)數(shù)值呈現(xiàn)逐漸下降的趨勢(表2)。R 值術(shù)前初始值為(6.9 ±1.3)min,再灌注后120 min 升至最高,為(16.8 ±2.7)min;K 值術(shù)前初始值為(2 ±1)min,再灌注后120 min 升至最高,為(15 ±5)min;LY30術(shù)前初始值為(4±2)%,再灌注后60 min 升至最高,為(31 ±7)%;MA 數(shù)值術(shù)前初始為(63 ±5)mm,再灌注后60 min 降至最低,為(25 ±16)mm。TEG 曲線提示,移植前受體凝血功能正常,移植小腸再灌注15,30 min 后,受體凝血功能呈現(xiàn)高凝狀態(tài),合并纖溶亢進(jìn);移植小腸再灌注后60,120 min,受體凝血功能表現(xiàn)為消耗性低凝狀態(tài)(圖1)。

    表2 受體食蟹猴移植前及移植后各時間點(diǎn)血栓彈力圖指標(biāo)

    表2 受體食蟹猴移植前及移植后各時間點(diǎn)血栓彈力圖指標(biāo)

    注:MA.最大振幅

    例數(shù) R 值(min)K 值(min)LY30(%)MA(%)63 ± 5再灌注后15 min 5 9.5 ±3.2 2 ±1 7 ±3 54 ± 8再灌注后30 min 5 13.0 ±2.2 8 ±2 13 ±5 38 ± 9再灌注后60 min 4 14.3 ±2.1 13 ±3 31 ±7 25 ±16再灌注后120 min 3 16.8 ±2.7 15 ±5 30 ±6移植前 5 6.9 ±1.3 2 ±1 4 ±2 28 ±16

    圖1 1 例受體食蟹猴血栓彈力圖曲線的變化趨勢

    2.2 移植小腸的病理表現(xiàn)

    本研究中,所有受體再灌注后15 min,均發(fā)現(xiàn)典型的HAXR 病理表現(xiàn)。主要表現(xiàn)為移植小腸黏膜充血、水腫、散在出血點(diǎn)以及間質(zhì)出血表現(xiàn)(圖2)。供體正常小腸黏膜為淡粉紅色,無出血點(diǎn),黏膜皺襞清晰可見(圖3a)。移植小腸再灌注后15 min,腸黏膜呈深粉紅色,伴輕微水腫(圖3b);再灌注后30 min,腸黏膜水腫較前加重,并伴有瘀血及點(diǎn)狀出血(圖3c);再灌注后120 min,腸黏膜水腫嚴(yán)重,出血連成片,伴腸腔內(nèi)滲血(圖3d)。再灌注后120 min,移植小腸大體觀可見水腫,漿膜層點(diǎn)狀出血,腸系膜大量出血點(diǎn)伴水腫(圖4)。

    表1 受體食蟹猴移植前及移植后各時間點(diǎn)常規(guī)凝血指標(biāo)(ˉx±s)

    圖2 受體食蟹猴移植小腸術(shù)后發(fā)生超急性排斥反應(yīng)的病理表現(xiàn)(HE ×100)

    圖3 受體食蟹猴移植前及移植后各時間點(diǎn)移植小腸腸黏膜病理表現(xiàn)

    圖4 受體食蟹猴移植腸再灌注后120 min 大體觀

    3 討 論

    異種器官移植有望成為解決目前供器官嚴(yán)重短缺困難的有效手段之一[4]。但是,由于異種器官細(xì)胞表面存在天然抗原,可導(dǎo)致異種器官移植后早期即出現(xiàn)以內(nèi)皮細(xì)胞破壞、血管內(nèi)血栓、間質(zhì)出血為特征的HAXR[5]。目前,尚沒有較好的血清學(xué)指標(biāo)來反映異種器官移植術(shù)后排斥反應(yīng)的發(fā)生情況,大多只能根據(jù)移植器官組織病理改變來判斷排斥反應(yīng)的發(fā)生情況。但是,對于某些特殊器官,難以通過反復(fù)活檢獲得足夠的組織標(biāo)本,加大了診斷排斥反應(yīng)的難度。雖然在異種小腸移植動物實驗中,我們可以反復(fù)多次獲取小腸組織標(biāo)本,但是從病理學(xué)角度判斷移植小腸的存活情況存在一定的滯后性,無法實時監(jiān)測移植小腸排斥反應(yīng)發(fā)生情況。由于HAXR引起的血管內(nèi)血栓和移植器官間質(zhì)出血是最終導(dǎo)致異種移植物丟失的原因,故檢測或調(diào)節(jié)凝血指標(biāo)有助于判斷和干預(yù)HAXR。Mohiuddin 等[6]將轉(zhuǎn)基因豬(GTKO/hCD46)的心臟異位移植于狒狒體內(nèi),移植心臟存活時間達(dá)146 d;而將GTKO/hCD46 轉(zhuǎn)基因豬的基礎(chǔ)上再表達(dá)人血栓調(diào)節(jié)蛋白的3 系轉(zhuǎn)基因豬的心臟移植于狒狒體內(nèi),移植心臟的存活時間可超過1 年[7]。事實證明,凝血功能的調(diào)節(jié)可以有效減少HAXR 的發(fā)生,并延長移植物的存活時間。研究異種移植受體在移植后凝血功能的變化,可能有助于指導(dǎo)抗凝治療,延長移植物存活期[8]。

    本研究采用常規(guī)方法檢測食蟹猴受體各項凝血指標(biāo),同時還采用TEG 評估凝血酶、血小板及纖維蛋白功能以及纖維蛋白溶解情況,觀察受體不同時間點(diǎn)全方面的凝血狀態(tài)。與傳統(tǒng)凝血項目檢測相比,TEG 將凝血動力學(xué)過程描記為曲線,從而清楚地反映全血凝血過程,包括從凝血開始至血凝塊降解的全過程,涵蓋凝血級聯(lián)反應(yīng)與血小板相互作用的綜合結(jié)果,反映參與凝血過程所有物質(zhì)的綜合狀態(tài)[9-10]。TEG 中的R 值反應(yīng)凝血因子功能,K 值反應(yīng)血凝塊形成速率,MA 反映纖維蛋白和血小板血凝塊最大強(qiáng)度,LY30 值反映纖維蛋白降解速率。本研究中,移植小腸再灌注后15 min,TEG 曲線顯示R 值及K 值減小,LY30 增高,提示受體凝血因子大量活化,纖維蛋白和血小板開始聚集,同時出現(xiàn)繼發(fā)性纖溶亢進(jìn),受體此時處于彌散性血管內(nèi)凝血的高凝期。移植小腸再灌注后60,120 min,TEG 曲線提示受體處于消耗性低凝狀態(tài)。Spiezia 等[8]使用TEG 技術(shù)監(jiān)測豬到食蟹猴異種腎移植后受體的凝血功能,通過及時發(fā)現(xiàn)受體消耗性凝血功能障礙,及時對癥治療,成功延長了受體的生存時間??梢奣EG 可以實時、全面評估凝血狀態(tài),在指導(dǎo)異種器官移植抗HAXR 治療方面,前景廣闊,意義重大。

    總之,本研究發(fā)現(xiàn)受體凝血功能隨HAXR 的發(fā)生而出現(xiàn)逐漸惡化的趨勢,因此,我們認(rèn)為凝血功能可以在一定程度上反映HAXR 的發(fā)生情況。采用常規(guī)凝血指標(biāo)結(jié)合TEG 來監(jiān)測凝血功能,從而進(jìn)行抗凝、止血干預(yù),可能會有利于延長異種移植小腸存活時間。

    1 Vaughan HA,Loveland BE,Sandrin MS. Gal alpha(1,3)Gal is the major xenoepitope expressed on pig endothelial cells recognized by naturally occurring cytotoxic human antibodies[J]. Transplantation,1994,58(8):879-882.

    2 Pierson RN,Dorling A,Ayares D,et al. Current status of xenotransplantation and prospects for clinical application[J].Xenotransplantation,2009,16(5):263-280.

    3 Yazaki S,Iwamoto M,Onishi A,et al. Production of cloned pigs expressing human thrombomodulin in endothelial cells[J].Xenotransplantation,2012,19(2):82-91.

    4 Yamada K,Scalea J. Current progress in xenogeneic tolerance[J].Curr Opin Organ Transplant,2012,17(2):168-173.

    5 Dai Y,Vaught TD,Boone J,et al. Targeted disruption of the alpha 1,3-galactosyltransferase gene in cloned pigs[J]. Nat Biotechno,2002,20(3):251-251.

    6 Mohiuddin MM,Singh AK,Corcoran PC,et al. Role of anti-CD40 antibody-mediated costimulation blockade on non-Gal antibody production and heterotopic cardiac xenograft survival in a GTKO.hCD46Tg pig-to-baboon model[J]. Xenotransplantation,2013,21(1):35-45.

    7 Mohiuddin MM, Singh AK, Corcoran PC, et al. One-year heterotopic cardiac xenograft survival in a pig to baboon model[J].Am J Transplantation,2014,14(2):488-499.

    8 Spiezia L,Boldrin M,Radu C,et al. Thromboelastographic evaluation of coagulative profiles in pig-to-monkey kidney xenotransplantation[J]. Xenotransplantation,2013,20(2):89-99.

    9 Gonzalez E,Pieracci FM,Moore EE,et al. Coagulation abnormalities in the trauma patient:the role of point-of-care thromboelastography[J]. Semi Thromb Hemost,2010,36(7):723-737.

    10 Kashuk JL,Moore EE,Sawyer M,et al. Postinjury coagulopathy management:goal directed resuscitation via POC thrombelastography[J]. Ann Surg,2010,251(4):604-614.

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