楊 偉,蘇顯明,王 穎,王 瑛,馬 奕
(西安交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院:1. 老年心血管內(nèi)科;2. 腫瘤內(nèi)科;陜西西安 710061)
α-klotho是學(xué)者在研究鹽敏感性高血壓小鼠過(guò)程中,為觀察單基因插入突變所致表型變化而發(fā)現(xiàn)的[1]。自從發(fā)現(xiàn)該基因以來(lái),學(xué)者們做了大量關(guān)于其功能的研究。現(xiàn)在已知其表達(dá)產(chǎn)物有兩種:一種是膜型α-klotho蛋白,為成纖維生長(zhǎng)因子的共受體;另一種是分泌型蛋白,其作為內(nèi)分泌激素,不依賴成纖維生長(zhǎng)因子發(fā)揮作用[2]。α-klotho功能取決于上述兩種蛋白,現(xiàn)在已知其抗衰老效應(yīng)主要來(lái)自膜型蛋白,與參與生物體鈣磷代謝調(diào)節(jié)有關(guān),而分泌型蛋白的功能有待進(jìn)一步研究。
2004年TAKESHITA等在束縛應(yīng)激條件下研究α-klotho敲除鼠,發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)過(guò)程中α-klotho敲除鼠較野生型鼠表現(xiàn)出高死亡率(20/30)的特點(diǎn),死亡的原因?yàn)楦]房阻滯及竇性停博,非心梗、腦出血等[3]。然而,α-klotho敲除鼠束縛應(yīng)激過(guò)程中死亡原因的機(jī)制仍有待闡明?;谏鲜鲅芯浚覀兲岢鲞@樣一種假設(shè):束縛應(yīng)激改變了野生型小鼠分泌型或膜型α-klotho蛋白的含量,正是這種α-klotho蛋白含量的變化致使下游信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路能緩沖應(yīng)激所致內(nèi)環(huán)境的有害刺激。而α-klotho敲除鼠缺乏這種緩沖有害刺激的能力,最終死于病態(tài)竇房結(jié)綜合征。
因此,這個(gè)假設(shè)能否成立的前體條件在于束縛應(yīng)激能否改變膜型或分泌型α-klotho蛋白的含量或α-klotho mRNA的表達(dá)。本文就束縛應(yīng)激對(duì)α-klotho的影響進(jìn)行了研究。
1.1實(shí)驗(yàn)材料C57BL6/J小鼠(由西安交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,SYXK(陜)2007-003);肝素鈉(海通藥業(yè)有限公司,成都,中國(guó)),離心機(jī)(Eppendorf 5415R,紐約,美國(guó));RNAiso Plus(TaKaRa公司,大連,中國(guó)),PrimeScriptTMRT reagent kit with gDNA Eraser(TaKaRa公司,大連,中國(guó)),iCycler iQ5TMReal Time PCR detection system(Bio-Rad Laboratories,加利福利亞,美國(guó)),SYBRPremixExTaqTMⅡ(Tli RNaseH Plus) (TaKaRa公司,大連,中國(guó)),Enzyme-linked Immunosorbent Assay Kit(USCN公司,武漢,中國(guó)),分光光度計(jì)(FLUOstar OPTIMA,奧芬堡,德國(guó)),SPSS for Windows Release 19.0(SPSS,芝加哥,美國(guó))。
1.2實(shí)驗(yàn)動(dòng)物分組及飼養(yǎng)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物為5周齡雄性C57BL6/J小鼠(約17 g),共48只。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物隨機(jī)分為6組,每組8只共同飼養(yǎng)在一個(gè)通氣良好的飼養(yǎng)籠內(nèi),飼養(yǎng)室溫度保持在(16±1)℃,相對(duì)濕度在(55±5)%,行春季自然光照節(jié)律。在進(jìn)行實(shí)驗(yàn)(6周,約20 g)前所有動(dòng)物先適應(yīng)預(yù)實(shí)驗(yàn)環(huán)境1周,隨意給予食物和水。
1.3應(yīng)激實(shí)驗(yàn)的實(shí)施方案束縛應(yīng)激組小鼠均置于水平放置的50 mL錐形離心管中,離心管置于鏤空的飼養(yǎng)架上,離心管管周開密集通風(fēng)口(通風(fēng)口不宜過(guò)大,以防小鼠試驗(yàn)中破壞管壁逃跑)保持良好通氣,限制其身體自由移動(dòng),試驗(yàn)中遠(yuǎn)離食物及水,避免實(shí)驗(yàn)過(guò)程中人為及機(jī)械的各種噪音,保持周圍環(huán)境溫度及濕度相對(duì)恒定等,以控制實(shí)驗(yàn)干預(yù)因素以外的應(yīng)激因素。對(duì)照組小鼠實(shí)驗(yàn)過(guò)程中脫離原飼養(yǎng)環(huán)境,置于無(wú)墊料、食物及水源的空飼養(yǎng)盒內(nèi),其他條件均與束縛應(yīng)激組保持一致。
應(yīng)激實(shí)驗(yàn)進(jìn)行階段,所有動(dòng)物遠(yuǎn)離水和食物。20 h 組實(shí)驗(yàn)開始于第1天中午12點(diǎn)結(jié)束于次日晨8點(diǎn);10 h組實(shí)驗(yàn)開始于晨8點(diǎn)至下午6點(diǎn);1 h組實(shí)驗(yàn)開始于中午12點(diǎn)至下午1點(diǎn)。
1.4標(biāo)本采集束縛應(yīng)激實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,在2 min內(nèi)立即從眶上靜脈途徑采血,血液存儲(chǔ)于行肝素抗凝的EP管中,置于EP管中的血液于Eppendorf 5415R離心機(jī)中離心,離心參數(shù)為4 ℃,1 500×g,15 min。血標(biāo)本采集后,立即麻醉處死小鼠后取出雙側(cè)腎臟,生理鹽水沖洗后,于液氮中速凍,后儲(chǔ)存于-80 ℃冰箱備用。
1.5腎臟α-klothomRNA表達(dá)變化的檢測(cè)用RNAiso Plus提取腎臟總RNA后,取0.8 μg總RNA利用PrimeScriptTMRT reagent kit with gDNA Eraser進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,反轉(zhuǎn)錄所得cDNA片段包含位于第3個(gè)外顯子的選擇性剪切位點(diǎn)。為確定α-klotho mRNA表達(dá)水平,實(shí)驗(yàn)中使用了實(shí)時(shí)定量PCR,反應(yīng)體系為25 μL(包含2 μL的模板cDNA,1 μL各條引物,12.5 μL的SYBR Premix ExTaqTMⅡ),使用Gapdh作為內(nèi)參基因,反應(yīng)條件為:95 ℃ 30 s;95 ℃ 5 s 40循環(huán),60 ℃ 30 s。引物序列如表1所示。
表1RT-PCR引物序列及擴(kuò)增產(chǎn)物片段大小
Tab.1 Primers used for quantitative real-time PCR
引物名稱序列(5'→3')擴(kuò)增產(chǎn)物片段(bp)α-klotho primer 1α-klotho primer 2CGCAAAGTGCTCAACTGGCTAAAAGGTTGATGTCGTCCAACACGTA150Gapdh primer 1Gapdh primer 2TGTGTCCGTCGTGGATCTGATTGCTGTTGAAGTCGCAGGAG171
PCR產(chǎn)物擴(kuò)增的特異性經(jīng)溶解曲線及瓊脂糖凝膠電泳確定。使用2-ΔΔCT方法計(jì)算mRNA表達(dá)水平。
1.6血漿α-klotho蛋白及皮質(zhì)酮濃度的測(cè)定血漿α-klotho蛋白和皮質(zhì)酮水平均采用酶聯(lián)免疫吸附試劑盒測(cè)定,在(450±10)nm波長(zhǎng)下于FLUOstar OPTIMA分光光度計(jì)中測(cè)定樣本吸光度,據(jù)標(biāo)準(zhǔn)品吸光度及濃度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,后據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出各樣本濃度。
2.1動(dòng)物模型符合應(yīng)激實(shí)驗(yàn)的要求本研究采用經(jīng)典的束縛應(yīng)激實(shí)驗(yàn)?zāi)P?,?lái)研究應(yīng)激對(duì)α-klotho蛋白及基因表達(dá)的影響。為評(píng)估實(shí)驗(yàn)?zāi)P偷挠行?,消除晝夜?jié)律對(duì)血皮質(zhì)酮濃度的影響,實(shí)驗(yàn)中引入監(jiān)控應(yīng)激強(qiáng)度檢測(cè)指標(biāo)-皮質(zhì)酮及設(shè)立對(duì)照組,實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組均測(cè)定皮質(zhì)酮水平。既往研究資料表明,如果小鼠皮質(zhì)酮水平較無(wú)應(yīng)激狀態(tài)高2倍以上,應(yīng)激強(qiáng)度即符合要求,達(dá)到應(yīng)激處理的目的。雖然在束縛應(yīng)激組與對(duì)照組中,血漿皮質(zhì)酮濃度與現(xiàn)有研究數(shù)據(jù)有差距,但各束縛應(yīng)激組較其對(duì)照組倍數(shù)變化關(guān)系有意義,1、10、20 h束縛應(yīng)激組較各自對(duì)照組血漿皮質(zhì)酮濃度變化倍數(shù)依次為2.03、2.52和2.34,說(shuō)明應(yīng)激強(qiáng)度符合要求,實(shí)驗(yàn)?zāi)P徒⒊晒?。束縛應(yīng)激組與對(duì)照組皮質(zhì)酮水平如圖1所示。
圖1不同處理時(shí)間組組內(nèi)皮質(zhì)酮質(zhì)量濃度變化的比較
Fig.1 Comparison of corticosterone concentration in different treatment time subgroups
與各組內(nèi)對(duì)照組比較,*P<0.05。
2.2束縛應(yīng)激增高血漿α-klotho蛋白質(zhì)量濃度基于上述小鼠束縛應(yīng)激模型的評(píng)估結(jié)果,后續(xù)實(shí)驗(yàn)均采用上述應(yīng)激實(shí)驗(yàn)方案。目前,關(guān)于血漿α-klotho質(zhì)量濃度的正常范圍尚無(wú)統(tǒng)一研究結(jié)果,且不同研究得出不盡相同的結(jié)論[4]。本實(shí)驗(yàn)所測(cè)得血漿α-klotho質(zhì)量濃度與另一研究的結(jié)果(10 nmol/L到50 nmol/L)[5]部分一致。1、10 h和20 h對(duì)照亞組血α-klotho蛋白濃度分別為(757.71±333.93)、(687.38±342.79)、(912.90±337.8)pg/mL;束縛應(yīng)激亞組分別為(726.40±342.79)、(1 261.54±442.71)、(1 696.18 ± 404.11)pg/mL。對(duì)照亞組各組之間血α-klotho蛋白質(zhì)量濃度無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,但20 h組較其他兩組稍高。1 h束縛應(yīng)激亞組與對(duì)照亞組間無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異,而10 h與20 h束縛應(yīng)激亞組血α-klotho蛋白與其各自對(duì)照亞組間有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)。不同處理時(shí)間組血漿α-klotho蛋白質(zhì)量濃度的變化情況如圖2所示。
圖2不同處理時(shí)間組血漿α-klotho蛋白質(zhì)量濃度的變化
Fig.2 Comparison of serum α-klotho protein concentration in different treatment time groups
與組內(nèi)對(duì)照組比較,*P<0.05;與1 h束縛應(yīng)激組比較,#P<0.05。
2.3束縛應(yīng)激使腎臟α-klothomRNA的表達(dá)減低PCR的擴(kuò)增曲線、溶解曲線及擴(kuò)增產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果如圖3、圖4所示。
圖3α-klotho基因(A)和Gapdh基因(C)的擴(kuò)增曲線及α-klotho基因(B)和Gapdh基因(D)的溶解曲線
Fig.3 Fluorescent curves of α-klotho (A) and Gapdh (C), dissociation curves of α-klotho (B) and Gapdh (D)
我們觀察到腎臟α-klotho mRNA的表達(dá)在束縛應(yīng)激進(jìn)行1 h的時(shí)候已經(jīng)輕微降低了,但這種改變尚無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。顯著降低發(fā)生在10 h與20 h束縛應(yīng)激組,腎臟α-klotho mRNA表達(dá)較空白對(duì)照組分別減低2.02倍和2.46倍(表2)。
圖4小鼠腎臟α-klotho和Gapdh的RT-PCR結(jié)果
Fig.4 RT-PCR products of α-klotho and Gapdh in mice renal tissues
1~4:Gapdh的RT-PCR結(jié)果(片段長(zhǎng)度為171 bp);5~8:α-klotho RT-PCR結(jié)果(片段長(zhǎng)度為150 bp);M:Marker。
表2不同處理時(shí)間組腎臟α-klothomRNA表達(dá)變化的比較
Tab.2 Comparison of the expression of renal α-klotho mRNA in different treatment time groups
組 別ΔCT1(kla-Gapdh)ΔCT2(klb-Gapdh)ΔΔCT(ΔCT1-ΔCT2)束縛應(yīng)激組較其對(duì)照組表達(dá)減低倍數(shù)1h組4.91±0.384.74±0.500.171.1310h組6.58±0.205.77±0.301.012.02#20h組6.59±0.595.29±0.361.302.46#
Gapdh:內(nèi)參CT值;kla:束縛應(yīng)激組CT值;klb:對(duì)照組CT值;#P<0.05,與1 h束縛應(yīng)激組比較。
研究表明,應(yīng)激主要通過(guò)下丘腦-垂體-腎上腺軸,交感-腎上腺髓質(zhì)軸及阿片系統(tǒng)發(fā)揮作用。TAKESHITA等[3]研究表明,在束縛應(yīng)激條件下野生型小鼠血漿去甲腎上腺素增高,而α-klotho敲除鼠血漿去甲腎上腺素水平卻輕度降低。許多學(xué)者都曾研究過(guò)皮質(zhì)酮這一鼠類主要的應(yīng)激激素,結(jié)果表明應(yīng)激使血漿皮質(zhì)酮濃度顯著增高[6],同時(shí)皮質(zhì)酮能誘導(dǎo)胰島素抵抗[7]。而諸多研究表明對(duì)胰島素/胰島素樣生長(zhǎng)因子1信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的適當(dāng)抑制能延長(zhǎng)動(dòng)物壽命,α-klotho正是通過(guò)這一方式發(fā)揮抗衰老作用的[8]。在這種情形下,因α-klotho 與皮質(zhì)酮存在誘導(dǎo)胰島素抵抗這一共同點(diǎn),故α-klotho與皮質(zhì)酮或其他應(yīng)激激素之間在抗衰老方面是否存在關(guān)系,需要更多更深入的研究來(lái)闡明。
本研究所用束縛應(yīng)激模型為急性束縛應(yīng)激模型,束縛應(yīng)激過(guò)程中出現(xiàn)血漿α-klotho蛋白濃度增高的現(xiàn)象,故支持α-klotho蛋白作為一種急性期蛋白,但其具體功能尚待進(jìn)一步研究闡明。這一現(xiàn)象表面上看來(lái)與腎臟組織α-klotho mRNA表達(dá)減低相矛盾,推測(cè)其原因?yàn)橐韵?個(gè)方面:①分泌型α-klotho有兩種生成方式:α-klotho mRNA選擇性拼接后表達(dá)和膜型α-klotho胞外域直接從膜上脫落形成[9]。如果是第1種生成方式,那么血漿中α-klotho濃度的升高,必然伴隨α-klotho mRNA表達(dá)的升高,但事實(shí)卻是表達(dá)減低,故推測(cè)出現(xiàn)血α-klotho蛋白濃度升高,而主要表達(dá)α-klotho的腎臟組織α-klotho mRNA減低,這一看似矛盾現(xiàn)象的原因是α-klotho存在第2種生成方式,這也與現(xiàn)有研究結(jié)果一致。分泌型α-klotho的產(chǎn)生主要來(lái)自膜型α-klotho蛋白胞外域的脫落,故推測(cè)束縛應(yīng)激主要是通過(guò)增加膜型α-klotho蛋白的脫落從而提高血漿α-klotho蛋白濃度,發(fā)揮急性期蛋白的相關(guān)作用。解釋了這一看似矛盾的現(xiàn)象后,仍有兩個(gè)問(wèn)題有待解決:束縛應(yīng)激是如何促使膜型α-klotho胞外域脫落及下調(diào)腎臟組織α-klotho mRNA表達(dá)的,前面我們探討了應(yīng)激現(xiàn)象的作用軸,故我們推測(cè)作為嚙齒類動(dòng)物的小鼠,皮質(zhì)酮為其主要的應(yīng)激激素,束縛應(yīng)激有可能通過(guò)改變血漿皮質(zhì)酮及其他應(yīng)激激素濃度,從而出現(xiàn)相應(yīng)改變,這仍待進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證。②有學(xué)者研究發(fā)現(xiàn)FGF-23能直接或間接增加血α-klotho蛋白濃度及減低α-klotho mRNA的表達(dá)[10],但束縛應(yīng)激能否改變FGF-23的濃度及機(jī)制仍有待闡明。③研究表明持續(xù)的循環(huán)壓力如高血壓,糖尿病和由氧化應(yīng)激、代謝紊亂及脂多糖誘發(fā)的急性炎癥都能下調(diào)α-klotho的表達(dá)[11]。
在本研究中,我們觀察到小鼠在束縛應(yīng)激過(guò)程中表現(xiàn)出大量出汗及因恐懼小便失禁等現(xiàn)象。我們認(rèn)為即使因出汗導(dǎo)致低血容量的發(fā)生,機(jī)體應(yīng)激所致血流再分配,也與腎臟α-klotho mRNA表達(dá)減低沒(méi)有關(guān)系,因現(xiàn)有研究表明通過(guò)放血所致低血容量未下調(diào)α-klotho mRNA的表達(dá),但有可能與血流重新分配,致腎臟相對(duì)缺血缺氧,從而導(dǎo)致局部組織代謝紊亂,加重氧化應(yīng)激有關(guān)系,因現(xiàn)有證據(jù)表明氧化應(yīng)激可下調(diào)α-klotho mRNA的表達(dá)[12]。
綜上所述,束縛應(yīng)激可能是通過(guò)改變皮質(zhì)酮、腎上腺素等濃度,再通過(guò)某一作用方式作用于腎臟膜型α-klotho蛋白,導(dǎo)致膜型α-klotho胞外域脫落,從而暫時(shí)升高血漿α-klotho蛋白濃度,而血α-klotho蛋白濃度的改變又進(jìn)一步影響竇房結(jié)功能。
參考文獻(xiàn):
[1] KUROO M, MATSUMURA Y, AIZAWA H, et al. Mutation of the mouse klotho gene leads to a syndrome resembling ageing[J]. Nature, 1997, 390(6655):45-51.
[2] URAKAWA I, YAMAZAKI Y, SHIMADA T, et al. Klotho converts canonical FGF receptor into a specific receptor for FGF23[J]. Nature, 2006, 444(7120):770-774.
[3] TAKESHITA K, FUJIMORI T, KUROTAKI Y, et al. Sinoatrial node dysfunction and early unexpected death of mice with a defect of klotho gene expression[J]. Circulation, 2004, 109(19):1776-1782.
[4] DRUEKE TB, MASSY ZA. Circulating Klotho levels: clinical relevance and relationship with tissue Klotho expression[J]. Kid Int, 2013, 83(1):13-15.
[5] BLOCH L, SINESHCHEKOVA O, REICHENBACH D, et al. Klotho is a substrate for alpha-, beta- and gamma-secretase[J]. FEBS Lett, 2009, 583(19):3221-3224.
[6] MALISCH JL, SALTZMAN W, GOMES FR, et al. Baseline and stress-induced plasma corticosterone concentrations of mice selectively bred for high voluntary wheel running[J]. Physiol Biochem Zool, 2007, 80 (1):146-156.
[7] BISBIS S, TAOUIS M, DEROUET M, et al. Corticosterone-induced insulin resistance is not associated with alterations of insulin receptor number and kinase activity in chicken kidney[J]. Gen Comp Endocrinol, 1994, 96 (3):370-377.
[8] MANYA H, AKASAKA-MANYA K, ENDO T. Klotho protein deficiency and aging[J]. Geriatr Gerontol Int, 2010,10 (Suppl 1):S80-87.
[9] IMURA A, IWANO A, TOHYAMA O, et al. Secreted Klotho protein in sera and CSF: implication for post-translational cleavage in release of Klotho protein from cell membrane[J]. FEBS Lett, 2004, 565(1-3):143-147.
[10] MARSELL R, KRAJISNIK T, GORANSSON H, et al. Gene expression analysis of kidneys from transgenic mice expressing fibroblast growth factor-23[J]. Nephrol Dial Transplant, 2008, 23(3):827-833.
[11] OHYAMA Y, KURABAYASHI M, MASUDA H, et al. Molecular cloning of rat klotho cDNA: markedly decreased expression of klotho by acute inflammatory stress[J]. Biochem Biophys Res Commun, 1998, 251(3):920-925.
[12] MITOBE M, YOSHIDA T, SUGIURA H, et al. Oxidative stress decreases klotho expression in a mouse kidney cell line[J]. Nephron Exp Nephrol, 2005, 101(2):e67-74.
西安交通大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2014年4期