張永紅, 唐芬芬, 邵榆嵐, 鐘 健, 白興榮
云南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院蠶桑蜜蜂研究所,云南蒙自661101
豬生長(zhǎng)激素(porcine growth hormone/porcine somatotropin,pGH/pST)是豬腦垂體前葉嗜酸性細(xì)胞分泌的一種單一肽鏈蛋白質(zhì)激素,在調(diào)節(jié)豬的生長(zhǎng)發(fā)育方面起著重要作用,主要表現(xiàn)在降低脂肪含量、促進(jìn)蛋白質(zhì)合成和增加動(dòng)物泌乳量,是畜牧業(yè)生產(chǎn)中極其重要的激素之一[1]。隨著人類日益增長(zhǎng)的消費(fèi)需求,利用基因工程技術(shù)表達(dá)豬生長(zhǎng)激素應(yīng)用于養(yǎng)豬業(yè),可提高豬生長(zhǎng)速度、緩解養(yǎng)殖產(chǎn)業(yè)的壓力、滿足消費(fèi)市場(chǎng)對(duì)豬肉的需求,產(chǎn)生重大的經(jīng)濟(jì)效益。本文主要綜述了豬生長(zhǎng)激素的基因結(jié)構(gòu)、生理功能及其重組蛋白表達(dá)研究的進(jìn)展,并展望了重組豬生長(zhǎng)激素的應(yīng)用和發(fā)展前景。
豬生長(zhǎng)激素是一類多肽類激素,由191個(gè)氨基酸組成,分子量22 kDa,等電點(diǎn)為6。豬基因組中GH基因?yàn)閱慰截悾覠o(wú)其他相似序列,其基因全長(zhǎng)為2 231 bp,由5個(gè)外顯子和4個(gè)內(nèi)含子構(gòu)成,其外顯子長(zhǎng)度分別是 10 bp、161 bp、117 bp、162 bp和 198 bp,內(nèi)含子長(zhǎng)度分別為 242 bp、210 bp、197 bp 和 278 bp;編碼成熟肽的片段大小為570 bp。
GH作為動(dòng)物生長(zhǎng)發(fā)育關(guān)鍵的激素,其基因序列在各物種中高度保守[2],pGH與人(hGH)、牛(bGH)、鼠(mGH)生長(zhǎng)激素的核苷酸序列具有高度同源性。pGH同bGH基因的5'端、3'端UTR及polyA+下游序列高度保守,據(jù)此說(shuō)明它們可能以某種相同的方式來(lái)調(diào)節(jié)GH的合成,可推測(cè)GH作為代謝關(guān)鍵激素在物種進(jìn)化過(guò)程中基因序列仍然高度保守。pGH蛋白的三維結(jié)構(gòu)已經(jīng)獲得解析(圖1A)[4],X射線晶體結(jié)構(gòu)分析表明,與bGH(圖1B)極為相似的是都含有4個(gè)α螺旋[3]。
圖1 GH 的蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)[3,4]Fig.1 Structure of growth hormone[3,4].
生長(zhǎng)激素是脊椎動(dòng)物腦垂體分泌的多肽類激素,是動(dòng)物調(diào)節(jié)生長(zhǎng)和組織發(fā)育必不可少的激素,缺乏該激素機(jī)體就會(huì)停止生長(zhǎng),它與下丘腦分泌的促生長(zhǎng)激素釋放因子、抑制素、類胰島素樣生長(zhǎng)因子和胰島素等體內(nèi)激素形成刺激和反饋機(jī)制,共同影響動(dòng)物各類型組織的生理代謝。豬生長(zhǎng)激素生理功能主要表現(xiàn)在以下幾個(gè)方面。
pGH能使豬背膘的厚度和胴體脂肪含量明顯降低[5]。注射pGH能減弱脂肪合成、抑制脂肪合成酶活性,直接作用于脂代謝中關(guān)鍵酶乙酰輔酶A使其活性和mRNA含量分別下降58% 和 40%[6]。
生長(zhǎng)激素通過(guò)增加氮存留、氨基酸吸收、蛋白質(zhì)合成的氨基酸摻入,以及作用于RNA聚合酶,調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄來(lái)促進(jìn)蛋白質(zhì)合成。注射pGH以后,豬胴體品質(zhì)有很大變化,表現(xiàn)為組織蛋白含量增加,瘦肉率提高。GH與抗胰島素表現(xiàn)為拮抗效應(yīng),葡萄糖需求減少,進(jìn)而合成更多的蛋白質(zhì)。它能調(diào)節(jié)葡萄糖和游離脂肪酸兩種關(guān)鍵代謝物不可逆轉(zhuǎn)的流失和氧化,短時(shí)間內(nèi)提高乳汁分泌量,也可減少氮流失而提高蛋白質(zhì)合成率[7]。
Donkin等[8]研究發(fā)現(xiàn),注射pGH能使豬血清中類胰島素樣生長(zhǎng)因子IGF-I/II和胰島素的水平提高,而且血漿中葡萄糖含量明顯提高。重組pGH蛋白注射到動(dòng)物體內(nèi)能加快本體生長(zhǎng)激素和IGF-I循環(huán)水平,促進(jìn)肝臟中IGF-I mRNA水平升高。
長(zhǎng)期注射豬生長(zhǎng)激素對(duì)哺乳仔豬(到第28 d斷奶的哺乳豬)[9]、小豬(體重 10 kg 左右)[10]、生長(zhǎng)豬[11]、后備母豬[12]和哺乳母豬都能明顯提高體重,而且哺乳母豬泌乳量也有較大提高[13]。
pGH能促進(jìn)鈣、磷、鎂等礦物質(zhì)元素的吸收,但礦物質(zhì)元素在血漿中的濃度不發(fā)生變化[14]。Caperna等[14]發(fā)現(xiàn)pGH可增強(qiáng)Fe元素在體內(nèi)的滯留,并促進(jìn)其吸收。
pGH最早是直接從豬腦組織中提取獲得,而采用簡(jiǎn)單的化學(xué)方法從豬垂體中提取pGH,大量豬個(gè)體腦垂體只能得到微量pGH,存在回收量和回收率低等問(wèn)題,極大限制了pGH的應(yīng)用。借助基因工程技術(shù)表達(dá)pGH能夠克服上述缺點(diǎn),使pGH在生產(chǎn)上應(yīng)用成為可能。
自20世紀(jì)80年代起,有關(guān)pGH的克隆研究逐步深入。Seeburg等[15]用基因文庫(kù)的方法克隆了pGH的非全長(zhǎng)基因;繼而,Vize等[2]利用含pGH基因全長(zhǎng)cDNA序列作為雜交探針確定了該基因的全序列。我國(guó)在國(guó)外pGH研究的基礎(chǔ)上,也進(jìn)行了一些探索。王華巖等[16]克隆得到了含5'端和3'端UTR的pGH全長(zhǎng)cDNA;齊順章等[17]對(duì)pGH cDNA全基因序列進(jìn)行了測(cè)定分析;楊青等[18]從構(gòu)建的豬腦垂體基因文庫(kù)中篩選到了pGH基因并成功克隆了該基因。Evock等[19]最先通過(guò)原核表達(dá)技術(shù)表達(dá)豬生長(zhǎng)激素,而且具有促生長(zhǎng)生物活性。目前的研究集中在利用原核或真核表達(dá)系統(tǒng)高效表達(dá)有活性的重組pGH上。
pGH原核生物表達(dá)系統(tǒng)通常以大腸桿菌作為受體,技術(shù)成熟、操作簡(jiǎn)便,且大腸桿菌繁殖周期短、外源蛋白表達(dá)量高。但原核表達(dá)系統(tǒng)也存在明顯缺點(diǎn)限制其應(yīng)用,主要體現(xiàn)在:①原核其表達(dá)的pGH形成會(huì)包涵體,而不能分泌到培養(yǎng)基上清中,提取蛋白質(zhì)首先必須首先破碎細(xì)胞獲得包涵體,然后利用強(qiáng)變性劑來(lái)溶解包涵體使pGH蛋白變性,最后變性蛋白通過(guò)復(fù)性才能得到活性蛋白,包涵體雖有益于抵御蛋白酶降解,但不利于蛋白質(zhì)的分離純化。②原核表達(dá)蛋白無(wú)翻譯后的修飾,并且從包涵體制備的外源蛋白可能無(wú)生物活性,pGH基因的表達(dá)序列長(zhǎng)度(ORF序列、成熟肽片段等)也影響蛋白質(zhì)的活性。③原核重組表達(dá)系統(tǒng)遺傳穩(wěn)定性差,需要選擇合適的表達(dá)載體來(lái)表達(dá)目的蛋白質(zhì),還需優(yōu)化誘導(dǎo)溫度、誘導(dǎo)因子等。解決上述問(wèn)題,pGH原核表達(dá)才能成功應(yīng)用。最新研究證實(shí),注射原核表達(dá)的重組pGH蛋白的日本微型豬表現(xiàn)出促生長(zhǎng)效果[20]。
3.2.1 哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)pGH pGH在哺乳動(dòng)物、魚(yú)類中已經(jīng)成功得到表達(dá)并具有生物效應(yīng),考慮到哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)的產(chǎn)物在分子結(jié)構(gòu)、理化特性和生物學(xué)功能方面最接近天然蛋白質(zhì)分子,用哺乳動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)來(lái)表達(dá)pGH,可為pGH蛋白的生產(chǎn)應(yīng)用提供依據(jù)。
脂質(zhì)體載體和病毒載體常用于哺乳動(dòng)物細(xì)胞的轉(zhuǎn)染。1990年,Kato等[21]利用哺乳動(dòng)物猴COS-1細(xì)胞成功表達(dá)了pGH,重組pGH蛋白同天然pGH蛋白分子大小一致。2007年,Zuhorn等[22]發(fā)現(xiàn)陽(yáng)離子脂質(zhì)體(CLS)能克服細(xì)胞障礙將表達(dá)載體成功轉(zhuǎn)染到細(xì)胞內(nèi)表達(dá)目的基因。2011年,Peng等[23]利用CLS介導(dǎo)的含 pGH 基因載體在COS-7真核細(xì)胞內(nèi)表達(dá)pGH蛋白和小鼠體內(nèi)表達(dá)pGH,小鼠體重發(fā)生顯著變化。陳斌方等[24]用帶有pGH cDNA的核糖體進(jìn)入位點(diǎn)介導(dǎo)的雙順?lè)醋硬в行旅顾乜剐詷?biāo)記的逆轉(zhuǎn)錄病毒載體pSN-pGH轉(zhuǎn)染鼠胚胎成纖維細(xì)胞,將感染的細(xì)胞通過(guò)腹膜注射到同系的去垂體小鼠體內(nèi),發(fā)現(xiàn)感染細(xì)胞分泌表達(dá)的pGH具有生物活性,植入15~57 d后小鼠脛骨有明顯的促生長(zhǎng)效應(yīng);G418處理小鼠發(fā)現(xiàn)植入的成纖維細(xì)胞70 d還有存留,隨著小鼠生長(zhǎng),轉(zhuǎn)染細(xì)胞減少而pGH mRNA水平降低,但pGH轉(zhuǎn)錄水平并不降低。采用病毒載體轉(zhuǎn)染細(xì)胞植入動(dòng)物體內(nèi)能夠表達(dá)有促生長(zhǎng)效應(yīng)的活性蛋白,但表達(dá)水平受pGH cDNA拷貝數(shù)的限制。利用不帶任何篩選標(biāo)記的逆轉(zhuǎn)錄病毒載體將pGH cDNA轉(zhuǎn)入鼠成纖維細(xì)胞NIH373中表達(dá),并將帶有新霉素篩選標(biāo)記的pGH反病毒載體二次感染處理NIH373細(xì)胞,結(jié)果發(fā)現(xiàn)增加宿主染色體前病毒中pGH DNA的拷貝數(shù)增加,進(jìn)而增加氮端發(fā)生修飾的pGH的分泌量也有所增加[25]。
利用哺乳動(dòng)物細(xì)胞系來(lái)表達(dá)pGH,表達(dá)的重組蛋白具有翻譯后的修飾并表現(xiàn)天然的生物活性,但應(yīng)用何種哺乳動(dòng)物細(xì)胞系表達(dá)都存在細(xì)胞凋亡、表達(dá)調(diào)控原件的優(yōu)化等問(wèn)題,細(xì)胞培養(yǎng)成本較高并且篩選標(biāo)記不明顯,加之目的蛋白收獲量較低,很難投入生產(chǎn),因此需要探索新的蛋白質(zhì)表達(dá)技術(shù)。
3.2.2 酵母表達(dá)pGH 酵母表達(dá)的外源蛋白存在翻譯后的加工修飾,酵母兼具大腸桿菌異源蛋白表達(dá)量高的優(yōu)點(diǎn),因此酵母已成為基因工程技術(shù)中重要的表達(dá)系統(tǒng)。Jo等[26]根據(jù)已報(bào)道的pGH基因編碼序列,通過(guò)優(yōu)化密碼子在酵母細(xì)胞中成功表達(dá)了pGH,其大小為22 kDa,并占胞內(nèi)可溶蛋白10%,獲得的重組pGH同樣具有改變豬生長(zhǎng)速率的生物活性。但是酵母表達(dá)系統(tǒng)同樣存在表達(dá)蛋白內(nèi)部降解、信號(hào)肽加工不完全、表達(dá)產(chǎn)物過(guò)度糖基化等不足,需要在實(shí)際應(yīng)用中不斷改進(jìn)。
3.2.3 昆蟲(chóng)表達(dá)pGH 桿狀病毒表達(dá)載體系統(tǒng)(baculovirus expression vector system,BEVS),也稱作昆蟲(chóng)表達(dá)系統(tǒng),于20世紀(jì)80年代構(gòu)建并開(kāi)始廣泛應(yīng)用,是一種功能全面的真核細(xì)胞基因表達(dá)載體系統(tǒng),具有多角體啟動(dòng)子控制下的高效表達(dá)、真核細(xì)胞完善的轉(zhuǎn)譯后加工修飾、較易從細(xì)胞培養(yǎng)上清中和昆蟲(chóng)組織中純化目的蛋白等優(yōu)點(diǎn)。
當(dāng)前,已有數(shù)千計(jì)的異源基因在該系統(tǒng)中得到表達(dá),且產(chǎn)生的重組蛋白可進(jìn)行精確的蛋白質(zhì)折疊、糖基化、信號(hào)肽切割等翻譯后加工修飾;并且基因加入信號(hào)肽后,表達(dá)產(chǎn)物有較強(qiáng)的胞外分泌能力,有利于產(chǎn)物的后加工,并且重組體的遺傳穩(wěn)定性好[27],BEVS在上述方面明顯優(yōu)于原核表達(dá)載體系統(tǒng)。歐陽(yáng)菁等[28]利用BEVS在昆蟲(chóng)細(xì)胞中表達(dá)了pGH基因,選擇帶病毒polh基因啟動(dòng)子和gp67信號(hào)肽的重組pGP67-pGH轉(zhuǎn)移載體,與致死缺陷型線性化AcMNPV-OCC-DNA共轉(zhuǎn)染草地夜蛾細(xì)胞(Sf9),構(gòu)建了既能形成多角體又能表達(dá)外源基因的苜蓿丫紋夜蛾核多角體重組病毒AcMNPV-pGP67-pGH-OCC+,SDS-PAGE 和 Western雜交檢測(cè)到感染重組病毒的Hi5細(xì)胞上清液可溶蛋白中22 kDa的豬生長(zhǎng)激素條帶,pGH蛋白占細(xì)胞可溶蛋白的4.48%。雖然桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)表達(dá)蛋白可完成翻譯后的修飾并且表達(dá)量相對(duì)較高,但該系統(tǒng)還具有病毒增殖周期較短,目的蛋白無(wú)法連續(xù)表達(dá)的缺點(diǎn),并且病毒基因表達(dá)調(diào)控機(jī)制尚不清楚,各病毒株系之間毒力還存在差異,毒力的大小和增殖直接影響蛋白質(zhì)的表達(dá)量,需要進(jìn)一步深入研究。
家蠶是迄今為止被人類完全馴化并得以充分利用的重要經(jīng)濟(jì)昆蟲(chóng)之一,具有易飼養(yǎng)、繁殖周期短、繁殖數(shù)量大等特點(diǎn)。在基因工程領(lǐng)域,作為重要的模式生物,家蠶的遺傳背景清楚,研究深入。家蠶表達(dá)外源基因具有簡(jiǎn)單、成本低廉、安全等優(yōu)點(diǎn),以家蠶生物作為反應(yīng)器可低成本、大規(guī)模生產(chǎn)重組蛋白,是一種重要的昆蟲(chóng)表達(dá)系統(tǒng),目前已得到廣泛的開(kāi)發(fā)與應(yīng)用。家蠶桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)被廣泛用于家蠶生物反應(yīng)器研究中,朱江等[29]將帶有6×His純化標(biāo)簽的 pGH基因片段連接到pBacPAK構(gòu)建成重組穿梭載體pPGH030,重組載體同Bm-BacPAK6共轉(zhuǎn)染BmN細(xì)胞,細(xì)胞破碎后的上清溶液中可檢測(cè)到pGH蛋白表達(dá);BmN細(xì)胞上清液接種5齡家蠶和蠶蛹,幼蟲(chóng)和蛹血淋巴中均檢測(cè)到分子量約25 kDa的特異pGH蛋白質(zhì)條帶,證實(shí)pGH在家蠶細(xì)胞和蠶體中得到了表達(dá)。與昆蟲(chóng)培養(yǎng)細(xì)胞相比,利用家蠶幼蟲(chóng)和蛹生產(chǎn)pGH能夠獲得更高的表達(dá)量,同時(shí)還可開(kāi)發(fā)為含有pGH蛋白的新型昆蟲(chóng)飼料。
利用家蠶BmNPV表達(dá)系統(tǒng)生產(chǎn)重組蛋白時(shí),存在家蠶批次病毒接種的問(wèn)題,并且后續(xù)蛋白分離純化相對(duì)繁瑣。因此,對(duì)家蠶反應(yīng)器表達(dá)重組蛋白的大量研究集中在改進(jìn)轉(zhuǎn)基因方法,以及如何提高蛋白表達(dá)量和易于分離純化蛋白上。家蠶個(gè)體表達(dá)重組蛋白pGH的后續(xù)分離純化較為困難,而采用家蠶特異組織(絲腺、脂肪體等)在特定時(shí)期表達(dá)pGH,可提高其表達(dá)量并彌補(bǔ)個(gè)體表達(dá)的不足。家蠶幼蟲(chóng)的絲腺作為合成和分泌絲蛋白的器官,5齡后期絲膠和絲心蛋白大量合成,若利用相應(yīng)的絲膠和絲素啟動(dòng)子來(lái)驅(qū)動(dòng)pGH的表達(dá),不僅利于純化目的蛋白,而且表達(dá)量大為提高[30]。家蠶組織特異性表達(dá)基因的啟動(dòng)子也逐漸被克隆,如30k蛋白家族中的lp3基因啟動(dòng)子,在家蠶脂肪體和血液中特異表達(dá)[31],還有中腸特異表達(dá)啟動(dòng)子[32]等。而家蠶組成型啟動(dòng)子如A3[33]、熱激蛋白 HSP 啟動(dòng)子[34]在家蠶的各個(gè)組織盡有表達(dá),不存在時(shí)期特異性,應(yīng)用這類啟動(dòng)子則方便純化蛋白且目的蛋白表達(dá)量也相對(duì)較高。為了增強(qiáng)啟動(dòng)子的驅(qū)動(dòng)活性,也可以在啟動(dòng)子的上游插入增強(qiáng)子片段使目的蛋白表達(dá)量增大。目前家蠶轉(zhuǎn)基因技術(shù)相對(duì)成熟,已經(jīng)建立各種轉(zhuǎn)基因載體,如,基于pigg Bac轉(zhuǎn)座子帶熒光篩選標(biāo)記(GFP、DsRed)的轉(zhuǎn)基因家蠶,制作相對(duì)容易[35]。家蠶轉(zhuǎn)基因技術(shù)的研究對(duì)拓展家蠶生物反應(yīng)器和促進(jìn)pGH的生產(chǎn)化具有重要意義。
自1982年將pGH基因整合到小鼠基因組上首先實(shí)現(xiàn)陽(yáng)性轉(zhuǎn)基因小鼠[36],利用轉(zhuǎn)基因技術(shù)已經(jīng)成功將 pGH 基因應(yīng)用于豬[37]、兔子[38]等哺乳動(dòng)物。評(píng)估重組pGH的功能需要測(cè)定轉(zhuǎn)基因動(dòng)物體重和組織發(fā)育情況,確定pGH的促生長(zhǎng)作用。1988年,Vize等[37]建立用人金屬硫蛋白啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)pGH表達(dá)的轉(zhuǎn)基因豬,陽(yáng)性個(gè)體較陰性個(gè)體生長(zhǎng)速率加快和體重有所增加;2003年,仲飛等[39]同樣使用綿羊鐵硫蛋白啟動(dòng)子啟動(dòng)pGH在小鼠體內(nèi)表達(dá)促進(jìn)了個(gè)體生長(zhǎng)速率。實(shí)驗(yàn)動(dòng)物體重發(fā)生了明顯變化,但是潛在的風(fēng)險(xiǎn)還不得而知,為了克服簡(jiǎn)單外源啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)GH表達(dá)的轉(zhuǎn)基因技術(shù)給動(dòng)物個(gè)體產(chǎn)生的副作用,Jia等[40]運(yùn)用BAC(細(xì)菌人工染色體)攜帶pGH基因,還包括正、負(fù)調(diào)控元件,選擇合適啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)pGH在小鼠體內(nèi)表達(dá),陽(yáng)性小鼠在整個(gè)發(fā)育過(guò)程中未發(fā)現(xiàn)任何疾病癥狀。1998年,張志紅等[41]構(gòu)建綿羊鐵硫蛋白啟動(dòng)子啟動(dòng)pGH的表達(dá)盒,將載體注射到金魚(yú)受精卵內(nèi)表達(dá)pGH,金魚(yú)表達(dá)的重組pGH能使其體重明顯上升,證實(shí)pGH在魚(yú)類也同樣產(chǎn)生促生長(zhǎng)的效果。
開(kāi)發(fā)重組豬生長(zhǎng)激素具有重要的科研價(jià)值、經(jīng)濟(jì)意義、社會(huì)意義和生態(tài)效益。動(dòng)物微量注射pGH就能產(chǎn)生明顯的促生長(zhǎng)效果,能夠提高豬對(duì)飼料的利用率,縮短肉豬的出欄時(shí)間,減少碳排放,緩解市場(chǎng)供需矛盾。但pGH的應(yīng)用必須有嚴(yán)格的規(guī)范和監(jiān)管,一方面,過(guò)量注射或長(zhǎng)期注射pGH會(huì)產(chǎn)生風(fēng)險(xiǎn),甚至嚴(yán)重的副作用,如雌性牛個(gè)體生育率下降,可能完全不育,免疫力也低于未注射的個(gè)體[42],而豬長(zhǎng)期注射重組 pGH蛋白的潛在問(wèn)題還未評(píng)估。另一方面,由于正常動(dòng)物個(gè)體自身合成分泌的生長(zhǎng)激素足以維持正常的生長(zhǎng)發(fā)育,因此利用通過(guò)轉(zhuǎn)基因技術(shù)在動(dòng)物體內(nèi)過(guò)量表達(dá)同源或外源GH進(jìn)行生產(chǎn)性應(yīng)用,則必須嚴(yán)格評(píng)估其安全性。
使用重組pGH促進(jìn)肉豬生長(zhǎng)的同時(shí)保持豬個(gè)體的健康是今后生產(chǎn)應(yīng)用的重要方向。重組pGH蛋白與固醇類激素、人工合成的生長(zhǎng)調(diào)節(jié)激素不同,不會(huì)長(zhǎng)時(shí)間在動(dòng)物體內(nèi)殘留,因此不存在pGH在動(dòng)物體內(nèi)積累的問(wèn)題。人食用注射pGH的豬或轉(zhuǎn)pGH基因的豬,因pGH半衰期較短、種間異性,不與hGH受體結(jié)合產(chǎn)生生理效應(yīng),短時(shí)間內(nèi)對(duì)人體不會(huì)產(chǎn)生危害,但是目前還沒(méi)有充分的證據(jù)證明pGH對(duì)人體無(wú)潛在且長(zhǎng)遠(yuǎn)的影響,因此還需嚴(yán)格評(píng)估。盡管重組pGH應(yīng)用于養(yǎng)豬業(yè)仍存在分歧,但是相對(duì)于傳統(tǒng)生長(zhǎng)調(diào)節(jié)激素,在動(dòng)物毒性、動(dòng)物殘留和對(duì)人體的影響等方面,已經(jīng)具有明顯的比較優(yōu)勢(shì)。通過(guò)基因工程技術(shù)優(yōu)化,清楚探索該激素作用機(jī)制,重組豬生長(zhǎng)激素同樣能夠應(yīng)用于生產(chǎn)。通過(guò)優(yōu)化pGH基因的翻譯序列、引入其基因內(nèi)含子序列、選擇優(yōu)異的啟動(dòng)子等手段使得重組pGH蛋白更接近天然結(jié)構(gòu);清楚了解pGH的代謝機(jī)理,研究如何在生豬飼養(yǎng)過(guò)程中合理、規(guī)范使用pGH蛋白,可將pGH蛋白質(zhì)運(yùn)用于養(yǎng)豬業(yè)以生產(chǎn)更加健康的豬。不同區(qū)域的豬在瘦肉率、口感、生長(zhǎng)速度等性狀上都存在差異,運(yùn)用傳統(tǒng)的育種手段,還存在生殖隔離、選育周期較長(zhǎng)等問(wèn)題,若將pGH用于經(jīng)濟(jì)性狀較好的豬品種,該品種豬可實(shí)現(xiàn)瘦肉率高、生長(zhǎng)較快等傳統(tǒng)育種的目標(biāo),可解決傳統(tǒng)遺傳育種遇到的上述問(wèn)題。
利用經(jīng)濟(jì)昆蟲(chóng)家蠶來(lái)表達(dá)豬生長(zhǎng)激素,可充分合理利用家蠶資源,繭殼產(chǎn)生其經(jīng)濟(jì)價(jià)值外,蛹和蛾還可以開(kāi)發(fā)含pGHz的新型飼料添加劑,無(wú)需提取純化pGH蛋白即可直接應(yīng)用,節(jié)省pGH蛋白的生產(chǎn)成本,這也是目前頗具生產(chǎn)前景的研究方向。
隨著人口增加,人們對(duì)物質(zhì)生活要求的提高,養(yǎng)豬業(yè)飼料成本上漲、占生產(chǎn)成本比重增大,pGH的使用有助于緩解上述矛盾。重組pGH蛋白質(zhì)并不隨著豬的生長(zhǎng)在豬體內(nèi)殘留,在經(jīng)基因工程技術(shù)優(yōu)化以后,pGH能為廣大消費(fèi)者提供相對(duì)廉價(jià)、瘦肉率高、更健康的豬,產(chǎn)生重大的社會(huì)效益,因此,研究開(kāi)發(fā)重組豬生長(zhǎng)激素、實(shí)現(xiàn)重組豬生長(zhǎng)激素蛋白生產(chǎn)化具有廣闊的發(fā)展前景。
[1]Hagen D R,Mills E W,Bryan K A,et al..Effects of exogenous porcine growth hormone(pGH)On growth,carcass traits,reproductive characteristics and meat sensory attributes of young boars[J].J.Anim.Sci.,1991,69(6):2472-2479.
[2]Vize P D,Wells J R E.Isolation and characterization of the porcine growth hormone gene[J].Gene,1987,55(2):339-344.
[3]Carlacci L,Chou K C,Maggiora G M.A heuristic approach to predicting the tertiary structure of bovine somatotropin[J].Biochemistry,1991,30(18):4389-4398.
[4]Abdel-Meguid S S,Shieh H S,Smith W W,et al..Three dimmensional structure of a genetically engineered variant of porcine growth hormone[J].Proc.Natl.Acad.Sci.USA,1987,84(18):6434-6437.
[5]Etherton T D,Wiggins J P,Chung C S,et al..Stimulation of pig growth performance by porcine growth hormone and growth hormone-releasing factor[J].J.Anim.Sci.,1986,63(5):1389-1399.
[6]Harris D M,Dunshea F R,Bauman D E,et al..Effect of in vivo somatotropin treatment of growing pigs on adipose tissue lipogenesis[J].J.Anim.Sci.,1993,71(12):3293-3300.
[7]Peel C J,Bauman D E.Somatotropin and lactation[J].J.Dairy Sci.,1987,70(2):474-486.
[8]Donkin S S,McNall A D,Swencki B S,et al..The growth hormone-dependent decrease in hepatic fatty acid synthase mRNA is the result of a decrease in gene transcription[J].J.Mol.Endocrinol.,1996,16(2):151-158.
[9]Harkins M,Boyd R D,Bauman D E.Effect of recombinant porcine somatotropin on lactational performance and metabolite patterns in sows and growth of nursing pigs[J].J.Anim.Sci.,1989,67(8):1997-2008.
[10]Harrell R J,Thomas M J,Boyd R D,et al..Effect of porcine somatotropin administration in young pigs during the growth phase from 10 to 25 kilograms[J].J.Anim.Sci.,1997,75(12):3152-3160.
[11]Kanis E,Nieuwhof G J,De Greef K H,et al..Effect of recombinant porcine somatotropin on growth and carcass quality in growing pigs:interactions with genotype,gender and slaughter weight[J].J.Anim.Sci.,1990,68(5):1193-1200.
[12]Bryan K A,Clark A M,Hagen D R.Effect of treatment with and subsequent withdrawal of exogenous porcine somatotropin on growth and reproductive characteristics of gilts[J].J.Anim.Sci.,1990,68(8):2357-2361.
[13]汪琳仙,張少英.外源豬生長(zhǎng)激素對(duì)豬血液葡萄糖、胰島素含量的影響[J].北京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1989,15(4):456-459.
[14]Caperna T J,Campbell R G,Steele N C.Interrelationships of exogenous porcine growth hormone administration and feed intake level affecting various tissue levels of iron,copper,zinc and bone calcium of growing pigs[J].J.Anim.Sci.,1989,67(3):654-663.
[15]Seeburg P H,Sias S,Adelman J,et al..Efficient bacterial expression of bovine and porcine growth hormones[J].DNA,1983,2(1):37-45.
[16]王華巖,周順伍,王辛中,等.豬生長(zhǎng)激素基因cDNA的分子克隆[J].北京農(nóng)業(yè)大學(xué)報(bào),1987,13(4):379-385.
[17]齊順章,王辛中,周順伍,等.豬生長(zhǎng)激素基因cDNA的全序列分析[J].生物工程學(xué)報(bào),1989,5(1):35-39.
[18]楊青,朱寶利,周順伍,等.豬垂體中豬生長(zhǎng)激素基因的克隆和部分序列分析[J].生物工程學(xué)報(bào),1992,8(4):318-323.
[19]Evock C M,Caperna T J,Steele N C,et al..Influence of time of injection of recombinant porcine somatotropin(rpST)relative to time of feeding on growth performance,hormone and metabolite status,and muscle RNA,DNA,and protein in pigs[J].J.Anim.Sci.,1991,69(6):2443-2451.
[20]Ashok S K,Kuwabara Y,Abe S,et al..Expression and purification of growth hormone from Microminipig(MMP)and its effects on body fat percentage with injection[J].J.Appl.Biol.Biotechnol.,2014,2(1):23-29.
[21]Kato Y,Shimokawa N, Kato T, et al.. Porcine growth hormone:molecularcloningofcDNA andexpressionin bacterial and mammalian cells[J].Biochim.Biophys.Acta,1990,1048(2):290-293.
[22]Zuhorn I S,Engberts J B F N,Hoekstra D.Gene delivery by cationic lipid vectors:overcoming cellular barriers[J].Eur.Biophys.J.,2007,36(4-5):349-362.
[23]Peng C,Wang L,Chen Z,et al..Construction of porcine growth hormone eukaryotic expression vector and its transfection mediated by cationic liposome in mice.[J]. Anim.Biotechnol.,2011,22(4):223-235.
[24]Chen B F,Chang W C, Chen ST, et al.. Long-term expression ofthe biologically active growth hormone in genetically modified fibroblasts afterimplantation into a hypophysectomized rat[J].Hum.Gene Ther.,1995,6(7):917-926.
[25]Hwang L H,Chen B F,Lee P J,et al..Use of helper‐free retroviral vector to direct a high expression of porcine growth hormone in mouse fibroblast cells[J].Biotechnol.Appl.Biochem.,1992,16(2):171-181.
[26]Jo J M,Lee T H,Jeong H,et al..Method for the production of porcine growth hormone using a synthetic gene in yeast cells[J].Biotechnol.Adv.,1997,15(2):543-543.
[27]Kidd I M,Emery V C.The use of baculoviruses as expression vectors[J].Appl.Biochem.Biotechnol.,1993,42(2-3):137-159.
[28]歐陽(yáng)菁,龍綮新,楊林,等.豬生長(zhǎng)激素基因在昆蟲(chóng)細(xì)胞中的分泌表達(dá)[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào),2002,33(5):482-485.
[29]朱江,姜秀英,曹廣力,等.His-豬生長(zhǎng)激素融合基因在BmN細(xì)胞和蠶體內(nèi)的表達(dá)與純化[J].蘇州大學(xué)學(xué)報(bào),2005,21(2):376-382.
[30]Liu Y,Yu L,Guo X,et al..Analysis of tissue-specific region in sericin 1 gene promoter of Bombyx mori[J].Biochem.Biophys.Res.Commun.,2006,342(1):273-279.
[31]Zhong B X,Li J K,Lin J R,et al..Possible effect of 30K proteins in embryonic development of silkworm Bombyx mori[J].Acta Biochim.Biophy.Sin.,2005,37(5):355-361.
[32]陸 改,程廷才,蔣 亮,等.家蠶中腸特異啟動(dòng)子 BmAPN的克隆及活性分析[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,45(20):4279-4287.
[33]Tamura T, Thibert C, Corinne R, et al.. Germline transformation of the silkworm Bombyx mori L.using a piggyBac transposon-derived vector[J].Nat.Biotechnol.,2000,18(1):81-84.
[34]莊蘭芳,危浩,林健榮,等.家蠶 hsp70啟動(dòng)子的克隆及功能研究[J].中國(guó)細(xì)胞生物學(xué)學(xué)報(bào),2011,33(5):503-509.
[35]Handler A M.Use of the piggyBac transposon for germ-line transformation of insects [J].Insect Biochem.Mol.Biol.,2002,32(10):1211-1220.
[36]Palmiter R D,Brinster R L,Hammer R E,et al..Dramatic growth of mice that develop from eggs microinjected with metallothionein-growth hormone fusion genes [J].Nature,1982,300(10):611-615.
[37]Vize P D,Michalska A E,Ashman R,et al..Introduction of a porcine growth hormone fusion gene into transgenic pigs promotes growth[J].J.Cell Sci.,1988,90(2):295-300.
[38]Wang H J,Lin A X,Zhang Z C,et al..Expression of porcine growth hormone gene in transgenic rabbits as reported by green fluorescent protein[J].Anim.Biotechnol.,2001,12(2):101-110.
[39]仲 飛,李秀錦,王辛中,等.腺病毒介導(dǎo)的豬生長(zhǎng)激素cDNA在大鼠體內(nèi)的誘導(dǎo)表達(dá)及其促生長(zhǎng)作用的研究[J].病毒學(xué)報(bào),2003,(2):41-45.
[40]Tong J,Lillico S G,Bi M J,et al..Tissue-specific and expression of porcine growth hormone gene in BAC transgenic mice[J].Transgenic Res.,2011,20(4):933-938.
[41]張志紅,劉桂生,張玉廉,等.外源豬生長(zhǎng)激素基因在金魚(yú)體內(nèi)的整合與表達(dá)研究[J].生物工程學(xué)報(bào),1998,14(2):227-229.
[42]Naar E M,Bartke A,Majumdar S S,et al..Fertility of transgenic female mice expressing bovine growth hormone or human growth hormone variant genes[J].Biol.Reprod.,1991,45(1):178-187.