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      HPLC-UV法測定草決明中五種蒽醌類化合物含量及其指紋圖譜的建立*

      2014-06-04 09:24:26何永志嚴(yán)治學(xué)ErnestinaAmponsem任曉亮常艷旭
      河北醫(yī)學(xué) 2014年12期
      關(guān)鍵詞:生品蒽醌黃素

      何永志,嚴(yán)治學(xué),Ernestina Amponsem,任曉亮,常艷旭

      (天津中醫(yī)藥大學(xué)中藥學(xué)院,天津 300193)

      決明子是一味眾所周知的具有潤腸通便功能的中藥[1],具有調(diào)節(jié)血液和膽固醇作用,可用于治療高血壓、糖尿病、月經(jīng)不調(diào)、水腫等疾病。望江南在中國稱為草決明,在中國南方局部地區(qū)用于腸道和皮膚等病的治療[2]。而在加納,草決明則用于治療高血壓、瘧疾、傷寒、咳嗽等疾?。?,4]?,F(xiàn)代研究表明,草決明含有多種化學(xué)成分,如蒽醌類(番瀉葉苷A,B和C,蘆薈大黃素,大黃酚,大黃素,大黃酸等),三萜類、鞣質(zhì)、黃酮類、油脂、毒白蛋白素和多糖等[5]。有學(xué)者對源自湖北省和南京市的草決明的蒽醌含量進行了研究,發(fā)現(xiàn)湖北省的草決明蒽醌含量最高,且炮制時間和溫度會影響揮發(fā)性成分的含量[6,7],而在加納北方邦西部也出現(xiàn)過兒童因過量食用草決明而引起中毒的相關(guān)報道[8]。目前對于決明子質(zhì)量控制研究往往集中一個或幾個成分的定性或定量分析,或采用雙波長HPLC指紋圖譜結(jié)合化學(xué)計量分析法鑒別炒決明子、生決明子和小決明子。而以多組分為基礎(chǔ)的測定草決明的化學(xué)計量學(xué)分析方法研究尚未見報道。為控制藥材質(zhì)量,保證用藥安全,本文根據(jù)草決明所含化學(xué)成分特性,對來自加納和中國不同產(chǎn)地的22個草決明子樣本中五種蒽醌類成分進行含量測定,并建立HPLC指紋圖譜,為草決明的全面質(zhì)量評價提供參考。

      1 儀器與試藥

      1.1 儀器:島津(日本東京)二元LC-20AT泵,SIL20A自動進樣器,CTO-10ASvp柱溫箱,SPD-20A紫外檢測器,CMB-20A系統(tǒng)控制器。

      1.2 試藥:蘆薈大黃素(>98.0%),大黃酸(>98%),大黃素(>99%),大黃酚(>99%)和大黃素甲醚(>98.4%)購自中國藥品生物制品檢定所。草決明樣品產(chǎn)自加納11個不同地區(qū)以及中國兩個地區(qū)(武漢和南京),并經(jīng)李天祥副教授鑒定,標(biāo)本保存于天津中醫(yī)藥大學(xué)實驗室標(biāo)本部(見表1)。乙腈和甲醇(色譜純)購自天津江天化工有限公司;甲酸(分析純)購自天津柯偉有限公司。純凈水購自杭州娃哈哈集團有限公司。

      表1 草決明樣品

      2 方法與結(jié)果

      2.1 色譜條件:采用 Hypersil C18色譜柱(250mm×4.6mm,5μm,P.R),流動相:0.05%甲酸(A)-乙腈(B),梯度洗脫:0-50min,5%B-90%B;流速 1.0mL/min,檢測波長 254nm,柱溫30℃,進樣量20μL。生品(NR)、炒品(R)和5個標(biāo)準(zhǔn)品混合物HPLC色譜圖如圖1所示。

      2.2 溶液的制備:標(biāo)準(zhǔn)品溶液的制備:取蘆薈大黃素(1mg)、大黃酸(1mg)、大黃素(1mg)、大黃酚(1mg)和大黃素甲醚(5mg)精密稱定,分別置于10mL的容量瓶中,加甲醇定容至刻度,制成蘆薈大黃素、大黃酸、大黃素、大黃酚、大黃素甲醚分別為100μg/mL、100μg/mL、100μg/mL、100μg/mL、100μg/mL、500μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)品溶液。樣品溶液的制備:采用傳統(tǒng)炒制法進行炮制,在預(yù)熱的平底鍋(170-190℃)中將80g草決明種子煨炒4min,粉碎,過4號篩。取草決明粉末樣品(0.2g)精密稱定,置10mL容量瓶中加甲醇/水(4∶1)10mL。記錄容量瓶質(zhì)量,室溫下將混合物超聲萃取40min,補足失重。提取液經(jīng)微孔濾膜(0.45m)過濾,取續(xù)濾液,待用。

      圖1 生品(NR)、炒品(R)和5個標(biāo)準(zhǔn)品混合物

      2.3 方法驗證:精密量取5個蒽醌類化合物的標(biāo)準(zhǔn)品溶液適量,混合均勻,并逐級稀釋繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,采用最小二乘法對每個蒽醌類化合物進行線性回歸分析,結(jié)果表明線性范圍內(nèi)線性關(guān)系良好(R2>0.996)。精密度由同一天同一樣品重復(fù)進樣6次測定,峰面積和保留時間的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD,n=6)分別小于2.5%和0.1%(表3)。重復(fù)性通過分析6個平行制備的樣品進行評價。穩(wěn)定性通過分析相同混合標(biāo)準(zhǔn)溶液在室溫下24h的含量進行評價。加樣回收試驗結(jié)果表明,方法回收率介于95.6%-104.1%之間,RSD 小于6.2%。結(jié)果見表2。

      表2 方法驗證結(jié)果 (RSD%)

      2.4 含量測定:按“2.2”項下方法制備樣品溶液,經(jīng)微孔濾膜 (0.45μm)過濾,進樣分析。結(jié)果見表3。

      表3 不同產(chǎn)地樣品中蒽醌含量測定結(jié)果 (μg/mL)

      2.5 草決明的HPLC指紋圖譜的建立:按“2.2”項下方法分別制備22個草決明藥材的樣品溶液,并按“2.1”項下方法進樣分析。比較各樣品色譜圖發(fā)現(xiàn),不同樣品具有相似的化學(xué)成分,在HPLC指紋圖譜中,指認(rèn)了5個色譜峰:①蘆薈大黃素,②大黃酸,③大黃素,④大黃酚和⑤大黃素甲醚,保留時間分別為31.7,32.5,38.1,43.7,46.7min。色譜峰 9 在色譜圖上響應(yīng)最高且保留時間適宜,因此選取作為參比峰。其中7個產(chǎn)自加納的生品均有相應(yīng)炮制品,分析生品(1組)和炮制品(兩組)色譜圖,除了產(chǎn)自Adum Banso和Ahinsan的樣品,每組5個樣品都顯示了大量共有色譜峰的存在,因此采用軟件進行色譜峰匹配,結(jié)果5個生品樣品顯示有16個共有峰,5個炮制樣品顯示有8個共有峰。如圖2所示。

      采用“中藥色譜指紋圖譜相似度評價系統(tǒng)(2004 A)”,對產(chǎn)自加納5個生品及與中國產(chǎn)生品進行相似度判別,結(jié)果見表4、5。

      表4 共有峰相對峰面積和保留時間及5個樣品的相似度

      表5 加納和中國草決明生品指紋圖譜的相似性

      3 討論

      本實驗建立了一種對草決明中的多個蒽醌類成分進行質(zhì)量控制的簡單可靠的HPLC法,同時建立的草決明指紋圖譜標(biāo)準(zhǔn),為該藥材的質(zhì)量控制提供依據(jù)。

      3.1 色譜條件的優(yōu)化和提取方法的選擇:為全面反映草決明藥材HPLC信息,對提取溶劑和提取時間進行了考察,結(jié)果表明采用甲醇水溶液提取效果較好,并通過L9(34)正交試驗,考察甲醇/水在20∶80、50∶50、80∶20時超聲提取效果。同時對色譜條件進行優(yōu)化,比較甲醇、乙腈、甲酸、磷酸和水以不同比例作為流動相,結(jié)果表明乙腈比甲醇有更好分離效果;檢測波長在254nm和278nm時具有相似的色譜圖,但278nm下大黃素甲醚響應(yīng)較弱,因此選取254nm作為檢測波長;流速為1mL/min時,50min內(nèi)具有良好分離效果。

      3.2 指紋圖譜的應(yīng)用:產(chǎn)自O(shè)kponglo sonitra的炮制品在加納的11個樣品中蒽醌類化合物含量最高。與產(chǎn)自土壤條件相似的Physic garden(KNUST)樣品相比,相似度可達(dá)0.955;與兩個產(chǎn)自中國的炮制品相比,相似系數(shù)分別為南京(0.215)、武漢(0.335)。表明產(chǎn)自兩個國家的樣品具有顯著的差異。

      3.3 生品和炮制品的使用的差別:比較生品和炮制品的色譜峰的差別,結(jié)果色譜圖上共有34個色譜峰。其中5個色譜峰為生品特有,但炒制后都消失。炒制后產(chǎn)生19個新的色譜峰,其它有8個色譜峰吸收增強,2個色譜峰吸收下降。推測新色譜峰可能是在炒制過程中經(jīng)氧化或分解產(chǎn)生。

      [1]國家藥典委員會.中華人民共和國藥典[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010.134-135.

      [2]南京中醫(yī)藥大學(xué).中藥大辭典[M].第2版.上海:上??茖W(xué)技術(shù)出版社,2006.3133-3134

      [3]Chu C,Hao Z,Wei X,et al.2007.High-performance liquid chromatographicngerprint analysis for different origins of sea buckthorn berries[J].Journal of Chromatography A,1154:250-259.

      [4]Dalziel JM,1956.Useful plants of west tropical africa[M].Crown Agents for Overseas Governments,London,179-183.

      [5]Pellati F,Benvenuti S,Magro L,Melegari M,Soragni F.Analysis of phenolic compounds and radical scavenging activity of Echinacea SPP[J].Pharm Biomed Anal,2004,35(2):289.

      [6]Jain S Patil UK.Phytochemical and pharmacological profile of cassia tora Linn[J].Indian Journal of Natrual Products and Resources,2010,1(4):430-437.

      [7]Jawahar La,Gupta PC.Anthraquinone glycoside from the seeds of cassia occidentalis Linn[J].Specialia,Allahabad(India),1972,15(2):141-142.

      [8]Sadique J.Biochemical modes of action of cassia occidentalis and cardiospermum halicacabum in inflammation[J].Ethnopharamacol,1987,19(2):201-212.

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