李迎敏,陰懷清,栗 紅,張 巍,張曉佳,馮鈺淑,張 新
新生兒缺氧缺血性腦損傷(HIBD)所致神經(jīng)元損傷主要有壞死和凋亡兩種方式。缺氧誘導(dǎo)因子1(HIF-1)、Bcl-2、Bax等分子共同參與和調(diào)節(jié)由缺氧引起的凋亡。生理或病理缺氧狀態(tài)下HIF-1對維持機(jī)體氧平衡有重要作用[1-3],可通過作用于下游靶基因以減少Bax[4]等促凋亡因子。近年來的實(shí)驗(yàn)研究表明亞低溫干預(yù)是治療HIBD 最具有前途的措施之一[5-8]。亞低溫干預(yù)可抑制并減少HIBD 所引起的神經(jīng)元凋亡[9,10],對HIBD起到重要腦保護(hù)作用。
1.1 模型制作 新生7日齡Sprague-Dawley清潔級大鼠120只,由山西醫(yī)科大學(xué)動物實(shí)驗(yàn)中心提供,雌雄不拘,體重10g~15g。HIBD 模型制備參照Rice[11]方法,大鼠采用乙醚麻醉后,分離出左頸總動脈并永久結(jié)扎,假手術(shù)動物僅分離出左側(cè)頸總動脈,不予結(jié)扎,術(shù)后回籠恢復(fù)2h,再將鼠放入37℃水浴箱內(nèi)的低氧箱中,箱底鋪鈉石灰以吸收二氧化碳,通入8%氧氣和92%氮?dú)獾幕旌蠚?,于出氣孔檢測氧濃度(Y-12C 型數(shù)字測氧儀,上??等A生化儀器制造有限公司),2h后開蓋,在箱內(nèi)與空氣接觸并恢復(fù)15min。
1.2 亞低溫實(shí)施及實(shí)驗(yàn)分組 實(shí)驗(yàn)動物采用完全隨機(jī)設(shè)計(jì)分為3組:假手術(shù)組(A 組,肛溫37℃,n=40)假手術(shù)動物,缺氧缺血組(B組,肛溫37 ℃,n=40),模型制備完成后籠內(nèi)母乳喂養(yǎng),亞低溫干預(yù)組(C組,肛溫33 ℃,n=40),模型制備完畢將動物放入半導(dǎo)體可調(diào)恒溫水浴箱(溫控范圍10 ℃~50 ℃上海理工大學(xué)制冷工程研究所研制)的暖箱內(nèi)(34℃),維持至亞低溫結(jié)束,期間采用配方奶粉喂養(yǎng)[12]。其中各組又根據(jù)處死動物的時間(HIBD 后2h,6h,12h,24h,48h,)隨機(jī)分為5個亞組,每個亞組8只。
1.3 行為及腦組織標(biāo)本外觀觀察 實(shí)驗(yàn)動物置于缺氧環(huán)境中肉眼觀察有無異常行為改變;采用斷頭法處死動物后,觀察缺血側(cè)與對側(cè)腦組織外觀形態(tài)的改變。
1.4 Bax mRNA 表達(dá)的測定 取缺血側(cè)腦組織,按Trizol試劑說明提取腦組織總RNA;采用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA;以cDNA 為模板,采用Real-time基因擴(kuò)增儀(西安天隆科技有限公司)進(jìn)行PCR 擴(kuò) 增,內(nèi) 參β-actin上 游 引 物5′-gtc agg tca tca cta tcg gca at-3′,下游引物5′-agaggt ctt tac gga tgt caa cgt-3′;Bax上游引物5′-tgc agagga tga ttg ctg ac-3′,下游引物5′-gat cag ctc ggg cac ttt ag-3′(兩者均由上海生物工程技術(shù)有限公司合成)。RT-PCR操作按試劑盒說明進(jìn)行。PCR 反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性10min,活化Tag酶;94 ℃變性15s,60 ℃退火60s,72 ℃延伸30s,45個循環(huán)結(jié)束;PCR 產(chǎn)物以熒光TaqMan的方法檢測。計(jì)算2-ΔΔCT[13]值反映目的基因表達(dá)水平。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)軟件分析,計(jì)量數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。根據(jù)正態(tài)性及方差齊性檢驗(yàn)結(jié)果,多組間比較采用完全隨機(jī)設(shè)計(jì)因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD 檢驗(yàn),檢驗(yàn)水準(zhǔn)a=0.05。
2.1 行為觀察 實(shí)驗(yàn)前新生大鼠無行為異常的表現(xiàn)。置于缺氧環(huán)境中的新生大鼠,全部發(fā)生不同程度的異常行為改變,主要表現(xiàn)為:前期出現(xiàn)煩躁、多動、呼吸加深加快、全身紫紺,中期站立不穩(wěn)、全身不斷抖動、有時會出現(xiàn)夾尾左旋,后期煩躁消失,活動減少明顯,出現(xiàn)淡漠、激惹,部分可能出現(xiàn)驚厥。假手術(shù)組行為能力正常。
2.2 腦組織標(biāo)本外觀 假手術(shù)組新生大鼠腦標(biāo)本外觀正常,左右對稱;缺氧缺血組腦組織:2h肉眼觀無明顯改變,6h、12h缺血側(cè)標(biāo)本出現(xiàn)輕微的腦含水量增多,24h~48h出現(xiàn)明顯的腦含水量增多,大小不等,缺血側(cè)腦組織變小、萎縮;亞低溫組雙側(cè)腦組織大小基本正常,無明顯水腫、萎縮。
2.3 各組腦組織Bax mRNA 表達(dá)的比較(見表1)
表1 各組腦組織Bax mRNA 表達(dá)的比較(2-ΔΔCT)
HIBD 發(fā)生以凋亡為主的遲發(fā)性神經(jīng)元死亡。一般認(rèn)為,凋亡是一個需要能量的主動細(xì)胞死亡過程,具有階段性和程序性,在一定的條件下可逆,因此在凋亡的可逆階段抑制及減少缺氧缺血后神經(jīng)元的過度凋亡,可作為腦損傷干預(yù)的重要措施之一。HIBD 誘發(fā)的細(xì)胞毒性物質(zhì)作用于腦組織細(xì)胞,通過誘導(dǎo)前凋亡蛋白基因P53表達(dá),使BH3-only蛋白通過間接激活模式[14,15]活化促凋亡分子Bax,Bax/Bcl-2的比例出現(xiàn)失衡,促凋亡分子Bax在線粒體膜上形成寡聚物,可促使線粒體通透性轉(zhuǎn)換孔(PTP)開放,而PTP可作為線粒體的刺激感受器接受有關(guān)受體信號,包括膜間隙的腺嘌呤核苷酸信號和外膜的電位依賴性離子通道信號。PTP的開放會形成正反饋擴(kuò)大過程,導(dǎo)致線粒體結(jié)構(gòu)的破壞及其功能的紊亂,包括滲透壓改變及失衡、線粒體外基質(zhì)內(nèi)流、細(xì)胞器發(fā)生腫脹,致使線粒體的內(nèi)外膜依次裂解,釋放出含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶(caspase)蛋白激酶,進(jìn)而激活caspase,凋亡信號的正反饋?zhàn)饔帽患壜?lián)放大,從而誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。
本實(shí)驗(yàn)證實(shí)經(jīng)亞低溫(32 ℃~34 ℃)干預(yù)的新生大鼠,缺血側(cè)腦組織水腫程度較缺氧缺血組明顯降低,且Bax mRNA 的表達(dá)在假手術(shù)組表達(dá)無明顯變化;在缺氧缺血組2h即出現(xiàn)上升,12h達(dá)高峰,12h~48h維持在高峰;亞低溫干預(yù)組各時間點(diǎn)Bax mRNA 的表達(dá)水平較缺氧缺血組明顯降低:2h出現(xiàn)輕微上升,6h出現(xiàn)下降并達(dá)到最低水平,充分證實(shí)了亞低溫干預(yù)可以減少缺血側(cè)Bax mRNA 的表達(dá),從而降低腦組織細(xì)胞的凋亡,延長損傷細(xì)胞存活時間,對HIBD 的腦組織具有確切的保護(hù)作用。然實(shí)驗(yàn)后期即HIBD 后12h~48h,Bax 基因的表達(dá)出現(xiàn)微升高,其可能作用機(jī)制為亞低溫干預(yù)可上調(diào)HIF-1αmRNA 在腦組織的表達(dá)并延長其表達(dá)的時程[16],而引起具有保護(hù)作用的基因表達(dá)[17-19]。HIF-1α與p53結(jié)合,使p53穩(wěn)定并發(fā)揮促進(jìn)細(xì)胞凋亡的效應(yīng),即誘導(dǎo)Bax mRNA 表達(dá)微上調(diào),下調(diào)Bcl-2,Bax/Bcl-2的比例增加,促進(jìn)細(xì)胞凋亡以清除不適應(yīng)缺氧缺血的細(xì)胞。
Bax參與了新生大鼠HIBD,同時亞低溫干預(yù)能明顯降低腦組織Bax mRNA 表達(dá),減少神經(jīng)細(xì)胞的凋亡,清除不適應(yīng)缺氧缺血的細(xì)胞,對HIBD 后的腦組織具有肯定的保護(hù)作用。
[1] Goda N,Ryan HE,Khedive B,et al.Hypoxia-inducible factor-1alpha is essential for cell cycle arrest during hypoxia[J].Mol Cell Biol,2003,23(1):359-369.
[2] Gregg L,Semenza.Hypoxia-inducible factor 1:Regulator of mitochondrial[J].Biochim Biophys Acta,2011,1813(7):1263-1268.
[3] Tomoharu T,Takuhiko W,Hiroki D,et al.Persisting mild hypothermia suppresses hypoxia-inducible factor-1 protein synthesis and hypoxia-inducible factor-1-mediated gene expression[J].Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol,2010,298:R661-R671.
[4] 張嵐,邢達(dá).JNK/Bim/Bax途徑在TNF-α誘導(dǎo)分化PCI2細(xì)胞凋亡過程中的作用機(jī)制[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展,2010,37(4):370-380.
[5] Glickman PD,Wyatt JS,Azaparat D,et al.Selective head cooling mild systemic hypothermia after neonatal encephalopathy:Multicentre randomized trial[J].Lancet,2005,365:663-670.
[6] Shankaran S,Laptook AR,Ehrenkranz RA,et al.Whole-body hypothermia for neonates with hypoxic-ischemic encephalopathy[J].N Engl J Med,2005,353:1574-1584.
[7] 選擇性頭部亞低溫治療新生兒HIE多中心協(xié)作組.亞低溫治療新生兒缺氧缺血性腦病臨床多中心研究階段性療效分析[J].中國循證兒科雜志,2006,2(1):99-105.
[8] Zhang P,Cheng GQ.Research progress in mild hypothermia treatment of neonatal hypoxic-ischemic encephalopathy[J].CJCP,2013,15(10):918-922.
[9] Kessel I,Waisman D,Barzilai M,et al.Hypothermia as a treatment for hypoxic ischemic encephalopathy after neonatal asphyxiaupdate[J].Harefuah,2013,152(9):539-542;563.
[10] Buratti S,Lampugnani E,Tuo P,et al.Congenital diaphragmatic hernia repair during whole body hypothermia for neonatal hypoxic ischemic encephalopathy[J].J Perinatology,2012,32(12):981-984.
[11] Rice JE,Vannucci RC,Brierley JB.The influence of immaturity on hypoxic-ischemic brain damage in the rat[J].Ann Neurol,1981,9(2):130-141.
[12] 盧耀增.實(shí)驗(yàn)動物學(xué)[M].北京:北京醫(yī)科大學(xué).中國協(xié)和醫(yī)科大學(xué)聯(lián)合出版社,1995:189-190.
[13] Pfaffl MW.A new mathematical model for relative quantification in real-time RT-PCR[J].Nucl Acids Res,2001,29:2002-2007.
[14] Uren RT,Dewson G,Chen L,et al.Mitochondrial permeabilization relies on BH3ligands engaging multiple prosurvival Bcl-2 relatives,Not Bak[J].Cell Biol,2007,177(2):277-287.
[15] Willis SN,F(xiàn)letcher JI,Kaufmann T,et al.Apoptosis initiated when BH3lignds engage multiple Bcl-2homologs,not Bax or Bak[J].Science,2007,315(5813):856-859.
[16] 李偉,陰懷清,武師潤,等.亞低溫干預(yù)下新生大鼠缺氧缺血性腦病時HIF-1基因表達(dá)變化及意義[J].中西醫(yī)結(jié)合心腦血管病雜志,2013,10(7):847-848.
[17] Mu D,Chang YS,Vexler ZS,et al.Hypoxia-inducible factor-1alpha and erythropoietin up regulation with deferoxamine salvage after neonatal stroke[J].Exp Neurol,2005,195(2):407-415.
[18] Mu D,Jiang X,Shedon RA,et al.Regulation of hypoxia-inducible factor 1alpha and induction of vascular endothelial growth factor in a rat neonatal stroke model[J].Neurobiol Dis,2003,14(3):524-534.
[19] 趙琛,譚斐.低氧誘導(dǎo)因子-1激活的調(diào)節(jié)[J].生命科學(xué),2013,25(1):40-46.