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    響應面法優(yōu)化重組枯草芽孢桿菌生產(chǎn)纖維素酶EGA的研究

    2014-05-25 00:35:51張漫莉李晶虹吳程雨趙輔昆
    關鍵詞:酵母粉實驗設計枯草

    陳 濤,張漫莉,李晶虹,吳程雨,趙輔昆,陳 瑋

    (浙江理工大學生命科學學院,杭州310018)

    響應面法優(yōu)化重組枯草芽孢桿菌生產(chǎn)纖維素酶EGA的研究

    陳 濤,張漫莉,李晶虹,吳程雨,趙輔昆,陳 瑋

    (浙江理工大學生命科學學院,杭州310018)

    通過響應面優(yōu)化法(response surface methodology,RSM)對分泌表達纖維素酶FGA重組枯草芽孢桿菌的發(fā)酵條件進行優(yōu)化。利用Plackett-Burman實驗設計對淀粉、酵母粉、蛋白胨等8個因素對枯草芽孢桿菌產(chǎn)纖維素酶FGA的顯著影響與否進行評估分析,篩選得到淀粉、酵母粉和MgSO4·7H2O為3個顯著影響的因素,再利用Box-Behnken實驗設計對這3個因素進行進一步優(yōu)化,確定最佳培養(yǎng)基的配比為淀粉21 g/L,酵母粉11.26 g/L,蛋白胨25 g/L,MgSO4·7H2O 1.52 g/L,KH2PO40.395 g/L,NaCl 3.25 g/L,CaCl20.1 g/L,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.005 g/ L。在最優(yōu)條件下,利用小型發(fā)酵罐對重組菌進行擴大培養(yǎng),其最高酶活力達到1 264 U/L。

    纖維素酶FGA;枯草芽孢桿菌;響應面優(yōu)化;發(fā)酵

    0 引 言

    纖維素是由β-1′4-糖苷鍵連接的多聚葡萄糖,廣泛地分布于自然界中,如秸稈稻草、木材及各類廢棄紙張等都是纖維素的豐富來源。同時,纖維素又是自然界中分布最為廣泛的可再生資源,通過光合作用每年可產(chǎn)生超過100億t纖維素物質(zhì)貯存于植物干物質(zhì)內(nèi)。然而,這巨大的資源寶庫還未被有效開發(fā)與利用。通過生物降解的方法能有效地將纖維素物質(zhì)轉(zhuǎn)化成簡單糖,進而再發(fā)酵生產(chǎn)醇類物質(zhì),可作為一種潔凈的可再生資源[1-4]。

    纖維素的生物降解體系包含了各種組分的纖維素酶(cellulase)[5-6],其中最主要的為內(nèi)切β-1,4-葡聚糖酶(endo-1,4-β-glucanase,F(xiàn)C3.2.l.4)、外切β-1,4-葡聚糖酶(exo-1,4-β-D-glucannase,F(xiàn)C3.2.1.91)和β-1,4-糖苷酶(β-1,4-glucosidase,F(xiàn)C3.2.1.21)。通過各種酶的協(xié)同作用可將纖維素酶徹底降解成單糖。因此,纖維素酶的獲取是有效利用纖維素的關鍵之一。

    纖維素酶FGA是由福壽螺胃液中分離出的共生菌株BaciLLus sp.Strain AC-1所產(chǎn)的一種纖維素內(nèi)切酶。該酶具有較好的熱穩(wěn)定性且在酸性條件下相對穩(wěn)定,有較好的工業(yè)應用前景[7]。在前期工作中,利用了枯草芽孢桿菌[8]對其進行了重組表達,在此基礎上,本文利用相應面法[9-10]對已構建的重組菌株的發(fā)酵產(chǎn)酶條件進行了進一步優(yōu)化,并進行了小規(guī)模發(fā)酵放大實驗,為大規(guī)模生產(chǎn)纖維素酶FGA提供理論參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 菌株

    重組枯草芽孢桿菌p AUsp-ega/WB700,由本實驗室構建保存。

    1.1.2 試劑

    酵母粉、蛋白胨購自OXOID公司,羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)購自Sigma公司,其余試劑均為國產(chǎn)試劑。

    1.1.3 培養(yǎng)基

    LB培養(yǎng)基:NaCl 10 g/L,蛋白胨10 g/L,酵母粉5 g/L。

    枯草芽孢桿菌基礎表達培養(yǎng)基:蛋白胨20 g/ L,酵母粉10 g/L,可溶性淀粉20 g/L,KH2PO40.5 g/L,MgSO4·7H2O 1.0 g/L,CaCl20.1 g/L,NaCl 5 g/L,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.005 g/L。

    1.2 方法

    1.2.1 搖瓶培養(yǎng)操作

    將低溫保存的p AUsp-ega/WB700甘油菌在的LB培養(yǎng)基固體平板上進行劃板培養(yǎng)12 h。挑取單個菌落接種至含3 m L的LB培養(yǎng)基的試管中,在37℃,200 r/min搖床中培養(yǎng)8~12 h,以1∶100的比例轉(zhuǎn)接至含50 m L LB培養(yǎng)基的錐形瓶中,置于37℃,200 r/min搖床培養(yǎng)搖床培養(yǎng)24 h。收集發(fā)酵液于4℃,5 000 r/min離心5 min收集上清液,測定纖維素FGA酶活力。為保持菌株質(zhì)粒穩(wěn)定性,各級培養(yǎng)基中均含有終濃度為50μg/m L硫酸卡納霉素(Kanamycin)。

    1.2.2 發(fā)酵罐培養(yǎng)操作

    將篩選出的p AUsp-ega/WB700單克隆菌株先接種至含的3 mL的LB試管中,在37℃,200 r/min的搖床培養(yǎng)8~12 h;再按1∶100的比例接種至含50 mL LB培養(yǎng)基的錐形瓶中,在37℃,200 r/min培養(yǎng)12 h后轉(zhuǎn)接至含5 L優(yōu)化培養(yǎng)基的發(fā)酵罐中進行發(fā)酵培養(yǎng),在培養(yǎng)溫度為37℃,p H為7.0,轉(zhuǎn)速800 r/min,通氣量為10 L/min的穩(wěn)定條件進行發(fā)酵培養(yǎng),并間隔一定時間提取適量發(fā)酵液,離心取上清液測定酶活力。

    1.2.3 纖維素酶FGA酶活力測定

    羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)檢測法[11]:先將羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)溶于20 mM的p H 6.5的磷酸鈉緩沖液中,配成1%(w/v)的溶液;取180μL 1%的CMC-Na于65℃條件下預熱5 min;加入20 μL纖維素酶FGA酶液,在65℃進行酶活反應10 min;然后加入500μL DNS試劑煮沸5 min終止反應;迅速冷卻并加入500μL dd H2O;利用分光光度計檢測520 nm吸光值。以滅活的酶液進行空白對照。

    酶活力定義:在羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)檢測法中定義一個酶活力單位為1 min水解產(chǎn)生1μmol還原糖所需的酶量。

    1.2.4 Plackett-Burman實驗

    根據(jù)前期單因素實驗結果對包含空白在內(nèi)的共9個因素分別選取高水平(用“1”表示)和低水平(用“-1”表示)進行的Plackett-Burman實驗設計,各因素值見表1。

    表1 PIackett-Burman實驗設計

    1.2.5 Box-Behnken實驗

    在Plackett-Burman實驗設計的基礎上,對其中顯著影響產(chǎn)酶活力的因素重新編號,分別選取3個水平(高水平用“1”表示,中水平用“0”表示,低水平用“-1”表示)進行Box-Behnken實驗設計分析,詳細取值見表2。

    表2 Box-Behnken實驗設計

    2 結 果

    2.1 Plackett-Burman實驗設計結果

    按表1的取值進行Plackett-Burman實驗結果見表3。

    表3 PIackett-Burman實驗結果

    表3的結果通過Design Fxpert 7.0軟件對數(shù)據(jù)進行分析。當P值小于0.05時,該因素為顯著影響因素,由分析結果可知,A、B、H為3個顯著影響因素。R2(調(diào)整)為96.21%,表示此模型可以解釋96.21%的以上實驗結果,且可靠。

    2.2 Box-Behnken實驗設計結果

    Box-Behnken實驗數(shù)據(jù)結合軟件分析的結果見表4和表5,所選取的3個因素中各因素的交互作用見圖1-3圖。

    等高線圖越接近橢圓,說明這兩個因素之間的交互作用顯著,反之,若等高線圖接近圓形則說明這兩個因素之間的交互作用不顯著。由圖1-圖3的響應面和等高線圖可以直觀地反映出各因素之間的交互作用,其中,淀粉和酵母粉之間的交互作用最顯著。而圖1-圖3的響應面立體顯示的頂點即為產(chǎn)酶量的最大值,該頂點的坐標值則為對應最大產(chǎn)酶時各因素的取值,分別是A=0.2,B=0.08,C= 0.03,對應濃度為可溶性淀粉21 g/L,酵母粉11.26 g/L,MgSO4·7H2O 1.52 g/L,獲得最優(yōu)產(chǎn)產(chǎn)酶量為1 052 U/L。

    表4 Box-Behnken實驗數(shù)據(jù)

    表5 Box-Behnken實驗數(shù)據(jù)軟件分析結果

    圖1 淀粉和酵母粉影響產(chǎn)酶量的響應和等高線

    圖2 淀粉和MgSO4·7H2O影響產(chǎn)酶量的響應和等高線

    圖3 酵母粉和MgSO4·7H2O影響產(chǎn)酶量的響應和等高線

    2.3 發(fā)酵實驗

    在響應面優(yōu)化的基礎上采用小型發(fā)酵罐對重組菌進行擴大培養(yǎng)??刂茰囟葹?7℃、利用稀HCl和NaOH控制發(fā)酵過程p H為7,恒定轉(zhuǎn)速為800 r/ min,通氣量為10 L/min。取不同時間點檢測發(fā)酵液菌體密度和上清酶活力其結果如圖4示。

    圖4 發(fā)酵時間與菌體生長密度和纖維素酶FGA產(chǎn)酶活力的關系曲線

    菌體的生長在8 h內(nèi)呈現(xiàn)對數(shù)增長的趨勢,同時纖維素酶活力快速增長;發(fā)酵至8 h時達到最大產(chǎn)酶量1 264 U/L。之后,菌體生長逐漸進入平臺期,發(fā)酵體系中蛋白水解酶的逐漸積累,纖維素酶FGA被降解,酶活力持續(xù)降低。

    3 結 論

    纖維素酶作為一種高效的生物催化劑,其應用主要集中在飲料業(yè),發(fā)酵、釀造工業(yè),飼料工業(yè)和醫(yī)藥行業(yè)中,除此之外,纖維素酶在糖化發(fā)酵生產(chǎn)燃料乙醇的領域也有重要的應用。本文通過響應面優(yōu)化法對重組枯草芽孢桿菌pAUsp-ega/WB700產(chǎn)纖維素酶FGA進行發(fā)酵培養(yǎng)基配比進行優(yōu)化,通過Plackett-Burman實驗設計,從各培養(yǎng)基組分中篩選出著影響因素為淀粉、酵母粉和MgSO4·7H2O。并對這3個因素進一步使用Box-Behnken實驗設計方案,結合軟件分析,確定搖瓶培養(yǎng)的最優(yōu)產(chǎn)酶時各因素的取值分別為淀粉21 g/L,酵母粉11.26 g/L,蛋白胨25 g/L,MgSO4·7H2O 1.52 g/L,KH2PO40.395 g/L,NaCl 3.25 g/L,CaCl20.1 g/L,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.005 g/L。在此基礎上,采取發(fā)酵罐擴大培養(yǎng),相比普通的搖瓶實驗只能控制體系的溫度和轉(zhuǎn)速,發(fā)酵實驗過程中還可以精準的控制體系的p H、溶氧量和營養(yǎng)成份,發(fā)酵產(chǎn)纖維素酶FGA的最高酶活力可達1264 U/L,相比原始菌種的產(chǎn)酶活力提高了6倍[12],對提高纖維素酶表達量,廣泛應用于工業(yè)化生產(chǎn)具有重要的意義。

    參考文獻:

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    Research on CeIIuIase EGA Production through Optimization and Recombination of BaciIIus SubtiIis Based on Response Surface MethodoIogy

    CHEN Tao,ZHANG Man-Li,LI Jing-hong,WU Cheng-yu,ZHAO Fu-kun,CHEN Wei
    (School of Life Science,Zhejiang Sci-Tech University,Hangzhou 310018,China)

    Response Surface Methodology was used to optimize the fermentation conditions for secretory expression cellulose FGA and recombination of bacillus subtilis.Plackett-Burman experimental design was adopted to evaluate and analyze obvious effects of 8 factors(including starch,yeast powder and peptone)on producing cellulase FGA by bacillus subtilis.3 factors with obvious effects were screened out:starch,yeast powder and MgSO4·7H2O.Then,Box-Behnken experimental design was used to further optimize the 3 factors.Finally,the ratio of optimal culture medium was confirmed as follows:starch 21 g/ L,culture medium11.26 g/L,peptone 25 g/L,MgSO4·7H2O 1.52 g/L,KH2PO40.395 g/L,NaCl 3.25 g/L,CaCl20.1 g/L and FeSO4·7H2O 0.005 g/L.Under the optimal conditions,a small fermentation tank was used to enlarge cultivation of recombinant bacteria.The highest enzyme activity reached 1 264 U/L.

    cellulase FGA;bacillus subtilis;response surface methodology;fermentation

    Q786

    A

    (責任編輯:許惠兒)

    1673-3851(2014)04-0451-05

    2013-12-27

    浙江省大學生科技創(chuàng)新項目(2013R406021)

    陳 濤(1988-),男,浙江湖州人,碩士研究生,主要從事分子生物學和微生物發(fā)酵的研究。

    陳 瑋,電子郵箱:cw@zstu.edu.cn

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