叢恬鈔,張銘慧,何海燕,尹永強(qiáng),吳 紅,康 毅,婁建石
(天津醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院藥理學(xué)教研室,天津 300070)
心律失常(cardiac arrhythmia)是心血管系統(tǒng)疾病中最為常見也最為嚴(yán)重的病癥之一。據(jù)統(tǒng)計(jì),中國每年約60萬人死于心源性猝死,其中90%以上由室性心動(dòng)過速、心室或心房顫動(dòng)所致[1]。美國每年約39萬人死于惡性心律失常[2]。心律失常不但會(huì)加重既有的心臟疾病,還可誘發(fā)心源性猝死,嚴(yán)重威脅人類健康。隨著研究的深入,越來越多的心律失常被證實(shí)與心臟離子通道異常有關(guān)[3],而在心肌細(xì)胞離子通道中,鈉通道作為Ⅰ類抗心律失常藥物的作用靶點(diǎn),可影響動(dòng)作電位形態(tài),與早期后除極密切相關(guān),其異常將會(huì)導(dǎo)致心律失常的發(fā)生[4]。盡管我們對(duì)于心肌鈉通道的臨床、基因以及生理特征進(jìn)行了廣泛的探索,但經(jīng)典的非選擇性鈉通道阻滯劑在臨床上應(yīng)用有限,以鈉通道為靶點(diǎn)的治療手段一直進(jìn)展緩慢[5]。因此,揭示心律失常發(fā)生的深層機(jī)制,探索安全有效的治療藥物是該領(lǐng)域的重點(diǎn)與難點(diǎn)。
?;撬徭V配合物(taurine-magnesium coordination compound,TMCC)是本研究室合成的配合物,既往的實(shí)驗(yàn)研究證實(shí),其對(duì)多種因素誘發(fā)的實(shí)驗(yàn)性心律失常與觸發(fā)活動(dòng)有確切的防治效果[9]。細(xì)胞水平上的研究[10-15]亦證明,該配合物對(duì)正常狀態(tài)下與藥物誘發(fā)的異常鈉、鉀、鈣電流均有作用,提示該配合物或具有廣泛的抗心律失常作用,但其作用機(jī)制尚有待進(jìn)一步闡明。本實(shí)驗(yàn)通過建立細(xì)胞水平上缺氧/復(fù)氧致心律失常模型,觀察TMCC對(duì)鈉離子通道電流的作用,旨在進(jìn)一步探索其抗心律失常的機(jī)制。
1.1 材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 健康成年Wistar大鼠,♂,體質(zhì)量220~250 g,合格證號(hào):SCXK(軍)2007-0001。
1.1.2 藥品與試劑 HEPES、EGTA、Mg-ATP、Na2ATP、膠原酶Ⅱ等購自Sigma公司。TMCC由天津醫(yī)科大學(xué)化學(xué)教研室合成。
1.1.3 儀器 膜片鉗儀,MultiClamp 700B,USA;數(shù)-模轉(zhuǎn)換器,DigiData1440A,USA;倒置顯微鏡,IX51,Japan;三維操縱儀,MP-225,USA;微電極拉制儀,P-97,USA;恒流泵,Peri-Star,臺(tái)灣;酸度計(jì),PHS-3C,上海精密科學(xué)儀器有限公司;Millipore純水系統(tǒng),USA。
1.1.4 液體的制備 無鈣臺(tái)氏液(mmol·L-1):NaCl 136,KCl 5.4,MgCl21.0,NaH2PO40.33,HEPES 10,Glucose 10,用 NaOH調(diào) pH至7.4。細(xì)胞保存液(KB液,mmol·L-1):L-谷氨酸 70,?;撬?15,KCl 30,KH2PO410,MgCl20.5,HEPES 10,EGTA 0.5,Glucose 10,用KOH調(diào)pH至7.4。記錄鈉通道電流(INa)的正常細(xì)胞外液(mmol·L-1):氯化膽堿 120,NaCl 25,CsOH 4,CaCl20.1,CoCl22,MgCl21,HEPES 10,Glucose 10,用 CsOH調(diào) pH至7.35。記錄鈉通道電流的電極內(nèi)液(mmol·L-1):CsOH 140,NaCl10,EGTA 5,HEPES 5,Na2ATP 5,用CsOH調(diào)pH至7.3。以上液體使用前通以純氧20 min。記錄鈉通道電流的模擬缺氧細(xì)胞外液(mmol·L-1):去除 Glucose,其他成分同正常外液,用CsOH結(jié)合鹽酸調(diào)pH至6.8,并通以100%氮?dú)?0 min以上。
1.2 方法
1.2.1 單個(gè)大鼠心肌細(xì)胞的分離 用25%烏拉坦將大鼠麻醉,仰臥位固定于鼠臺(tái)上,迅速剪開胸腔暴露心臟,從主動(dòng)脈根部離斷取出心臟,放入4℃無鈣臺(tái)氏液中,去除脂肪及結(jié)締組織。將主動(dòng)脈逆行插管連接于Langendorff灌流裝置上(恒溫37℃),以無鈣臺(tái)氏液8 ml·min-1連續(xù)灌流5 min,洗去心臟殘血后,改用50 m l含10 mg膠原酶Ⅱ與15 mg牛血清白蛋白的無鈣臺(tái)氏液進(jìn)行循環(huán)灌流。隨著灌流的進(jìn)行,流出液體逐漸變得粘稠,心肌的顏色逐漸變淺、透明,心臟體積逐漸膨大、松軟。此時(shí)將心臟自左心室分段剪去心肌組織,置于裝有KB液的試管中,用吸管輕輕吹打使之分散成單個(gè)細(xì)胞,分裝,置于4℃冰箱中穩(wěn)定2 h待用。
1.2.2 鈉通道電流INa的記錄 應(yīng)用全細(xì)胞膜片鉗技術(shù)記錄單細(xì)胞離子電流。所用微電極用兩步拉制儀拉制而成,微電極充電極液后,電阻在2~4 MΩ之間。電流信號(hào)經(jīng)MultiClamp 700B膜片鉗放大器、DigiData1440A數(shù)-模轉(zhuǎn)換器及Pclamp10.1采集、儲(chǔ)存及分析。將細(xì)胞懸液置于倒置顯微鏡工作平臺(tái)容積為1 ml的浴槽中,待細(xì)胞貼壁后,用鈉外液進(jìn)行灌流,流速1 ml·min-1。選用大小相近、紋理清晰的桿狀細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。待高阻封接后,進(jìn)行電極電容補(bǔ)償。負(fù)壓或高壓脈沖破膜,進(jìn)行膜電容、串聯(lián)電阻及漏電流補(bǔ)償,平衡5 min,待電極內(nèi)鈉內(nèi)液與細(xì)胞內(nèi)液充分交換后,進(jìn)行膜電流記錄。膜電流的大小以電流密度及單位膜電容的膜電流表示。
1.2.3 實(shí)驗(yàn)分組與造模 實(shí)驗(yàn)分為正常對(duì)照組、缺氧/復(fù)氧模型組(H/R組)、H/R+100μmol·L-1TMCC組、H/R+200μmol·L-1TMCC組、H/R+400μmol·L-1TMCC組、H/R+24.24μmol·L-1胺碘酮組。將分離的細(xì)胞置于浴槽中,待貼壁后,先用記錄鈉電流(INa)的細(xì)胞外液進(jìn)行灌流,封接形成全細(xì)胞記錄模式后,平衡5 min,待電極內(nèi)液與細(xì)胞內(nèi)液充分交換后,進(jìn)行膜電流記錄,定義為正常細(xì)胞INa。然后用缺氧外液沖洗替換浴槽中的正常外液,15 min后再以正常有氧外液沖洗替換缺氧外液,5 min后記錄為缺氧/復(fù)氧組INa。H/R+TMCC組及H/R+胺碘酮組則分別在有氧外液中加入不同濃度的TMCC或胺碘酮進(jìn)行記錄。形成全細(xì)胞構(gòu)型后,在電壓鉗模式下記錄電流。將鉗制電位固定于-120 mV,指令電壓從-120 mV以10 mV為步階逐步躍至+30 mV,脈沖持續(xù)時(shí)間100 ms,可記錄到大鼠心室肌細(xì)胞的INa電流。細(xì)胞外液中加入2 mmol·L-1的CoCl2以阻斷鈣電流,細(xì)胞內(nèi)液中用Cs+代替K+,以去除鉀電流的影響。
1.2.4 穩(wěn)態(tài)激活曲線 以不同電壓水平的INa峰值與相應(yīng)的膜電位作圖,繪制INa電流I-V曲線,將I-V曲線的結(jié)果轉(zhuǎn)化為膜電導(dǎo)(G),對(duì)條件刺激電壓作圖,然后采用 Boltzman方程 G/Gmax=1/{1+exp[(V-V1/2)/K]}進(jìn)行擬合,得到 INa穩(wěn)態(tài)激活曲線。式中Gmax為最大膜電導(dǎo),V1/2為半數(shù)激活電壓,K為斜率參數(shù)。
1.2.5 穩(wěn)態(tài)失活曲線 采用雙脈沖刺激法測(cè)定穩(wěn)態(tài)失活曲線。保持電位-80 mV施予50 ms,步階10 mV,-150 mV~+30 mV系列條件脈沖刺激,每一條件脈沖后緊跟一固定去極化至-30 mV,25 ms的測(cè)試脈沖。以電流的相對(duì)值(I/Imax)對(duì)條件脈沖電壓作圖,得出INa的失活曲線。用Boltzman方程I/Imax=1/{1+exp[(V-V1/2)/K]}進(jìn)行擬合,得出半數(shù)失活電壓V1/2和失活曲線斜率K,式中I和Imax分別為不同測(cè)試脈沖電壓下電流大小和最大電流。
1.2.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 在Clampfit10.0軟件中將記錄的原始數(shù)據(jù)進(jìn)行處理分析,結(jié)果以表示。運(yùn)用SPSS 17.0軟件進(jìn)行單因素方差分析,組間差異用LSD檢驗(yàn)。
2.1 TMCC,胺碘酮對(duì)大鼠心肌細(xì)胞缺氧/復(fù)氧損傷模型INa峰值的影響 形成全細(xì)胞構(gòu)型后,在電壓鉗模式下記錄電流(Fig 2a-2f)。缺氧/復(fù)氧、各濃度TMCC及胺碘酮作用后,鈉電流峰值的變化見Fig 1。以去極化的電位為橫坐標(biāo),相應(yīng)的最大電流密度為縱坐標(biāo)繪制鈉電流的I-V曲線(Fig 2g)。結(jié)果表明,缺氧/復(fù)氧使 INa峰值從(56.89±2.07)pA/pF減小至(35.05±1.52)pA/pF(n=6,P<0.01),I-V曲線上移,模型制備成功。200、400μmol·L-1TMCC可使 INa峰值部分恢復(fù)(n=6,P<0.01),I-V曲線下移,INa電流恢復(fù),其作用呈濃度依賴性,且強(qiáng)于24.24μmol·L-1胺碘酮。
Fig 1 Effects of TMCC and am iodarone on peak I Na in rat ventricular m yocytes subjected to hypoxia/reoxygenation**P<0.01 vs control group;##P<0.01 vs H/R group.
2.2 TMCC,胺碘酮對(duì)大鼠心肌細(xì)胞缺氧/復(fù)氧損傷模型INa穩(wěn)態(tài)激活曲線的影響 與正常對(duì)照組相比,缺氧/復(fù)氧使半數(shù)激活電壓 V1/2減?。‵ig 3a,n=6,P<0.05),激活曲線(Fig 3c)右移,激活減慢。各濃度TMCC組及胺碘酮組與模型組相比,V1/2和激活曲線斜率K值差異均無顯著性,給藥組間差異也無顯著性。
2.3 TMCC,胺碘酮對(duì)大鼠心肌細(xì)胞缺氧/復(fù)氧損傷模型INa穩(wěn)態(tài)失活曲線的影響 與正常組相比,缺氧/復(fù)氧模型組使半數(shù)失活電壓 V1/2增大(Fig 3b,n=6,P<0.05),失活曲線(Fig 3d)左移,失活加快。200、400μmol·L-1TMCC和 24.24μmol·L-1胺碘酮可使增大的半數(shù)失活電位降低(Fig 3b),對(duì)抗缺氧/復(fù)氧所致的失活提前,使左移的曲線部分恢復(fù)。
鈉通道在生理學(xué)的發(fā)展史中占據(jù)著特殊重要的地位。1952年,Hodgkin和Huxley在烏賊神經(jīng)軸突闡明了鈉通道的基本特性,由此引發(fā)現(xiàn)代離子通道病理論[16]。在心肌細(xì)胞中,鈉通道主要存在于細(xì)胞膜上,是心肌細(xì)胞興奮時(shí)第一個(gè)被激活的離子通道,是快速反應(yīng)的基礎(chǔ),也是其他通道開放或離子流動(dòng)的前提。在哺乳動(dòng)物心肌細(xì)胞中,鈉通道的密度最大,大密度鈉通道的存在對(duì)動(dòng)作電位的快速去激化(即0相)有重要意義,保證了心肌細(xì)胞的正常電活動(dòng)。心肌細(xì)胞的鈉通道由核心α亞基與輔助性β1、β2亞基共同構(gòu)成。Nav1.5是形成電壓門控的心肌鈉通道α亞基孔隙的膜內(nèi)在蛋白,是人類心臟主要的鈉離子通道類型,由SCN5A基因編碼。鈉通道數(shù)量上的減少、SCN5A基因的突變引起的分子結(jié)構(gòu)異常及失活不完全與多種心律失常疾病相關(guān),包括長QT綜合征、Brugada綜合征、病竇綜合征以及進(jìn)行性心臟傳導(dǎo)阻礙和心房阻滯[16]??梢?,對(duì)鈉離子通道研究的意義重大。目前,已有學(xué)者將SCN5A導(dǎo)入HEK細(xì)胞(人胚胎腎細(xì)胞),得到純Nav1.5離子流(INa)的各項(xiàng)參數(shù)[18],而隨著研究的深入,Nav1.5的結(jié)構(gòu)與功能也越來越清晰[19],以便更深層次的探索。
缺血/再灌注損傷可以刺激心室結(jié)構(gòu)與功能重塑,引起心肌細(xì)胞各種離子通道和離子交換體的激活,導(dǎo)致心肌細(xì)胞離子和能量失衡[21],從而影響正常心肌細(xì)胞的功能。本實(shí)驗(yàn)采用缺氧液和復(fù)氧液灌注,制備缺氧/復(fù)氧模型,旨在模擬缺血/再灌注這一過程。實(shí)驗(yàn)選用缺氧15 min后復(fù)氧,結(jié)果顯示缺氧時(shí)鈉電流減少,復(fù)氧后鈉電流進(jìn)一步降低。有研究表明[22-25],隨著模擬缺氧液灌流時(shí)間延長(灌流10 min與20 min),INa減少,通道激活和失活時(shí)間延長,隨再灌注激活時(shí)間恢復(fù)較快,但I(xiàn)Na失活時(shí)間并不立即恢復(fù)。這與本實(shí)驗(yàn)研究結(jié)果一致。
Fig 2 Effects of TMCC and am iodarone on I Na in rat ventricular m yocytes subjected to hypoxia/reoxygenationa:Control;b:H/R;c:H/R+100μmol·L-1;d:H/R+200μmol·L-1;e:H/R+400μmol·L-1;f:H/R+24.24μmol·L-1 Amiodarone;g:I-V curve.
Fig 3 Effects of TMCC(100,200,400μmol·L-1),am iodarone(24.24μmol·L-1)on I Na steady-state activation and inactivation in rat ventricular m yocardiocytes subjected to hypoxia/reoxygenationA:V1/2 and K act of steady-state activation;B:V1/2 and K inact of steady-state inactivation;C:steady-state activation curve;D:steady-state inactivation curve.*P<0.05,**P<0.01 vs control group;#P<0.05,##P<0.01 vs H/R group.
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,缺氧/復(fù)氧使INa峰值減小,IV曲線上移,TMCC(200、400μmol·L-1)能濃度依賴性地恢復(fù)由缺氧/復(fù)氧損傷引起的INa減小,使I-V曲線下移,且無平行移動(dòng),基本不改變曲線形狀,仍保持原有的電壓依賴性關(guān)系,提示TMCC在不同膜電位水平對(duì)INa的作用是一致的。INa的動(dòng)力學(xué)研究結(jié)果顯示,缺氧/復(fù)氧使激活曲線右移,激活減慢;使失活曲線左移,失活加快。TMCC(200、400μmol·L-1)和胺碘酮(24.24μmol·L-1)對(duì)激活的影響差異無顯著性,但可恢復(fù)左移的失活曲線,使鈉通道的穩(wěn)態(tài)失活過程減慢。由此可推斷,TMCC對(duì)抗缺氧/復(fù)氧鈉抑制的作用或與減慢失活有關(guān)。此前有研究發(fā)現(xiàn)TMCC對(duì)正常細(xì)胞的鈉通道有阻滯作用[10],然而在缺氧/復(fù)氧模型中,TMCC并未加劇損傷對(duì)鈉通道的抑制,反而在一定程度上恢復(fù)了鈉電流,提示TMCC對(duì)鈉通道的作用可能與鈉通道的狀態(tài)有關(guān),即在鈉通道正常開放時(shí)呈抑制作用,而鈉通道過度抑制時(shí)則表現(xiàn)為興奮作用,使失衡的鈉通道恢復(fù)或接近原有的平衡狀態(tài)。
胺碘酮是目前被認(rèn)為療效較好的廣譜抗心律失常藥物,但其復(fù)雜的毒副作用在一定程度上限制了其應(yīng)用[26]。本實(shí)驗(yàn)中,胺碘酮與TMCC作用一致,可對(duì)抗缺氧/復(fù)氧引起的鈉電流減少,作用與200 μmol·L-1的TMCC相當(dāng)。然而本室前期的實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),胺碘酮會(huì)加重哇巴因?qū)︹c通道的抑制,而TMCC則可以恢復(fù)過度抑制的鈉通道[15]。根據(jù)“最佳靶點(diǎn)學(xué)說”,一個(gè)好的抗心律失常藥物應(yīng)對(duì)至少3種以上的心律失常靶點(diǎn)有效,且對(duì)單一通道的作用不過強(qiáng),以減少致心律失常效應(yīng)。TMCC對(duì)心肌鈉、鉀、鈣離子通道均有一定的作用,能夠使病理?xiàng)l件下的細(xì)胞重獲平衡,利于心律失常的治療且降低致心律失常的風(fēng)險(xiǎn),符合“最佳靶點(diǎn)學(xué)說”的要求。
在心肌細(xì)胞中,除了主要的快速INa,還存在其他較弱的鈉離子流成分,即Na+晚電流(INaL)。近年來研究顯示,在某些病理情況下,由于鈉通道快速開放后更加不能失活,即引起INaL的增強(qiáng)、心肌復(fù)極儲(chǔ)備能力下降,易引發(fā)早后除極(EAD),導(dǎo)致心律失常。此外,INaL的增強(qiáng)還可通過鈉-鈣交換,使Ca2+內(nèi)流持續(xù)增多,易導(dǎo)致鈣超載,使心臟功能受損。由于INaL對(duì)心律失常的發(fā)生以及藥物抗心律失常作用都有重要意義,抑制INaL已成為心律失常治療的新方向,因而也愈加受到重視[27]。但是,TMCC對(duì)這種晚鈉通道是否有影響及其機(jī)制還亟待探索。
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