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    小鼠原位肝移植操作技術(shù)改良進(jìn)展

    2014-04-05 14:48:59楊超崔子林張雅敏天津醫(yī)科大學(xué)一中心臨床學(xué)院天津3009天津市第一中心醫(yī)院肝膽外科天津3009
    實(shí)用器官移植電子雜志 2014年2期
    關(guān)鍵詞:肝移植膽管套管

    楊超,崔子林,張雅敏(.天津醫(yī)科大學(xué)一中心臨床學(xué)院,天津 3009;.天津市第一中心醫(yī)院肝膽外科,天津 3009)

    隨著移植技術(shù)的不斷進(jìn)步,肝移植已經(jīng)成為治療終末期肝病的重要手段,對肝移植方面的相關(guān)研究也日益增多,因此,肝移植動物模型的建立也變得越來越重要,本文對近年來小鼠原位肝移植(OLT)模型建立的步驟改良及手術(shù)注意事項進(jìn)行綜述。

    大鼠OLT模型是在1973年最先由Lee等[1]成功建立的,1979年Kamada等[2]提出的“雙袖套管”方法使得大鼠OLT模型的建立更進(jìn)一步發(fā)展,隨著顯微外科技術(shù)水平的提高,多種移植模型的建立得到廣泛研究[3]。1991年,Qian等[4]在Kamada法的基礎(chǔ)上首次成功建立小鼠OLT模型,從此各移植中心陸續(xù)開展了對小鼠肝移植相關(guān)技術(shù)的研究。與以大鼠為實(shí)驗(yàn)對象的研究不同,小鼠肝移植模型在移植免疫方面有著其獨(dú)特的優(yōu)勢[5-6]。各種基因敲除[7]和轉(zhuǎn)基因小鼠[8]模型的成功建立及大量特異性的單克隆抗體的出現(xiàn)[9], 給肝移植后免疫學(xué)的研究帶來了更為廣闊的發(fā)展天地,與此同時,小鼠肝移植模型的成功建立就變得尤為重要。

    1 Qian等[4]報道的經(jīng)典小鼠OLT模型

    Qian等[4]使用 B6AF1、C57BL/6、和 BALB/c近交系雄性小鼠,在4.0~6.4倍放大倍數(shù)的手術(shù)顯微鏡下,將小鼠固定,用甲氧氟烷麻醉,備皮消毒,取腹部正中切口,充分暴露手術(shù)視野,橫斷膽管,結(jié)扎幽門靜脈、脾靜脈、右腎上腺靜脈和右腎靜脈。由陰莖背靜脈緩慢注射0.3 ml乳酸林格液溶解稀釋的肝素(100 U)進(jìn)行肝素化。在用動脈夾夾閉胸主動脈以及已經(jīng)分離的接近膈肌的肝上下腔靜脈(SHVC)后,用1 ml冷的乳酸林格液通過腹主動脈灌注肝臟,用冷的乳酸林格液頻繁沖洗肝臟和周圍的組織來保持肝臟低溫,分離肝下下腔靜脈(IHVC)至左腎靜脈水平。

    離斷血管,取肝臟并放置在一個盛有冷的乳酸林格液的容器中,結(jié)扎膽囊管并摘除膽囊,IHVC和門靜脈(PV)插入泰夫龍?zhí)坠埽↖HVC用外徑為1.7 mm的套管,PV用外徑1.2 mm的套管)。

    受體手術(shù)的麻醉、消毒與供體手術(shù)相同。以IHVC、PV、SHVC的順序夾閉血管并離斷。當(dāng)移除肝臟后,將移植肝植入原位,用10-0尼龍縫線吻合SHVC。將移植肝PV套管插入已經(jīng)切開前壁的受體PV并扎緊,移除SHVC和PV血管鉗開放血管。用同樣方法插入IHVC的套管,不做肝動脈重建,用長度超過4 mm的聚乙烯導(dǎo)管支架完成膽管連續(xù)性重建,用乳酸林格液補(bǔ)充術(shù)中失血,最后分兩層連續(xù)縫合關(guān)腹。一次性肌肉注射5 mg頭孢孟多酯鈉和60 kU比西林,將小鼠放置在取暖燈下直到蘇醒,隨意進(jìn)食和飲水。

    2 小鼠OLT改良方法

    在Qian等[4]成功建模的基礎(chǔ)上,國內(nèi)外許多學(xué)者成功復(fù)制了小鼠肝移植模型,并在其基礎(chǔ)上進(jìn)行了改良,現(xiàn)將部分成功建模的方法步驟綜述如下。

    通常使用的小鼠品系為C57BL/6、BALB/c和昆明小鼠等雄性小鼠,此外根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康牟煌?,可以使用基因工程改良后的小鼠。常用的麻醉方法為氣體持續(xù)吸入麻醉,麻醉劑可選擇乙醚、氯胺酮配合乙醚、異氟醚(又名異氟烷)等。麻醉前也可以皮下注射0.04 mg/kg的阿托品作為氣體麻醉前的引導(dǎo)用藥[10]。使用氣體麻醉可以很好地控制麻醉藥的劑量,特別是在受者手術(shù)無肝期的時候,可迅速、精確地調(diào)整劑量,維持穩(wěn)定的麻醉狀態(tài)。此外也可腹腔注射戊巴比妥鈉(60 mg/kg)[10]和氯胺酮等麻醉藥,但是受體在無肝期時候容易出現(xiàn)死亡,術(shù)后死亡率也較高。手術(shù)顯微鏡可以選用單人雙目或雙人雙目顯微鏡;IHVC套管可采用6F動脈穿刺鞘管或7F動脈穿刺鞘管牽拉制成的導(dǎo)管或16G留置針鞘管;PV套管可采用6F動脈穿刺鞘管或5F動脈穿刺鞘管牽拉制成的導(dǎo)管或28G留置針鞘管;膽管支架可采用一次性硬膜外導(dǎo)管牽拉制成的導(dǎo)管或外徑為0.61 mm聚乙烯套管加工制成的導(dǎo)管。

    將小鼠固定,可使用聚維酮碘為腹部手術(shù)區(qū)域消毒[11]。為了使暴露更加充分,通常采取上腹全橫切的切口,也可使用上腹部十字切口開腹。一個血管鉗夾住劍突并向頭側(cè)牽拉固定,可根據(jù)切口不同選擇2個或4個小拉鉤,同時可以使用腰橋?qū)⑹荏w背部墊高,以充分暴露手術(shù)視野。首先橫斷膽管,插入預(yù)先準(zhǔn)備的膽管支架,結(jié)扎幽門靜脈、脾靜脈、右腎上腺靜脈和右腎靜脈,切斷右腎上腺靜脈時可采用電凝切斷以減少術(shù)中出血[12]。于陰莖背靜脈注射125 U/ml肝素生理鹽水0.5 ml或在IHVC注入含肝素鈉100 U的生理鹽水0.4 ml進(jìn)行肝素化[13]。灌注液可選擇4 ℃乳酸林格液或4 ℃威斯康星大學(xué)保存液(UW液),有些研究表明,移植肝保存在UW液中18小時,不會產(chǎn)生顯著的損傷和移植肝的衰竭[14]。灌注穿刺部位可選擇下段腹主動脈,以30~10 ml/h的速度灌注2~3 ml灌注液;或者灌注穿刺部位選擇PV,緩慢灌注4 ml灌注液;亦或選擇腹腔干,通過輸液泵以1.5 ml/min的速度緩慢灌注20 ml灌注液。肝臟和周圍的組織通過用冷的乳酸林格液頻繁沖洗來保持低溫[15]。緊貼左腎靜脈上方剪斷IHVC,在脾靜脈上方離斷PV,在膽管支架下方離斷膽總管,結(jié)扎并離斷食管與肝臟之間的交通支;緊貼膈肌剪斷SHVC,取下的肝臟放置在一個盛有冷的乳酸林格液的容器以備進(jìn)一步處理。

    供肝的修整通常選用類似Kamada大鼠OLT的“雙袖套管法”修整肝臟,基本不采用“三袖套管法”。結(jié)扎膽囊管,摘除膽囊。

    受體手術(shù)可通過腹部正中切口進(jìn)腹或上腹全橫切,充分暴露手術(shù)視野。結(jié)扎分離膽管、肝動脈、右腎上腺靜脈,切斷肝周韌帶并且用結(jié)扎線繞過SHVC,用這根線來把肝臟和膈肌分開便于在SHVC放置一把Santinsky鉗。在肝臟移除之前,在PV分叉處注入常溫生理鹽水0.2~0.3 ml,當(dāng)準(zhǔn)備移除肝臟時,以IHVC、PV、SHVC的順序夾閉并離斷血管。原位置入供肝,用10-0尼龍縫線吻合SHVC實(shí)現(xiàn)重建,具體可選擇的方法有“一針法”外翻縫合或端端連續(xù)外翻縫合或雙針連續(xù)水平褥式外翻縫合,前后壁均自左向右縫合。在閉合SHVC前排盡血管內(nèi)氣泡,袖套法吻合門靜脈, 松開PV及SHVC止血夾,結(jié)束無肝期,無肝期時間要小于20分鐘。同法吻合IHVC。將供體膽管支架置入受體膽總管內(nèi)結(jié)扎固定,大網(wǎng)膜覆蓋。

    通常不做肝動脈重建,但也有學(xué)者進(jìn)行肝動脈重建,其方法為分別在腹腔干上方及髂總動脈處分離一段腹主動脈,供肝的肝動脈與受體腹主動脈行端側(cè)吻合,用已準(zhǔn)備好的膽管支架插管固定來完成膽管連續(xù)性重建。用38℃生理鹽水或甲硝唑沖洗腹腔,術(shù)中失血可選擇經(jīng)陰莖背靜脈注射0.2 ml乳酸林格液,分兩層連續(xù)縫合關(guān)腹。術(shù)后3小時燈照保暖,可不給予止痛、抗炎治療,或者術(shù)后3天內(nèi)腹腔注射頭孢地嗪鈉100 mg/(kg·d)或肌肉注射80 kU青霉素。單籠喂養(yǎng),自由進(jìn)水、進(jìn)食,不給予免疫抑制劑。

    3 術(shù)中及術(shù)后操作注意事項

    3.1 小鼠的肝臟極為嬌嫩,反復(fù)翻動可能造成不同程度的機(jī)械損傷及微血栓形成,同時激活Kuffer細(xì)胞,增加其對缺血/再灌注(I/R)損傷的敏感性,進(jìn)而加重I/R損傷[16],因此,分離肝周韌帶時動作要輕柔,可以嘗試沿順時針方向進(jìn)行分離以減少對肝臟的翻動。

    3.2 分離供肝IHVC時,可以嘗試分離至髂靜脈分叉上方水平[17],這樣可以增加IHVC的長度,方便套管。

    3.3 供肝灌注時, 應(yīng)注意灌注壓力恰當(dāng),一般以30~10 ml/h為宜;灌注壓力過高可引起肝細(xì)胞損傷,導(dǎo)致肝細(xì)胞水腫進(jìn)而影響供肝質(zhì)量[18]。灌注時要均勻、緩慢。研究表明,供肝膽道系統(tǒng)的充分灌注可降低膽道并發(fā)癥的發(fā)生率[19]。

    3.4 小鼠SHVC管壁薄易碎,吻合難度大, 可使用10-0尼龍縫線“一針法”[20]連續(xù)外翻縫合,僅需縫合7或8針,耗時6~8分鐘,顯著縮短了縫合時間及無肝期,其次,血管內(nèi)膜外翻有利于保持吻合面平整,防止血栓形成,還可以減少吻合口漏的發(fā)生。

    3.5 在冷缺血時間里,I/R損傷嚴(yán)重[21],所以應(yīng)盡快縮短冷缺血時間。熱缺血時間小于20分鐘可以提高移植后存活率[22]。PV重建后即開放并同時開放SHVC,可縮短受體無肝期及供肝熱缺血時間。

    3.6 膽道重建后,用大網(wǎng)膜覆蓋膽管支架可以減少膽瘺的發(fā)生[14]。

    3.7 盡量縮短無肝期,無肝期過長可以加重I/R損傷,造成內(nèi)毒素樣綜合征以及嚴(yán)重酸中毒[23]。

    3.8 肝動脈系統(tǒng)是供肝側(cè)膽管最主要的血供來源[24]。臨床研究證實(shí):肝動脈血栓形成可引起膽道缺血狹窄、膽道壞死、膽瘺、菌血癥或膿腫形成等, 是導(dǎo)致移植物肝功能喪失和受體死亡的常見原因[25]。有些學(xué)者認(rèn)為動脈化是小鼠肝移植物存活的必要條件,重建有利于提高受體存活率[26-27],并且有學(xué)者報道了通過支架重建的新方法[28];也有學(xué)者認(rèn)為, 重建對受體存活率無影響[29]。

    3.9 盡量減少手術(shù)時間有益于受體術(shù)后復(fù)蘇,據(jù)報道,受體和供體平均手術(shù)時間最好分別控制在22~23分鐘和45分鐘左右[30]。

    4 總 結(jié)

    Qian等[4]所報道的小鼠OLT方法1周存活率為83%,近年來國內(nèi)外學(xué)者對該方法不斷完善,其1周存活率有所提高。雖然小鼠OLT模型技術(shù)難度大,對實(shí)驗(yàn)室條件、實(shí)驗(yàn)者顯微外科技術(shù)要求高,但是其對免疫學(xué)研究的優(yōu)越性使得該模型的建立仍然有十分重要的意義。通過不斷的實(shí)踐與總結(jié),相信最終該模型的成活率還會進(jìn)一步提高。

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