陳倫佳,王婧,韓舜愈,宋蕤,陳凱
(甘肅農業(yè)大學食品科學與工程學院,甘肅蘭州730070)
不同條件對炭黑曲霉產赭曲霉毒素A能力的影響
陳倫佳,王婧,韓舜愈*,宋蕤,陳凱
(甘肅農業(yè)大學食品科學與工程學院,甘肅蘭州730070)
為了解一株分離自新疆葡萄園的炭黑曲霉菌株在不同培養(yǎng)條件下產生赭曲霉毒素A(OTA)的能力,試驗采用孟加拉紅培養(yǎng)基,利用高效液相-熒光法對OTA進行定量檢測,在單因素試驗的基礎上,采用響應面法優(yōu)化產毒條件。結果表明,對該菌株產生OTA的條件影響從大到小依次為葡萄糖質量濃度、乙醇體積分數、SO2質量濃度。最優(yōu)產毒條件:在溫度28℃條件下,葡萄糖質量濃度92.26g/L、SO2質量濃度8.26mg/L、乙醇體積分數0.05%。在此條件下,OTA產量為7.427ng/mL。
赭曲霉毒素A;炭黑曲霉CXT11;產毒條件;響應面
赭曲霉毒素A(ochratoxin A,OTA)是曲霉菌屬(Aspergillus)和青霉菌屬(Penicillium)的某些種產生的次級代謝產物,其代表菌為炭黑曲霉(Aspergillus carbonarius)、赭曲霉(Aspergillus ochraceus)以及疣孢青霉(Penicillium verrusosum)[1]。OTA是一種無色結晶化合物,具有耐熱性,易溶于稀的碳酸氫鈉溶液和極性有機溶劑,微溶于水,在紫外光的照射下呈綠色熒光,是由L-β-苯丙氨酸與7-羥基-5-氯-3,4-二氫-8-羥基-3R-甲基異香豆素通過肽鍵連接而成[2],分子式為C20H18ClNO6[3],化學結構見圖1。OTA具有耐熱性,焙烤只能使其毒性減少20%,蒸煮對其毒性不具有破壞作用[4-5]。
圖1 OTA化學結構式Fig.1 Chemical structure of OTA
OTA廣泛存在于各種食物中,對人類的危害僅次于黃曲霉毒素,主要危及人和動物腎臟[6],同時對免疫系統也有毒性,還具有致畸、致癌、致突變作用[7]。國際癌癥研究機構將其定義為2B類致癌物[8-9]。OTA在葡萄中的危害僅次于谷物[10]。釀酒葡萄成為葡萄酒中OTA的主要來源。葡萄酒中的OTA由ZIMMERLI B等[11]首次檢測出。隨后,澳大利亞、法國、西班牙等許多國家都報道了葡萄酒中OTA的存在[12]。因此,各國對葡萄酒中OTA的含量進行了嚴格規(guī)定。歐盟(european union,EU)委員會在2005年制定的相關標準中規(guī)定,葡萄酒以及用于飲料制作的葡萄汁中OTA限量為2.0μg/L[13],而國內標準暫時未確定。
目前已有關于培養(yǎng)溫度[14]、時間[15]、水分活度[16-17]、酵母浸膏[18]以及Zn2+、Mg2+[19]等條件對不同產毒菌株產OTA影響的研究,然而,關于總糖、SO2、乙醇等對產毒菌株產OTA影響的研究報道較少。研究以分離自新疆吐魯番葡萄園的1株炭黑曲霉(Aspergillus carbonarius)為研究對象,通過單因素試驗和響應面分析(response surface methodol-ogy,RSM)的方法,研究炭黑曲霉在不同葡萄糖、SO2和乙醇含量等條件下的產毒能力,以期為如何減少葡萄酒中OTA含量提供理論依據。
1.1 材料與試劑
產OTA炭黑曲霉菌株CXT11分離自新疆吐魯番葡萄園葡萄漿果,由甘肅農業(yè)大學食品學院葡萄酒重點實驗室提供;
孟加拉紅培養(yǎng)基:蛋白胨5g,葡萄糖10g,磷酸二氫鉀1g,硫酸鎂(MgSO4·7H2O)0.5g,瓊脂20g,1/3 000孟加拉紅溶液100mL,氯霉素0.1g,蒸餾水1 000mL。121℃高溫滅菌20min;
赭曲霉毒素A標品(純度98%):青島日水生物科技有限公司。
1.2 儀器與設備
HPLC2695高效液相色譜儀(裝有熒光檢測器):美國Waters公司;Cence H2050R高速冷凍離心機:湖南湘潭湘儀儀器有限公司;SPX-GB光照培養(yǎng)箱:上海躍進醫(yī)療器械有限公司。
1.3 方法
1.3.1 菌懸液制備
將供試菌株接種于孟加拉紅培養(yǎng)基,25℃培養(yǎng)7d,用無菌水沖洗平板表面收集孢子后,用滅菌的紗布過濾,取0.1mL滴于血球計數板上,在顯微鏡下觀察菌懸液的濃度,調整菌懸液孢子的濃度至3.0×108CFU/mL。
1.3.2 OTA的提取
在無菌條件下,將上述培養(yǎng)的菌液每個樣品吸取2mL,加入2mL OTA提取液(甲醇∶水=8∶2,v/v),充分混合,10 000r/min離心10min。取上清液用d=0.22μm的濾膜過濾,用高效液相色譜儀檢測。
1.3.3 高效液相色譜法對OTA的定量檢測
參考SN/T1940—2007《進出口食品中赭曲霉毒素A的測定方法》[20]并改進。將1mg OTA標品溶于1mL的甲醇水溶液(1∶1,v/v)配制成1mg/mL的OTA原液。吸取10μL該原液稀釋于10mL的甲醇水溶液(1∶1,v/v)中,制成1μg/mL的OTA儲備液,-20℃保藏備用。
從OTA儲備液中分別移取20μL、50μL、100μL、200μL、500μL、1 000μL稀釋至10mL,依次得到質量濃度為2ng/mL、5ng/mL、10ng/mL、20ng/mL、50ng/mL、100ng/mL的OTA標品溶液,經高效液相色譜儀檢測后繪制標準曲線。
高效液相色譜條件。色譜柱:ACQUITYBEH C18不銹鋼柱(1.0mm×50mm×1.7μm);流動相:甲醇/乙酸銨(80mmol/L)=45∶55,梯度洗脫;流速:1mL/min;柱溫:室溫;進樣量:10μL;熒光檢測器:激發(fā)波長360nm,發(fā)射波長440nm。
1.3.4 單因素試驗
選擇SO2、乙醇及葡萄糖含量作為影響產毒的主要因素,通過單因素試驗選取響應面試驗的因素和水平。
(1)培養(yǎng)液SO2質量濃度對產生OTA的影響
吸取1mL 3.0×108CFU/mL菌懸液接種至20mL孟加拉紅液體培養(yǎng)基中,分別加入一定量的偏重亞硫酸鈉溶液使其質量濃度為0、50mg/L、100mg/L、150mg/L、200mg/L,28℃搖床培養(yǎng)9d。用高效液相色譜儀測定各樣品OTA含量。
(2)培養(yǎng)液乙醇體積分數對產生OTA的影響
吸取3.0×108CFU/mL菌懸液1mL接種至20mL孟加拉紅液體培養(yǎng)基中,分別加入一定量乙醇溶液使其體積分數為0%,3%、6%、9%、12%,28℃搖床培養(yǎng)9d。用高效液相色譜儀測定各樣品OTA含量。
(3)培養(yǎng)液葡萄糖質量濃度對產生OTA的影響
吸取1mL 3.0×108CFU/mL菌懸液接種至20mL孟加拉紅液體培養(yǎng)基中,分別加入一定量葡萄糖使其質量濃度相應為50g/L、100g/L、150g/L、200g/L、250g/L,28℃搖床培養(yǎng)9d。用高效液相色譜儀測定各樣品OTA含量。
1.3.5 響應面優(yōu)化炭黑曲霉CXT11產毒條件
根據單因素試驗結果,選取葡萄糖質量濃度(X1)、SO2質量濃度(X2)、乙醇體積分數(X3)3個因素作為自變量,以OTA含量為響應值(Y),進行中心組合試驗設計。每個試驗重復3次,取其平均值,試驗因素水平及編碼見表1。
表1 響應面試驗因素水平編碼Table 1 Factors and levels of response surface methodology
1.3.6 模型的驗證
通過響應面法優(yōu)化炭黑曲霉的產毒條件,并以優(yōu)化后的條件參數進行培養(yǎng)試驗,比較模型預測值和試驗值,驗證模型的有效性。
1.3.7 數據處理與分析
每個試驗重復3次,取其平均值。采用SAS 8.1及Microsoft Excel 2003統計軟件進行單因素方差分析和差異顯著性分析,采用Design Expert 8.05b軟件進行響應面分析。
2.1 標準曲線回歸方程的建立
用高效液相色譜法檢測OTA含量,OTA標準品的高效液相色譜圖見圖2。以峰面積(Y)為縱坐標,OTA質量濃度(X)為橫坐標,繪制標準曲線見圖3。
由圖2可知,所得標準曲線線性回歸方程式為Y=607.7X+890.49,相關系數R2=0.998 8,表明二者線性關系良好。
圖2 OTA標準品的高效液相色譜圖Fig.2 HPLC figure of standard ochratoxin A solution
圖3 OTA的標準曲線Fig.3 Standard curve of ochratoxin A
2.2 單因素試驗結果
2.2.1 培養(yǎng)液中SO2質量濃度對產生OTA的影響
圖4 SO2含量對菌株CXT11產毒的影響Fig.4 Effect of SO2content on OTA production by strain CXT11
由圖4可知,當培養(yǎng)液中SO2質量濃度在0~25mg/L時菌株CXT11產生OTA的能力反而有一定程度的增加,當SO2質量濃度超過25mg/L時,隨著SO2含量的增加,菌株CXT11產毒量呈明顯的下降趨勢。對于SO2質量濃度在0~25mg/L時OTA少量增加的原因分析,可能是因為SO2的加入降低了溶液的pH,低pH值促進了菌株CXT11產生OTA毒素,說明外源pH環(huán)境對OTA的產生具有促進作用。
2.2.2 乙醇體積分數對產生OTA的影響
圖5 乙醇體積分數對菌株CXT11產毒的影響Fig.5 Effect of ethanol content on OTA production by strain CXT11
由圖5可知,隨著乙醇體積分數的增加,菌株CXT11產生OTA的能力呈明顯的下降趨勢。當乙醇體積分數>10%時,OTA幾乎檢測不到,說明較高的乙醇體積分數能夠抑制菌株產毒。
2.2.3 葡萄糖質量濃度對菌株CXT11產生OTA的影響
圖6 葡萄糖含量對菌株CXT11產毒的影響Fig.6 Effect of glucose content on OTA production by strain CXT11
由圖6可知,菌株CXT11產OTA量在0~100g/L葡萄糖質量濃度內呈較緩慢的上升趨勢,當葡萄糖質量濃度超過100g/L時下降較為明顯。這是否因為細胞滲透壓的改變而影響了產毒,其原因還有待進一步研究。
2.3 響應面分析法對菌株CXT11產毒條件優(yōu)化
對葡萄糖質量濃度(X1)、SO2質量濃度(X2)、乙醇體積分數(X3)進行了3因素3水平響應面分析,采用Box-Behnken試驗設計方案結果見表2和表3。
利用Design-Expert8.05對表2的試驗數據進行方差分析、參數估計及顯著性檢驗,具體結果分析見表3,得到OTA產量與葡萄糖質量濃度、SO2質量濃度、乙醇體積分數的標準三元二次回歸方程為:
從表3可知,響應面回歸模型達到極顯著(P<0.01);失擬檢驗不顯著(P>0.05),說明模型所擬合的二次回歸方程與實際相符合,能正確反映OTA產量與X1、X2和X3之間的關系,回歸模型可以較好地對優(yōu)化試驗中的各種試驗結果進行預測。顯著性檢驗結果表明,二次項中葡萄糖質量濃度、SO2質量濃度與乙醇體積分數均對OTA產量有顯著影響(P<0.05)。一次項中葡萄糖質量濃度與乙醇體積分數對OTA產量有顯著影響(P<0.05)。決定系數R2為0.927 3,說明模型的擬合度好,OTA的實際值與預測值之間具有較好的擬合相關性。方差分析結果表明,各因素對真菌產OTA毒素影響由大到小順序依次為葡萄糖質量濃度、乙醇體積分數、SO2質量濃度。
表2 響應面分析試驗設計方案及結果Table 2 Design and result of response surface analysis experiment
表3 回歸模型方差分析及其系數的顯著性檢驗Table 3 Variance analysis of regression model and coefficient of significance test
對葡萄糖質量濃度、SO2質量濃度、乙醇體積分數3個因素,兩兩交互作用分析,得到交互因子的響應曲面圖及等高線見圖7。等高線圖表示在同一橢圓型的區(qū)域內,OTA產量是相同的。在橢圓形區(qū)域中心,OTA產量最低,由中心向邊緣逐漸增大。橢圓排列越密集,說明因素變化對OTA產量影響越大。同時等高線的形狀可以反映出交互作用的大小,橢圓形表示兩因素交互作用顯著;而圓形則與之相反,此時兩因素交互作用不顯著。由圖6可知,兩兩交互作用分析,兩者之間的交互作用皆不顯著。
圖7 各因素對OTA產量影響的響應曲面和等高線Fig.7 Response surface plot and contour line of interaction factors on ochratoxin A production
通過回歸方程對各因素求最大值,得出菌株CXT11產OTA的最佳參數為葡萄糖質量濃度92.26g/L、SO2質量濃度8.26mg/L、乙醇體積分數0.05%。在此最優(yōu)條件下,得OTA產量為7.596ng/mL。
2.4 驗證試驗
為了進一步驗證響應面分析法的可靠性,采用上述最優(yōu)條件培養(yǎng)菌株CXT11,實際測得OTA產量為7.427ng/mL,誤差為2.22%,與未處理的菌株產OTA 6.087ng/mL相比升高了1.34ng/mL。因此,采用響應面分析優(yōu)化得到的菌株CXT11產OTA的參數準確可靠。
建立了以菌株CXT11的OTA產量為響應值,以葡萄糖質量濃度、SO2質量濃度和乙醇體積分數為因影響子的數學模型,由該模型得到各因素對真菌產OTA毒素影響大小順序依次為葡萄糖質量濃度、乙醇體積分數、SO2質量濃度。產毒的最佳參數為葡萄糖質量濃度92.26g/L、SO2質量濃度8.26mg/L、乙醇體積分數0.05%。驗證試驗結果表明,OTA實際產量為7.427ng/mL,與未處理的菌株OTA產量6.087ng/mL相比升高了1.34ng/mL。
因此,在葡萄破碎后,即葡萄糖質量濃度較高、乙醇含量較低時,最有利于潛在產毒菌株產生OTA。添加一定量SO2能有效抑制其產毒,并且隨著發(fā)酵的進行,乙醇含量的增加同樣會抑制其產毒,為控制葡萄酒中OTA含量提供可行性方法。
[1]VARGAA J,KOZAKIEWICZB Z.Ochratoxin A in grapes and grape-derived products[J].Trends Food Sci Tech,2006,17(2):72-81.
[2]章英,許楊.谷物類食品中赭曲霉毒素A分析方法的研究進展[J].食品科學,2006,27(12):767-771.
[3]ABRUNHOSA L,SERRA R,VEN?NCIO A.Biodegradation of ochratoxinAbyfungiisolatedfromgrapes[J].J Agr Food Chem,2002,50(25): 7493-7496.
[4]BATTILANI P,PIETRI A.Ochratoxin A in grape and wine[J].Eur J Plant Pathol,2002,108(7):639-643.
[5]趙博,丁曉文.赭曲霉毒素A污染及毒性研究進展[J].糧食與油脂,2006(4):39-42.
[6]高翔,李梅,張立實.赭曲霉毒素A的毒性研究進展[J].國外醫(yī)學衛(wèi)生學分冊,2005,32(1):51-55.
[7]疏秀林,施慶珊,歐陽友生,等.赭曲霉毒素的產生及鑒別[J].中國衛(wèi)生檢驗雜志,2008,18(10):2183-2185.
[8]楊學威,段雪榮,盧新軍,等.關于葡萄酒中赭曲霉素A的研究進展[J].中國釀造,2012,31(11):12-14.
[9]褚慶華,郭德華,王敏,等.谷物和酒類中赭曲霉毒素A的測定[J].中國國境衛(wèi)生檢疫雜志,2006,29(2):109-117.
[10]LASRAM S,BELLI N,CHEBIL S,et al.Occurrence of ochratoxigenic fungi and ochratoxin A in grapes from aTunisian vineyard[J].Int J Food Microbiol,2007,114(3):376-379.
[11]ZIMMERLI B,DICK R.Determination of ochratoxin A at the ppt level in human blood,serum,milk and some foodstuffs by high-performance liquid chromatography with enhanced fluorescence detection and immunoaffinity column cleanup:methodology and Swiss data[J].J Chromatogr B Biomed Sci Appl,1995,666(1):85-99.
[12]VARGA J,KOZAKIEWICZ Z.Ochratoxin A in grapes and grape-derived products[J].Trends Food Sci Technol,2006,17(2):72-81.
[13]European Commission.Commission Regulation(EC)No 123/2005 of 26 January 2005 amending regulation(EC)No 466/2001 as regards ochratoxin A[J].Off J Eur Union,2005,25:3-5.
[14]ASTORECA A,MAGNOLI C,BARBERIS C,et al.Ochratoxin A production in relation to ecophysiological factors byAspergillussection Nigristrains isolated from different substrates in Argentina[J].Sci Total Environ,2007,388(1):16-23.
[15]BELLíN,A RAMOS J,SANCHIS V,et al.Incubation time and water activity effects on ochratoxin A production byAspergillussectionNigri strains isolated from grape[J].Lett Appl Microbiol,2004,38(1):72-77.
[16]PARDO E,MARíN S,SANCHIS V,et al.Prediction of fungal growth and ochratoxin A production byAspergillus ochraceuson irradiated barley grain as influenced by temperature and water activity[J].Int J Food Microbiol,2004,95(1):79-88.
[17]LEONG S L,HOCKING A D,SCOTT E S.Effect of temperature and water activity on growth and ochratoxin A production by AustralianAspergillus carbonariusandA.nigerisolates on a simulated grape juice medium[J].Int J Food Microbiol,2006,110(3):209-216.
[18]ARROYO M,ALDRED D,MAGAN N.Environmental factors and weak organic acid interactions have differential effects on control of growth and ochratoxin A production byPenicillium verrucosumisolates in bread[J].Int J Food Microbiol,2005,98(3):223-231.
[19]RAO V K,RAMANA M V,GIRISHAM S,et al.Culture media and factors influencing ochratoxin a production by two species of penicillium isolatedfrompoultryfeeds[J].Natl Acad Sci Lett,2013,36(1):101-110.
[20]中華人民共和國國家質量監(jiān)督檢驗檢疫總局.SN/T1940—2007進出口食品中赭曲霉毒素A的測定方法[S].北京:中國標準出版社,2007.
Effect of different conditions on ochratoxin A production byAspergillus carbonarius
CHEN Lunjia,WANG Jing,HAN Shunyu*,SONG Rui,CHEN Kai
(College of Food Science and Technology,Gansu Agricultural University,Lanzhou 730070,China)
To understand the ochratoxin A(OTA)production byAspergillus carbonariusCXT11 isolated from the grape of Xinjiang province,the OTA content was determined by HPLC-fluorescence after cultured by rose bengal medium.On the basis of single factor experiment,response surface methodology was adopted to optimize the OTA production condition.The effect of different factors on OTA production in order was glucose concentration,ethanol content,SO2concentration.The optimum OTA production condition was obtained as follows:temperature 28℃,glucose concentration 92.26 g/L,SO2concentration 8.26 mg/L,ethanol 0.05%.Under this condition,the OTA production was 7.427 ng/ml.
ochratoxin A;Aspergillus carbonariusCXT11;toxin-producing conditions;response surface methodology
Q949.327.1
A
0254-5071(2014)04-0039-05
10.3969/j.issn.0254-5071.2014.04.010
2014-02-18
甘肅省農業(yè)生物技術專項(GNSW-2013-16)
陳倫佳(1988-),男,碩士研究生,研究方向為葡萄酒中存在的真菌毒素。
*通訊作者:韓舜愈(1963-),男,教授,博士,研究方向為農產品貯藏加工及揮發(fā)性風味物質分析。