肖 靜, 余細(xì)勇
(1廣東省人民醫(yī)院,廣東省醫(yī)學(xué)科學(xué)院醫(yī)學(xué)研究中心, 廣東 廣州 510080; 2南方醫(yī)科大學(xué)藥學(xué)院,廣東 廣州 510515)
人體諸多生理功能的發(fā)揮是通過細(xì)胞間的信息交換來完成的。目前細(xì)胞之間的信息交換涉及的機(jī)制較為復(fù)雜,其中比較重要的有分泌生長因子、各種小分子物質(zhì)(多肽類、生物活性脂類和核苷酸)、細(xì)胞間接觸和分泌到胞外的基質(zhì)成分等。新近發(fā)現(xiàn)的外泌體 (exosomes)作為一種細(xì)胞分泌到胞外的囊泡狀小體,自發(fā)現(xiàn)以來就不斷引起研究者的興趣。近年來對于exosomes參與心血管疾病生理及病理過程的機(jī)制探索以及將基于exosomes的研究轉(zhuǎn)化于臨床心臟疾病的診治已成為研究前沿和熱點(diǎn)。
Exosomes是由多種細(xì)胞分泌的雙層模型結(jié)構(gòu)的囊性小泡,直徑為30~100 nm,是已發(fā)現(xiàn)的眾多胞外微粒體的一種。Exosomes由Johnstone等[1]在1987年首次從網(wǎng)織紅細(xì)胞的培養(yǎng)上清液中分離出來,之后的研究不斷發(fā)現(xiàn)其它多種類型細(xì)胞也可以分泌exosomes, 如: T 細(xì)胞[2]、B 細(xì)胞[3]、樹突狀細(xì)胞[4]以及其它非血源性細(xì)胞如腫瘤細(xì)胞[5]、施旺細(xì)胞[6],甚至在其它體液中也可見,如尿液[7]。Exosomes的產(chǎn)生機(jī)制十分復(fù)雜,涉及到多種因子的調(diào)控作用。目前大多數(shù)研究者比較認(rèn)同的機(jī)制是:細(xì)胞在內(nèi)吞時(shí)形成的多泡體(multivesicular bodies, MVBs),在胞外分泌的過程中,MVBs包含的腔內(nèi)囊泡(intralumenal vesicles, ILVs)可以從MVBs的內(nèi)腔釋放到胞外環(huán)境中,而釋放的這些30~100 nm的ILVs就是exosomes[8]。
細(xì)胞分泌的exosomes內(nèi)包含許多遺傳物質(zhì)和蛋白質(zhì),exosomes到達(dá)胞外后可作用到靶細(xì)胞,從而在細(xì)胞間信息傳遞以及免疫調(diào)節(jié)等過程中發(fā)揮著復(fù)雜的調(diào)節(jié)作用。Exosomes內(nèi)的DNA或RNA可以通過exosomes傳遞到鄰近細(xì)胞,引起周圍細(xì)胞基因表達(dá)的改變[9];來源于exosomes的微小RNA(microRNA,miR)在干細(xì)胞分化的調(diào)控(let-7)、胚胎發(fā)育和器官發(fā)生(miR-1)、造血(miR-181)和腫瘤發(fā)生(miR-17、-18、-19、-19b等)等生理和病理生理過程中起關(guān)鍵調(diào)節(jié)作用[10];exosomes內(nèi)的脂質(zhì)對于維持其正常的結(jié)構(gòu)和功能也有重要作用;另外,exosome還含有4次跨膜蛋白超家族(CD9、CD63、CD81、CD82)可以作為識別不同來源exosomes的蛋白分子標(biāo)記,以及具有功能的熱休克(heat shock protein,HSP)蛋白超家族(HSP70、HSP90)等。
自從Raposo等[11]在1996年發(fā)現(xiàn)免疫細(xì)胞也可釋放exosomes后,免疫學(xué)家就推測exosomes可能具有潛在的免疫調(diào)節(jié)功能,且在后續(xù)研究中逐漸得到證實(shí)。有研究者發(fā)現(xiàn)從抗原免疫小鼠的血漿中分離出的exosomes可以抑制Th1型超敏反應(yīng)和Th2型過敏反應(yīng)的應(yīng)答[12]。Wan等[13]發(fā)現(xiàn)激活小鼠的樹突狀細(xì)胞可以通過釋放exosomes而直接增加B細(xì)胞的效應(yīng)作用。成熟突狀細(xì)胞來源的exosomes膜上有縮氨酸耐受的MHCⅠ和MHCⅡ類分子,可以直接和T細(xì)胞受體結(jié)合,激活CD4+或CD8+T細(xì)胞進(jìn)而引起一系列的免疫應(yīng)答[14]。
多種細(xì)胞來源的exosomes內(nèi)均包含mRNA和miRNA,并且諸多研究已證實(shí)它們在exosomes參與細(xì)胞之間信息傳遞的作用機(jī)制中確實(shí)起到重要作用。根據(jù)一個(gè)專門收錄與exosomes研究相關(guān)的數(shù)據(jù)庫ExoCarta(http://www.exocarta.org/)中的信息[15],現(xiàn)已發(fā)現(xiàn)的exosomes相關(guān)miRNA的種類為764種,包括let-7、miR-1、miR-15、miR-16和miR-181及各種亞型。這些來源于exosomes的miRNA在生物體許多系統(tǒng)均有一定作用。神經(jīng)元來源的exosomes內(nèi)包含豐富的miRNA,這些exosomes可以直接內(nèi)化進(jìn)入星形膠質(zhì)細(xì)胞中并增加miR-124a和谷氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白1(glutamate transporter 1,GLT1)蛋白的水平;在培養(yǎng)的星形膠質(zhì)細(xì)胞直接轉(zhuǎn)染miR-124a也可以顯著增加GLT1蛋白(但不是mRNA)表達(dá)的水平[16]。
在發(fā)現(xiàn)exosomes早期,研究者較多地聚焦于exosomes在腫瘤中發(fā)生發(fā)展機(jī)制中的重要作用。許多研究結(jié)果證實(shí)了exosomes是參與癌細(xì)胞和正常細(xì)胞信息交流的重要物質(zhì),多種細(xì)胞因子(如白細(xì)胞介素、腫瘤壞死因子超家族等)通過exosomes的攜帶作用進(jìn)入腫瘤細(xì)胞微環(huán)境從而發(fā)揮血管生成及腫瘤細(xì)胞轉(zhuǎn)移等過程。近年,隨著對exosomes研究的深入,已證實(shí)exosomes調(diào)控的細(xì)胞間信息交流過程也廣泛參與了心血管系統(tǒng)的生理及病理過程,并在心血管疾病發(fā)生發(fā)展機(jī)制中扮演重要角色。
心臟球(cardiospheres,CSs)是體外培養(yǎng)心臟組織所獲得的自我聚集為球形的細(xì)胞集落。研究發(fā)現(xiàn)心臟球和心臟球來源的細(xì)胞(cardiosphere-derived cells,CDCs)均可以分泌exosomes,且這些exosomes和其它微粒體一起在成年心臟組織與異體細(xì)胞間的交流中發(fā)揮重要作用[17],尤其在telocytes(一種在干細(xì)胞微環(huán)境中已發(fā)現(xiàn)具有信息傳遞功能的間質(zhì)細(xì)胞)及其它常駐性心肌祖細(xì)胞(resident progenitor cell)之間[18-19]。Vrijsen等[20]研究證實(shí)來源于心肌祖細(xì)胞的exosomes在體外抓傷實(shí)驗(yàn)中能夠促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞的遷移,提升的內(nèi)源性心肌的再生能力。心肌成纖維細(xì)胞分泌的exosome能夠在心肌細(xì)胞周圍引起特定的效應(yīng)。當(dāng)用心肌成纖維細(xì)胞的條件培養(yǎng)基培養(yǎng)心肌細(xì)胞時(shí),會改變神經(jīng)沖動的傳導(dǎo)從而改變心肌細(xì)胞內(nèi)Na+離子通道和內(nèi)向整流K+通道的表達(dá)水平[21]。隨后,研究者還發(fā)現(xiàn)心肌細(xì)胞exosome能夠向其它某些細(xì)胞傳遞DNA和RNA:Waldenstrom等[9]分別用碘化丙啶和吖啶橙示蹤DNA和RNA,在體外將遺傳物質(zhì)標(biāo)記后的exosome導(dǎo)入成纖維細(xì)胞中,孵育3 h后,激光共聚焦顯微鏡結(jié)果提示來源于外生exosome的DNA和RNA已經(jīng)被成纖維細(xì)胞內(nèi)化。
除了心肌細(xì)胞能夠分泌exosomes之外,內(nèi)皮細(xì)胞分泌的exosomes在心血管形成機(jī)制中有重要作用。van Balkom等[22]研究發(fā)現(xiàn)內(nèi)皮細(xì)胞來源的exosomes包含的miR-214 在鄰近靶細(xì)胞內(nèi)通過沉默毛細(xì)血管擴(kuò)張性共濟(jì)失調(diào)突變從而刺激血管生成。主動脈內(nèi)皮細(xì)胞所產(chǎn)生的包含HSP-70的exosomes可以選擇性地激活單核細(xì)胞,但是在其它類型的內(nèi)皮細(xì)胞中未見類似報(bào)道[23]。內(nèi)皮細(xì)胞exosome來源的HSP70可以募集單核細(xì)胞引起炎癥反應(yīng),提示exosome在細(xì)胞炎癥反應(yīng)中起主要作用,對人微血管內(nèi)皮細(xì)胞在缺氧和高糖狀態(tài)下產(chǎn)生的exosomes進(jìn)行指紋分析,發(fā)現(xiàn)其包含1 354種蛋白質(zhì)和1 992種信使RNA,參與了常駐性心肌細(xì)胞的胞內(nèi)壓力應(yīng)激反應(yīng)[24]。此外,內(nèi)皮細(xì)胞分泌的包含miRNA的微泡參與了內(nèi)皮細(xì)胞與平滑肌細(xì)胞共培養(yǎng)時(shí)2種細(xì)胞之間的信息交流過程,有助于體內(nèi)對抗動脈粥樣硬化、保護(hù)血管內(nèi)皮的作用[25]。
此外,大量研究發(fā)現(xiàn)當(dāng)心肌細(xì)胞處在某些病理狀態(tài)(如心肌缺血性損傷等)時(shí),exosomes也參與其中,它或?qū)е缕渌徑?xì)胞病理改變,或提供某些保護(hù)性因子。例如Kuwabara等[26]研究發(fā)現(xiàn)急性心肌梗死和心絞痛病人血漿exosomes中miR-1和miR-133a的表達(dá)水平較正常人顯著升高。因而心肌細(xì)胞的exosomes或可以作為信息傳遞的載體,心肌內(nèi)某致病基因一旦出現(xiàn)表達(dá)的改變,將可通過exosomes將這一變化轉(zhuǎn)遞到周圍的細(xì)胞。Exosomes內(nèi)所包含的組蛋白是其來源細(xì)胞分泌的所有組蛋白中的一部分,有研究提示心肌成纖維細(xì)胞分泌的組蛋白可以在體外緩解再灌注心臟的缺血性損傷[27];但進(jìn)一步卻發(fā)現(xiàn),條件培養(yǎng)基的心臟保護(hù)性效應(yīng)只有在培養(yǎng)基內(nèi)存在分子量大于50 kD的碎片時(shí)才出現(xiàn)。對這一現(xiàn)象可能的解釋是成纖維細(xì)胞分泌的exosomes足夠容納分子量在50 kD以上的片段,像血管緊張素Ⅱ和內(nèi)皮素1[27]這類的低分子量心肌保護(hù)性因子,可以在50 kD大小的碎片中單獨(dú)表達(dá),也可以包裝在exosomes之中到達(dá)靶細(xì)胞后發(fā)揮效應(yīng)。另外,心肌細(xì)胞在乙醇、高糖等非正常條件刺激下可以增加exosomes的分泌量[28],這一現(xiàn)象提示當(dāng)心肌細(xì)胞處于某些病理?xiàng)l件下時(shí),心肌損害的出現(xiàn)可能同其本身所釋放出的exosome有關(guān)。
目前對于心血管系統(tǒng)來源的exosomes功能的研究還處于初始階段,但是exosomes作為缺血性心肌疾病的治療潛能已得到初步證實(shí)。
最近,有研究者采用微泡作為藥物傳遞系統(tǒng),利用exosomes特異定位細(xì)胞的能力治療某些疾病[29],該藥物傳遞系統(tǒng)甚至可以傳遞遺傳物質(zhì)到靶細(xì)胞[10]。這個(gè)方法與exosomes模擬物不同,后者采用人工合成的exosomes,其內(nèi)容物只包含基本的定位成分,并且將其它內(nèi)源性成分(endogenous cargo)減到最少[30]。這個(gè)藥物傳遞系統(tǒng)同目前利用脂質(zhì)體進(jìn)行藥物傳遞的方法非常相似[31],但是,相比一般的脂質(zhì)體藥物傳遞系統(tǒng),exosomes具有靶向特定的細(xì)胞甚至細(xì)胞亞群的優(yōu)勢。例如,含有外生siRNA的exosomes可以通過血腦屏障傳遞其內(nèi)容物到達(dá)特定的神經(jīng)靶細(xì)胞、小膠質(zhì)細(xì)胞、少突膠質(zhì)細(xì)胞,使這些細(xì)胞內(nèi)特定的轉(zhuǎn)錄和翻譯水平下調(diào)[32]。使用exosomes還可以提高藥效,當(dāng)exosomes內(nèi)被裝上外源性curcumin(一種消炎藥),可以觀察到該藥的生物利用度、溶解度及穩(wěn)定性都明顯提高[33],在由脂多糖誘導(dǎo)的感染性休克的小鼠模型中,exosomes傳遞的curcumin可以減少炎癥細(xì)胞因子IL-6和腫瘤壞死因子α的濃度,從根本上提高細(xì)胞在感染性休克狀態(tài)下的生存率。類似的策略可以利用exosomes表面的蛋白靶向心肌細(xì)胞,以期能夠提高藥物作用的專一性,減少治療副作用。Exosomes作為藥物的傳遞系統(tǒng)克服了藥物生物利用率低的缺點(diǎn),為靶向性特異治療提供了全新的方法。
近年來,除了作為藥物傳遞體的應(yīng)用價(jià)值外,exosomes作為信息載體應(yīng)用于疾病的治療以及在再生醫(yī)學(xué)方面的應(yīng)用前景也得到初步體現(xiàn)。研究發(fā)現(xiàn)干細(xì)胞分泌的exosomes具有心肌保護(hù)作用[34],間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells,MSCs)分泌的exosomes可以保護(hù)心肌組織免受缺血與再灌注的損傷[35]、縮小心肌梗死中梗死心肌的范圍[36]以及急性腎小管損傷的范圍[37]。在豬缺血再灌注模型中,來源于間充質(zhì)干細(xì)胞和胚胎干細(xì)胞分泌的exosomes也有類似研究發(fā)現(xiàn),這種細(xì)胞產(chǎn)生的exosome可以縮小心肌梗死范圍,提高心功能[38]。Manole等[39]在心梗周圍區(qū)域發(fā)現(xiàn)有來源于telocytes的exosomes出現(xiàn),提示其可能有潛在的血管生成功能。本課題組近期研究發(fā)現(xiàn)Sca-1+干細(xì)胞通過熱休克(42 ℃處理3 h)處理后,其存活率可顯著提高;我們進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)熱休克干細(xì)胞通過exosomes分泌熱休克因子1(heat shock factor 1)到胞外并作用于處于缺血狀態(tài)的心肌細(xì)胞,使心肌細(xì)胞凋亡減少,從而顯著改善心功能,這一研究對研發(fā)心肌保護(hù)藥物及解決干細(xì)胞移植治療心肌梗死的瓶頸問題具有重要臨床意義[40]。另外,在心臟受到損傷時(shí),除了干細(xì)胞分泌保護(hù)性作用的exosomes外,Chen等[41]研究者證實(shí)心肌祖細(xì)胞分泌的exosomes也可以保護(hù)缺血的心肌細(xì)胞不受急性缺血再灌注的傷害,因此心肌祖細(xì)胞來源的exosomes治療心臟疾病或同樣具有廣泛的前景。
對于缺血性心肌病,干細(xì)胞療法具有廣泛的應(yīng)用前景,但是宿主細(xì)胞對外來干細(xì)胞的排斥以及干細(xì)胞進(jìn)入體內(nèi)后細(xì)胞的完整性被破壞是運(yùn)用干細(xì)胞療法主要的困難與挑戰(zhàn)。目前研究熱點(diǎn)正立足于運(yùn)用exosomes解決干細(xì)胞在治療缺血性心臟病中面臨的干細(xì)胞存活率問題,以有利于心肌保護(hù)性藥物治療靶點(diǎn)的探索和完善。因此,心血管系統(tǒng)exosomes的研究對于了解心臟細(xì)胞之間的通訊機(jī)制、疾病的發(fā)生發(fā)展過程、探尋心血管疾病潛在的分子標(biāo)記物以及優(yōu)化心臟疾病的診治均具有重要的臨床意義。此外,通過心臟exosomes的研究技術(shù)與思路,對我們攻克其它難治性疾病(如惡性腫瘤、免疫系統(tǒng)疾病等)也具有借鑒和指導(dǎo)意義。
[參 考 文 獻(xiàn)]
[1] Johnstone RM, Adam M, Hammond JR, et al. Vesicle formation during reticulocyte maturation. Association of plasma membrane activities with released vesicles (exosomes)[J]. J Biol Chem,1987,262(19):9412-9420.
[2] Andersson-Willman B, Gehrmann U, Cansu Z, et al. Effects of subtoxic concentrations of TiO2and ZnO nanoparticles on human lymphocytes, dendritic cells and exosome production[J]. Toxicol Appl Pharmacol,2012,264(1):94-103.
[3] Buschow SI, van Balkom BW, Aalberts M, et al. MHC class II-associated proteins in B-cell exosomes and potential functional implications for exosome biogenesis[J]. Immunol Cell Biol,2010,88(8):851-856.
[4] 余 思,鄧建中,李志澄,等. 未成熟樹突狀細(xì)胞-胃癌細(xì)胞融合細(xì)胞來源的exosome誘導(dǎo)特異性抗腫瘤免疫[J]. 中華臨床醫(yī)師雜志:電子版,2013,7(9):3897-3901.
[5] 張?jiān)谠疲顣悦?,王涓冬,? IL-18基因修飾對肺癌細(xì)胞來源exosome誘導(dǎo)殺傷腫瘤細(xì)胞作用的影響[J]. 中國病理生理雜志,2011,27(9):1758-1761.
[6] Fevrier B, Raposo G. Exosomes: endosomal-derived vesicles shipping extracellular messages[J]. Curr Opin Cell Biol,2004,16(4):415-421.
[7] 孫愛麗,胡曉燕,關(guān)廣聚,等. 尿胞外體亮氨酸氨基肽酶及二肽基肽酶在糖尿病腎病中的變化[J]. 中國病理生理雜志,2011,27(4):775-778.
[8] Babst M. A protein’s final ESCRT[J]. Traffic,2005,6(1):2-9.
[9] Waldenstrom A, Genneback N, Hellman U, et al. Cardiomyocyte microvesicles contain DNA/RNA and convey biological messages to target cells[J]. PLoS One,2012,7(4):e34653.
[10] Valadi H, Ekstrom K, Bossios A, et al. Exosome-mediated transfer of mRNAs and microRNAs is a novel mechanism of genetic exchange between cells[J]. Nat Cell Biol,2007,9(6):654-659.
[11] Raposo G, Nijman HW, Stoorvogel W, et al. B lymphocytes secrete antigen-presenting vesicles[J]. J Exp Med,1996,183(3):1161-1172.
[12] Almqvist N, Lonnqvist A, Hultkrantz S, et al. Serum-derived exosomes from antigen-fed mice prevent allergic sensitization in a model of allergic asthma[J]. Immunology,2008,125(1):21-27.
[13] Wan S, Zhou Z, Duan B, et al. Direct B cell stimulation by dendritic cells in a mouse model of lupus[J]. Arthritis Rheum,2008,58(6):1741-1750.
[14] Naslund TI, Gehrmann U, Qazi KR, et al. Dendritic cell-derived exosomes need to activate both T and B cells to induce antitumor immunity[J]. J Immunol,2013,190(6):2712-2719.
[15] Mathivanan S, Fahner CJ, Reid GE, et al. ExoCarta 2012: database of exosomal proteins, RNA and lipids[J]. Nucleic Acids Res,2012,40(Database issue):D1241-D1244.
[16] Morel L, Regan M, Higashimori H, et al. Neuronal exosomal miRNA-dependent translational regulation of astroglial glutamate transporter GLT1[J]. J Biol Chem,2013,288(10):7105-7116.
[17] Gherghiceanu M, Popescu LM. Cardiac telocytes - their junctions and functional implications[J]. Cell Tissue Res,2012,348(2):265-279.
[18] Popescu LM, Faussone-Pellegrini MS. Telocytes - a case of serendipity: the winding way from interstitial cells of Cajal (ICC), via interstitial Cajal-like cells (ICLC) to telocytes[J]. J Cell Mol Med,2010,14(4):729-740.
[19] Gherghiceanu M, Popescu LM. Cardiomyocyte precursors and telocytes in epicardial stem cell niche: electron microscope images[J]. J Cell Mol Med,2010,14(4):871-877.
[20] Vrijsen KR, Sluijter JP, Schuchardt MW, et al. Cardiomyocyte progenitor cell-derived exosomes stimulate migration of endothelial cells[J]. J Cell Mol Med,2010,14(5):1064-1070.
[21] Pedrotty DM, Klinger RY, Kirkton RD, et al. Cardiac fibroblast paracrine factors alter impulse conduction and ion channel expression of neonatal rat cardiomyocytes[J]. Cardiovasc Res,2009,83(4):688-697.
[22] van Balkom BW, de Jong OG, Smits M, et al. Endothelial cells require miR-214 to secrete exosomes that suppress senescence and induce angiogenesis in human and mouse endothelial cells[J]. Blood,2013,121(19):3997-4006.
[23] Zhan R, Leng X, Liu X, et al. Heat shock protein 70 is secreted from endothelial cells by a non-classical pathway involving exosomes[J]. Biochem Biophys Res Commun,2009,387(2):229-233.
[24] de Jong OG, Verhaar MC, Chen Y, et al. Cellular stress conditions are reflected in the protein and RNA content of endothelial cell-derived exosomes[J]. J Extracell Vesicles,2012,1:18396.
[25] Hergenreider E, Heydt S, Treguer K, et al. Atheroprotective communication between endothelial cells and smooth muscle cells through miRNAs[J]. Nat Cell Biol,2012,14(3):249-256.
[26] Kuwabara Y, Ono K, Horie T, et al. Increased microRNA-1 and microRNA-133a levels in serum of patients with cardiovascular disease indicate myocardial damage[J]. Circ Cardiovasc Genet,2011,4(4):446-454.
[27] Nakazato K, Naganuma W, Ogawa K, et al. Attenuation of ischemic myocardial injury and dysfunction by cardiac fibroblast-derived factor(s)[J]. Fukushima J Med Sci,2010,56(1):1-16.
[28] Malik ZA, Kott KS, Poe AJ, et al. Cardiac myocyte exosomes: stability, HSP60, and proteomics[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol,2013,304(7):H954-H965.
[29] Lakhal S, Wood MJ. Exosome nanotechnology: an emerging paradigm shift in drug delivery: exploitation of exosome nanovesicles for systemicinvivodelivery of RNAi heralds new horizons for drug delivery across biological barriers[J]. Bioessays,2011,33(10):737-741.
[30] Kooijmans SA, Vader P, van Dommelen S M, et al. Exosome mimetics: a novel class of drug delivery systems[J]. Int J Nanomedicine,2012,7:1525-1541.
[31] Torchilin VP. Recent advances with liposomes as pharmaceutical carriers[J]. Nat Rev Drug Discov,2005,4(2):145-160.
[32] Alvarez-Erviti L, Seow Y, Yin H, et al. Delivery of siRNA to the mouse brain by systemic injection of targeted exosomes[J]. Nat Biotechnol,2011,29(4):341-345.
[33] Sun D, Zhuang X, Xiang X, et al. A novel nanoparticle drug delivery system: the anti-inflammatory activity of curcumin is enhanced when encapsulated in exosomes[J]. Mol Ther,2010,18(9):1606-1614.
[34] 胡國文,汪 泱,沈曉黎,等. 外泌體及其在干細(xì)胞中的研究進(jìn)展[J]. 上海交通大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2013,33(6):868-873.
[35] Lai RC, Arslan F, Lee MM, et al. Exosome secreted by MSC reduces myocardial ischemia/reperfusion injury[J]. Stem Cell Res,2010,4(3):214-222.
[36] Lai RC, Chen TS, Lim SK. Mesenchymal stem cell exosome: a novel stem cell-based therapy for cardiovascular disease[J]. Regen Med,2011,6(4):481-492.
[37] Bruno S, Grange C, Deregibus MC, et al. Mesenchymal stem cell-derived microvesicles protect against acute tubular injury[J]. J Am Soc Nephrol,2009,20(5):1053-1067.
[38] Timmers L, Lim SK, Arslan F, et al. Reduction of myocardial infarct size by human mesenchymal stem cell conditioned medium[J]. Stem Cell Res,2007,1(2):129-137.
[39] Manole CG, Cismasiu V, Gherghiceanu M, et al. Experimental acute myocardial infarction: telocytes involvement in neo-angiogenesis[J]. J Cell Mol Med,2011,15(11):2284-2296.
[40] Feng Y, Huang W, Meng W, et al. Heat shock improves Sca-1+stem cells survival and directs ischemic cardiomyocytes towards a prosurvival phenotype via exosomal transfer: a critical role for HSF1/miR-34a/HSP70 pathway[J]. Stem Cells,2014,32(2):462-472.
[41] Chen L, Wang Y, Pan Y, et al. Cardiac progenitor-derived exosomes protect ischemic myocardium from acute ischemia/reperfusion injury[J]. Biochem Biophys Res Commun,2013,431(3):566-571.