■馬歌麗 韓甜甜 李全喜 魏 濤 毛多斌
(鄭州輕工業(yè)學(xué)院食品與生物工程學(xué)院,河南鄭州450001)
β-呋喃果糖苷酶(β-fructofuranosidase,EC3.2.1.26)是一種重要的工具酶,主要用于催化合成功能性低聚糖和糖苷類化合物。國內(nèi)外有關(guān)β-呋喃果糖苷酶的催化反應(yīng)研究多在水介質(zhì)中進(jìn)行。近年來,離子液體作為一種新型溶劑已成為酶催化反應(yīng)的重要介質(zhì),不僅具有不易揮發(fā)、對(duì)環(huán)境友好、可設(shè)計(jì)等優(yōu)點(diǎn),而且其獨(dú)特的結(jié)構(gòu)還可以增加酶的穩(wěn)定性[1-2]。離子液體是由有機(jī)陽離子和無機(jī)或有機(jī)陰離子構(gòu)成的、在100℃以下呈液體狀態(tài)的鹽類。用于酶催化反應(yīng)的離子液體通常由烷基取代的咪唑陽離子([R1R3IM]+)與非配位性的四氟硼酸根()、六氟磷酸根()、三氟甲磺酸根()等陰離子組成。在離子液體的酶催化反應(yīng)研究中,文獻(xiàn)報(bào)道較多的是脂肪酶、蛋白酶和氧化還原酶,而糖苷酶在離子液體中的催化反應(yīng)報(bào)道很少[3-4],所以將β-呋喃果糖苷酶引入到離子液體介質(zhì)中進(jìn)行研究具有重要意義。
主要通過探索離子液體的種類和濃度、反應(yīng)溫度、pH值、底物濃度對(duì)酶活性的影響,研究了黑曲霉YA03產(chǎn)β-呋喃果糖苷酶在離子液體中的酶學(xué)特性,以期得到離子液體中β-呋喃果糖苷酶的最佳作用條件,了解酶在離子液體中的反應(yīng)動(dòng)力學(xué)參數(shù),為離子液體中酶催化反應(yīng)提供指導(dǎo)。
1.1.1 菌種
黑曲霉YA03,鄭州輕工業(yè)學(xué)院生物工程實(shí)驗(yàn)室誘變選育。
1.1.2 主要試劑
蔗糖,分析純,廣東省化學(xué)試劑工程技術(shù)研究開發(fā)中心;葡萄糖,分析純,BioBasic公司;果糖,優(yōu)級(jí)純,Amresco公司;蔗果三糖(1-Kestose),色譜純,日本和光純藥工業(yè)株式會(huì)社;乙腈,色譜純,天津市四友精細(xì)化學(xué)品有限公司;[BMIM][PF6]和[BMIM][BF4],分析純,上海成捷化學(xué)試劑公司。
1.1.3 儀器與設(shè)備
JY1001電子天平,上海浦春計(jì)量儀器有限公司;UV1000紫外可見分光光度計(jì),上海天美科學(xué)儀器有限公司;HH-S4數(shù)顯恒溫水浴鍋,金壇市醫(yī)療儀器廠;DHG-9145A電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱,上海一恒科技有限公司;JY92-ⅡDN超聲波細(xì)胞粉碎機(jī),寧波新芝生物科技股份有限公司;GL-22M高速冷凍離心機(jī),賽特湘儀離心機(jī)儀器有限公司;702型微量進(jìn)樣器,Hamil?ton公司;2424型蒸發(fā)光散射檢測(cè)儀,美國Waters公司;1525型高效液相色譜儀,美國Waters公司。
1.2.1 β-呋喃果糖苷酶的制備
黑曲霉YA03菌種經(jīng)種子培養(yǎng)和發(fā)酵培養(yǎng)后,發(fā)酵液進(jìn)行真空抽濾,收集菌體,用pH值5.0磷酸鹽-檸檬酸緩沖液溶解,冰浴下超聲波破碎,于4℃、10 000 r/min離心20 min,上清液即為胞內(nèi)粗酶液。
向胞內(nèi)粗酶液中緩慢加入硫酸銨至95%飽和度,邊加邊緩慢攪拌至硫酸銨完全溶解,在4℃冰箱中放置3 h,于4℃、8 000 r/min離心20 min,棄去上清液,得沉淀。沉淀物用pH值5.0的磷酸鹽-檸檬酸緩沖液溶解,殘留的不溶性物質(zhì)通過離心除去,上清酶液于4℃下透析24 h,中間更換透析液兩次,得粗酶液。
1.2.2 酶活測(cè)定——高效液相色譜法(HPLC)
1.2.2.1 離子液體中酶催化反應(yīng)體系
取1 ml 60%蔗糖溶液(用pH值5.0磷酸鹽-檸檬酸緩沖液配制),加至1 ml離子液體中,再加入酶液0.5 ml,于40℃恒溫水浴反應(yīng)24 h[5],沸水浴中10 min終止反應(yīng)。
1.2.2.2 酶活定義
在上述反應(yīng)條件下,每分鐘生成1 μmol蔗果三糖所需要的酶量為一個(gè)酶活力單位(U),用U/ml表示。
1.2.2.3 酶活計(jì)算
式中:m——蔗果三糖的量(mg);
504.44——蔗果三糖的摩爾質(zhì)量(g/mol);
t——反應(yīng)時(shí)間(min);
V——酶液體積(ml)。
1.2.2.4 蔗果三糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
準(zhǔn)確稱取0.02 g蔗果三糖標(biāo)準(zhǔn)品,加水溶解并定容至10 ml,配制成2 mg/ml標(biāo)準(zhǔn)母液,再分別稀釋成濃度為1、0.4、0.2、0.1 mg/ml的標(biāo)準(zhǔn)溶液,用HPLC進(jìn)行檢測(cè)分析,以蔗果三糖濃度為橫坐標(biāo),色譜峰面積為縱坐標(biāo)作圖。
1.2.2.5 樣品處理
酶反應(yīng)后的樣品液離心,除去蛋白沉淀,上清液用純水適當(dāng)稀釋,再用0.45 μm微孔濾膜過濾,然后進(jìn)行HPLC分析。
1.2.2.6 HPLC檢測(cè)條件[6-7]
檢測(cè)器為蒸發(fā)光散射檢測(cè)儀,色譜柱為Amide柱(46 mm×250 mm,內(nèi)經(jīng)×長度),流動(dòng)相為乙腈∶水=80∶20,流速1.0 ml/min,進(jìn)樣量10 μl,柱溫35 ℃,管溫70 ℃,分析時(shí)間40 min,對(duì)照為1.0 mg/ml的蔗果三糖、蔗糖、葡萄糖和果糖標(biāo)準(zhǔn)品。
1.2.3 離子液體種類對(duì)酶活的影響
選擇疏水性離子液體[BMIM][PF6]和親水性離子液體[BMIM][BF4]純?nèi)軇┘尤敕磻?yīng)體系中[8-10],酶催化反應(yīng)后通過HPLC測(cè)定反應(yīng)產(chǎn)物蔗果三糖的量,考察離子液體種類對(duì)β-呋喃果糖苷酶催化活性的影響。
1.2.4 離子液體濃度對(duì)酶活的影響
選擇1.2.3得到的最佳離子液體,用緩沖液配制成濃度為25%、50%、75%、100%(V/V)的離子液體溶液,加入反應(yīng)體系中,酶催化反應(yīng)后通過HPLC測(cè)定反應(yīng)產(chǎn)物蔗果三糖的量,考察離子液體濃度對(duì)β-呋喃果糖苷酶催化活性的影響。
1.2.5 離子液體中酶學(xué)特性研究
1.2.5.1 溫度對(duì)酶活的影響
將反應(yīng)體系分別置于 35、40、45、50、55 ℃和60℃水浴中進(jìn)行反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后取樣進(jìn)行HPLC分析,確定酶的最適反應(yīng)溫度。
1.2.5.2 酶的熱穩(wěn)定性研究
將酶液分別置于30、40、50、60、70、80 ℃水浴中5 h,分別取上述酶液加入反應(yīng)體系中,進(jìn)行反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后取樣進(jìn)行HPLC分析,確定酶的熱穩(wěn)定性。
1.2.5.3 pH值對(duì)酶活的影響
分別用pH值4.0、4.6、5.2、5.8、6.4、7.0的磷酸鹽-檸檬酸緩沖液配制60%的蔗糖溶液,添加到離子液體反應(yīng)體系中,再加入酶液進(jìn)行反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后取樣進(jìn)行HPLC分析,確定酶的最適pH值。
1.2.5.4 酶的pH值穩(wěn)定性研究
分別用pH值3~8的磷酸鹽-檸檬酸緩沖液溶解經(jīng)硫酸銨沉淀后的酶,室溫保持5 h,分別取上述酶液加入反應(yīng)體系中,反應(yīng)結(jié)束后取樣進(jìn)行HPLC分析,確定酶的pH值穩(wěn)定性。
1.2.5.5 底物對(duì)酶活性的影響
分別配制15%、30%、45%和60%濃度的蔗糖溶液,添加到離子液體中,再加入酶液,反應(yīng)24 h后取樣進(jìn)行HPLC分析,確定最佳底物濃度。
1.2.5.6 水相和離子液體中酶動(dòng)力學(xué)參數(shù)的測(cè)定
用pH值5.2的磷酸鹽-檸檬酸緩沖液配制不同濃度(0.4、0.6、0.8、1.0、2.0 mol/l)的蔗糖溶液,各取1 ml,加入0.5 ml酶液,再加入1 ml緩沖液。于40℃恒溫水浴反應(yīng)2 h,置沸水浴中10 min,終止反應(yīng),取樣進(jìn)行HPLC分析。
用pH值5.2的磷酸鹽-檸檬酸緩沖液配制不同濃度(0.4、0.6、0.8、1.0、2.0 mol/l)的蔗糖溶液,各取1 ml,加入0.5 ml酶液,再加入1 ml 50%離子液體[BMIM][PF6]。于40℃恒溫水浴反應(yīng)2 h后,置沸水浴中10 min,終止反應(yīng),取樣進(jìn)行HPLC分析。
反應(yīng)初速度(V)定義為單位時(shí)間內(nèi),反應(yīng)體系中的蔗果三糖濃度的增加量,計(jì)算公式如下。
式中:M——反應(yīng)時(shí)刻蔗果三糖的濃度(mmol/l);
M0——反應(yīng)初使時(shí)刻蔗果三糖的濃度(mmol/l,M0=0);
t——反應(yīng)時(shí)間(min)。
以蔗果三糖濃度為橫坐標(biāo),色譜峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1所示。
圖1 蔗果三糖標(biāo)準(zhǔn)曲線
將終濃度為1.0 mg/ml的混合標(biāo)準(zhǔn)糖液進(jìn)行HPLC分析,結(jié)果如圖2所示。
圖2 混合標(biāo)準(zhǔn)糖液的HPLC圖譜
將60%蔗糖底物和酶液分別加入疏水性離子液體[BMIM][PF6]和親水性離子液體[BMIM][BF4]中,在相同條件下進(jìn)行酶反應(yīng),以水相為對(duì)照,HPLC分析結(jié)果如圖3~圖5可知。
分別對(duì)圖3~圖5中的蔗果三糖峰面積進(jìn)行積分,得到不同反應(yīng)體系中酶催化反應(yīng)產(chǎn)物蔗果三糖的量,由外標(biāo)法計(jì)算得到β-呋喃果糖苷酶在水相、[BMIM][PF6]和[BMIM][BF4]中的酶活力分別為0.155 7、0.294 8 U/ml和0.083 8 U/ml。由此可見,在相同的反應(yīng)條件下,β-呋喃果糖苷酶在疏水性離子液體[BMIM][PF6]中的催化活性比水相中提高了89.3%,而在親水性離子液體[BMIM][BF4]中的催化活性比水相中降低了46.2%。分析原因可能是反應(yīng)體系的極性影響酶的活性。由于離子液體[BMIM][BF4]的極性大于[BMIM][PF6],在極性較高的環(huán)境中,酶分子的構(gòu)象變化較大從而導(dǎo)致酶催化位點(diǎn)的部分失活。另外,離子液體的親水性會(huì)導(dǎo)致維持酶結(jié)構(gòu)與功能的水分子被離子液體剝奪,對(duì)酶活性產(chǎn)生一定影響。由于離子液體[BMIM][BF4]的親水性大于[BMIM][PF6]的親水性,使酶在[BMIM][BF4]中的部分活性喪失[11-12]。因此選擇疏水性離子液體[BMIM][PF6]為反應(yīng)介質(zhì)。
圖3 水相中酶催化反應(yīng)產(chǎn)物的HPLC圖譜
圖4 離子液體[BMIM][PF6]中酶催化反應(yīng)產(chǎn)物的HPLC圖譜
圖5 離子液體[BMIM][BF4]中酶催化反應(yīng)產(chǎn)物的HPLC圖譜
分別在25%、50%、75%、100%(V/V)的疏水性離子液體[BMIM][PF6]中進(jìn)行酶催化反應(yīng),對(duì)產(chǎn)物進(jìn)行HPLC分析,離子液體濃度對(duì)酶活的影響結(jié)果如圖6所示。
由圖6可知,隨著疏水性離子液體[BMIM][PF6]濃度的增大,酶活呈先增大后減小的趨勢(shì)。當(dāng)疏水性離子液體[BMIM][PF6]濃度為50%時(shí),β-呋喃果糖苷酶的轉(zhuǎn)移活性最大。原因可能是適當(dāng)濃度的離子液體能促進(jìn)底物和酶的結(jié)合,使酶活增大;但離子液體濃度過大,反應(yīng)體系的黏度增大和離子強(qiáng)度較高,增大了傳質(zhì)阻力,影響底物和酶分子的結(jié)合,從而使酶活降低[13]。因此選擇50%疏水性離子液體[BMIM][PF6]作為后續(xù)反應(yīng)的最佳濃度。
將60%蔗糖與酶液加入50%疏水性離子液體[BMIM][PF6]中,分別于35、40、45、50、55、60 ℃水浴中反應(yīng)24 h,測(cè)定酶活,溫度對(duì)酶活的影響結(jié)果如圖7所示。
圖6 離子液體濃度對(duì)酶活性的影響
圖7 β-呋喃果糖苷酶的最適溫度
溫度不僅影響酶的活性,還會(huì)影響離子液體的黏度。溫度升高,離子液體的黏度降低,使酶和底物在反應(yīng)介質(zhì)中分散更均勻;但溫度過高,酶的活性構(gòu)象遭到破壞,導(dǎo)致酶活降低甚至喪失[14]。由圖7可知,在小于40℃范圍內(nèi),β-呋喃果糖苷酶的活性隨著反應(yīng)溫度的升高而增大;在40~60℃范圍內(nèi),酶活隨著溫度的升高而降低。由此確定,β-呋喃果糖苷酶的最適溫度為40℃。
將酶液分別置于30、40、50、60、70、80 ℃水浴中保溫5 h,分別取上述酶液和60%蔗糖加入疏水性離子液體[BMIM][PF6]中進(jìn)行反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后測(cè)定剩余酶活,結(jié)果如圖8所示。
由圖8可知,β-呋喃果糖苷酶在30~50℃范圍內(nèi)是穩(wěn)定的,保溫5 h后殘余酶活達(dá)80%以上;溫度大于50℃時(shí),酶活力急劇下降;當(dāng)溫度達(dá)到80℃時(shí),酶活幾乎全部喪失。
分別將不同pH值(4.0、4.6、5.2、5.8、6.4、7.0)緩沖液配制的60%蔗糖溶液和酶液加入疏水性離子液體[BMIM][PF6]中催化反應(yīng)24 h,測(cè)定酶活,pH值對(duì)酶活的影響結(jié)果如圖9所示。
圖8 β-呋喃果糖苷酶的熱穩(wěn)定性
圖9 β-呋喃果糖苷酶的最適pH值
pH值不僅會(huì)影響酶的活性,還會(huì)影響底物與酶復(fù)合物的解離狀態(tài),從而影響酶與底物的結(jié)合;過酸或過堿的環(huán)境還可使酶變性失活。由圖9可知,β-呋喃果糖苷酶的最適pH值為5.2,小于或大于此pH值β-呋喃果糖苷酶的轉(zhuǎn)移活性均降低。
將酶在不同pH值緩沖液中放置5 h,分別取上述酶液和60%蔗糖加入疏水性離子液體[BMIM][PF6]中反應(yīng)24 h,測(cè)定剩余酶活,結(jié)果如圖10所示。
圖10 β-呋喃果糖苷酶的pH值穩(wěn)定性
由圖10可知,在pH值4.5~6.5范圍內(nèi),β-呋喃果糖苷酶具有較好的穩(wěn)定性,酶活力保持在80%以上;pH值達(dá)到8.0時(shí),酶活力損失最多。
分別將不同濃度(15%、30%、45%、60%)的蔗糖溶液與酶液加入疏水性離子液體[BMIM][PF6]中,反應(yīng)24 h后測(cè)定酶活力,結(jié)果如圖11所示。
圖11 底物濃度對(duì)酶活性的影響
由圖11可以看到,蔗糖濃度在15%~60%范圍內(nèi),β-呋喃果糖苷酶的轉(zhuǎn)移活性隨著蔗糖濃度的增大而升高,說明增大底物濃度,有利于反應(yīng)的進(jìn)行和產(chǎn)物的合成。由于蔗糖溶解度的原因,蔗糖濃度不再增大。由此確定,β-呋喃果糖苷酶的最適底物濃度為60%。
為進(jìn)一步了解離子液體對(duì)β-呋喃果糖苷酶催化蔗糖反應(yīng)生成蔗果三糖的影響,比較研究了水相和離子液體中酶反應(yīng)的動(dòng)力學(xué)參數(shù)[13]。
米氏方程兩側(cè)取倒數(shù),得到下面方程式:
以底物濃度的倒數(shù)l/[S]為橫坐標(biāo),反應(yīng)初速度的倒數(shù)1/V為縱坐標(biāo)作圖,結(jié)果如圖12所示。
圖12 β-呋喃果糖苷酶的Lineweaver-Burk圖
由圖12可知,l/[S]對(duì)1/V進(jìn)行線性擬合,計(jì)算得到水相中動(dòng)力學(xué)參數(shù)Km和Vmax值分別為1.475 mol/l和1.131 mmol/(min·l),50%疏水性離子液體[BMIM][PF6]中動(dòng)力學(xué)參數(shù)Km和Vmax值分別為1.081 mol/l和1.585 mmol/(min·l)。根據(jù)酶反應(yīng)理論,米氏常數(shù)Km為酶促反應(yīng)的特征常數(shù),反映了酶與底物的親和能力,Km值大,表示酶與底物的親和力小,反之則大[15]。由上面結(jié)果可知,在50%疏水性離子液體[BMIM][PF6]中酶的Km值比水相中的小,說明疏水性離子液體[BMIM][PF6]的存在增強(qiáng)了β-呋喃果糖苷酶和底物的親和能力,從而使β-呋喃果糖苷酶在疏水性離子液體[BMIM][PF6]中的活性增加。最大反應(yīng)速度Vmax則表示酶催化反應(yīng)能力的大小,Vmax大,反應(yīng)能力越強(qiáng)。由上面的結(jié)果可知,50%疏水性離子液體[BMIM][PF6]中的Vmax值比水相中的大,說明50%離子液體[BMIM][PF6]的反應(yīng)體系比水相體系更有利于提高β-呋喃果糖苷酶的轉(zhuǎn)移活性。
①與水相對(duì)比,β-呋喃果糖苷酶在疏水性離子液體[BMIM][PF6]中的酶催化活性提高了89.3%,而在親水性離子液體[BMIM][BF4]中的酶催化活性降低了46.2%,且50%疏水性離子液體[BMIM][PF6]是β-呋喃果糖苷酶催化蔗糖合成蔗果三糖的最佳反應(yīng)介質(zhì)。
②在50%疏水性離子液體[BMIM][PF6]中,β-呋喃果糖苷酶的最適蔗糖濃度為60%,最適溫度為40℃,最適pH值為5.2,酶在30~50℃及pH值4.5~6.5范圍內(nèi)有較好的穩(wěn)定性。
③疏水性離子液體[BMIM][PF6]的存在增強(qiáng)了β-呋喃果糖苷酶和底物的親和能力,更有利于提高β-呋喃果糖苷酶的轉(zhuǎn)移活性。