凌峰,王曉春,陳珵,余敏,朱虹,羅彩鳳,邵世和
(1.江蘇大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與醫(yī)學(xué)技術(shù)學(xué)院,江蘇鎮(zhèn)江212013;2.昆山市中醫(yī)醫(yī)院檢驗(yàn)科,江蘇蘇州215300;3.江蘇大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院,江蘇鎮(zhèn)江212013)
幽門螺桿菌(Helicobacter pylori,H.pylori)為人類胃部常見致病菌之一,其感染在世界范圍內(nèi)流行。H.pylori感染與多種胃腸道疾病的發(fā)生密切相關(guān),如胃炎、消化性潰瘍、胃癌和胃黏膜相關(guān)淋巴樣組織淋巴瘤[1]。高致病性H.pylori存在一個(gè)細(xì)胞毒素相關(guān)基因致病島(cytotoxin associated gene pathogenicity island,cag PAI)結(jié)構(gòu),編碼重要的 H.pylori相關(guān)毒力蛋白和1種Ⅳ型分泌系統(tǒng)[2]。該Ⅳ型分泌系統(tǒng)中的部分蛋白與根癌農(nóng)桿菌 (Agrobacterium tumefaciens,A.tumefaciens)的經(jīng)典Ⅳ型分泌系統(tǒng)——VirB/D4系統(tǒng)存在同源性[3]。目前仍有許多cag PAI基因編碼蛋白僅存在于H.pylori中,且功能未知,cag1基因即為其中之一。
本研究以cag PAI首個(gè)編碼基因cag1作為研究對(duì)象,擬用同源重組技術(shù)構(gòu)建cag1基因缺陷的自殺質(zhì)粒;通過(guò)電擊轉(zhuǎn)化細(xì)菌,抗性篩選出cag1基因缺陷株,并將其破壞GES-1細(xì)胞的能力與野生株進(jìn)行比較。
1.1.1 菌株、細(xì)胞株與質(zhì)粒 H.pylori NCTC11637由中國(guó)疾病預(yù)防控制中心傳染病研究所張建中教授饋贈(zèng),人胃上皮GES-1細(xì)胞由江蘇大學(xué)周天戟教授饋贈(zèng),H.pylori自殺質(zhì)粒pBluescript SKⅡ(-)載體由韓國(guó)國(guó)立慶尚大學(xué)微生物學(xué)教研室Seung-chul Baik教授饋贈(zèng)。大腸埃希菌(E.coli)DH5α由江蘇大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與醫(yī)學(xué)技術(shù)學(xué)院實(shí)驗(yàn)室保存。
1.1.2 主要試劑 哥倫比亞培養(yǎng)基、微需氧袋、胰蛋白胨、酵母提取物購(gòu)自O(shè)xoid公司;小牛血清購(gòu)自杭州四季青生物工程材料生物公司;三羥甲基氨基甲烷(Tris)、SDS購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;平衡酚、RNA酶購(gòu)自Generay生物公司;1 000 bp DNA標(biāo)準(zhǔn)參照物、限制性核酸內(nèi)切酶EcoR I、BamH I、Kpn I、Xho I購(gòu)自 Thermo公司;DL2000 DNA 標(biāo)準(zhǔn)參照物、Taq DNA聚合酶、dNTP、T4DNA連接酶、膠回收試劑盒購(gòu)自TaKaRa公司;引物由上海英濰捷基生物工程有限公司合成。
1.1.3 主要儀器 核酸檢測(cè)儀(Eppendorf公司);基因擴(kuò)增儀(Applied Biosystems公司);凝膠成像系統(tǒng)(Syngene公司);高速冷凍離心機(jī)(Heraeus公司);恒溫水箱(上海醫(yī)療器械公司);搖床(上海福瑪實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司);電穿孔儀(Bio-Rad公司);電泳儀(南京馳順科技有限公司);CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱(Thermo公司);倒置生物顯微鏡系統(tǒng)(Nikon公司)。
1.2.1 cag1基因兩側(cè)同源臂的擴(kuò)增 根據(jù)基因庫(kù)中的H.pylori全基因組序列,設(shè)計(jì)cag1基因上游和下游同源臂序列F1、F2的引物(表1),cag1基因全長(zhǎng)348 bp,引物P1/P2用于擴(kuò)增F1,引物P3/P4用于擴(kuò)增F2。以H.pylori NCTC11637基因組DNA為模板,進(jìn)行PCR擴(kuò)增。擴(kuò)增條件:95℃ 5 min,95℃30 s,50 ℃ 30 s,72 ℃ 60 s,35 個(gè)循環(huán),72 ℃10 min;PCR產(chǎn)物經(jīng)2%瓊脂糖凝膠電泳,EB染色后通過(guò)凝膠電泳圖像分析系統(tǒng)分析鑒定,使用膠回收試劑盒回收產(chǎn)物,-20℃保存。
表1 引物序列Tab 1 Sequence of primers
1.2.2 自殺質(zhì)粒 pBluescript/Δcag1 ∶∶Kmr的構(gòu)建
膠回收上下游同源臂片段與pMD-18T載體,通過(guò)T4DNA連接酶4℃連接16 h。將連接后的混合物,通過(guò)熱擊轉(zhuǎn)化入 E.coli DH5α,然后涂布于含100 μg/mL氨芐西林的LB固體培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)12 h。長(zhǎng)出陽(yáng)性菌落后,挑下繼續(xù)接種于含100 μg/mL氨芐西林的LB液體培養(yǎng)基內(nèi),37℃振搖過(guò)夜,按照分子克隆指南中堿裂解法抽提細(xì)菌質(zhì)粒,并進(jìn)行酶切鑒定。膠回收上下游同源臂F1與F2,酶切兩個(gè)片段與含卡那霉素抗性(Kmr)片段的pBluescript載體,分步進(jìn)行連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至E.coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞,轉(zhuǎn)化后涂布于含50 μg/mLKmr的LB平板上,37℃培養(yǎng)12 h,挑取單個(gè)菌落接種于含50 μg/mLKmr的LB液體培養(yǎng)基,37℃振搖過(guò)夜后抽提質(zhì)粒,進(jìn)行酶切鑒定,構(gòu)建自殺質(zhì)粒pBluescript/Δcag 1 ∶∶Kmr。
1.2.3 cag1基因缺陷株的構(gòu)建 H.pylori NCTC11637在哥倫比亞固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)72 h后,刮取細(xì)菌至1 mL 10%蔗糖與甘油的混合溶液,4℃ 5 000 r/min離心10 min(重復(fù)3次);沉淀重懸于100 μL 10%蔗糖甘油混合溶液中,4℃或冰上孵育10~15 min;加自殺質(zhì)粒約25 μg,4℃或冰上再次孵育5~10 min;移入冰預(yù)冷的0.2 cm規(guī)格大小的電擊杯,準(zhǔn)備點(diǎn)擊轉(zhuǎn)化。將電擊杯放入電擊儀器上的正確位置,確保正負(fù)極連接正確,將儀器工作條件設(shè)為25 F,2.5 kV,200 Ω,電擊5 s后,立即將電擊杯中的液體全部均勻涂布于含12.5 μg/mL卡那霉素的哥倫比亞平板上,37℃微需氧培養(yǎng)72 h。
收集培養(yǎng)細(xì)菌后進(jìn)行尿素酶以及細(xì)菌革蘭染色鑒定,提取基因組DNA進(jìn)行PCR鑒定。以上游同源臂F1的上游引物P1和下游同源臂F2的下游引物P4,進(jìn)行 PCR擴(kuò)增。反應(yīng)條件:94℃ 5 min,94 ℃ 30 s,50 ℃ 30 s,72 ℃ 60 s,35個(gè)循環(huán),72 ℃10 min,以野生株作為PCR擴(kuò)增對(duì)照。擴(kuò)增結(jié)果送上海英濰捷基生物工程公司測(cè)序。鑒定無(wú)誤后,證明突變株構(gòu)建成功,將其命名為Δcag1。
1.2.4 胃上皮 GES-1細(xì)胞與 H.pylori野生株及cag1基因缺陷株共培養(yǎng) 胃上皮GES-1細(xì)胞按照常規(guī)方法培養(yǎng)2 d,H.pylori野生株和缺陷株Δcag1按照微需氧方法培養(yǎng)3 d,然后按照MOI=300∶1的比例,于細(xì)胞中加入細(xì)菌,培養(yǎng)8 h。倒置顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)。
以H.pylori NCTC11637基因組DNA為模板,引物P1/P2、P3/P4分別用于擴(kuò)增上游同源臂F1(598 bp)和下游同源臂F2(737 bp)。擴(kuò)增產(chǎn)物見圖1。
圖1 cag1基因上下游同源臂PCR產(chǎn)物Fig 1 PCR amplification of F1 and F2 fragments of cag1 gene
自殺質(zhì)粒 pBluescript/Δcag1∶∶Kmr由上下游同源臂與pBlueKM40載體連接后構(gòu)建完成,進(jìn)行酶切鑒定。經(jīng)KpnⅠ、XhoⅠ雙酶切后,出現(xiàn)約598 bp片段,即為F1片段;經(jīng)EcoRⅠ、BamHⅠ雙酶切后,出現(xiàn)約737 bp片段,即為F2片段;經(jīng)KpnⅠ、BamHⅠ酶切后,出現(xiàn)約2 700 bp大小的片段,即為F1、F2、Kmr基因相加片段。符合設(shè)計(jì)結(jié)果。見圖2。
圖2 自殺質(zhì)粒的酶切鑒定Fig 2 Identification of the suicide vector by restricted enzyme digestion
使用野生株、經(jīng)卡那霉素篩選的陽(yáng)性細(xì)菌為模板,通過(guò)cag1基因同源臂F1上游引物P1和F2下游引物P4作PCR鑒定。結(jié)果顯示,野生株P(guān)CR產(chǎn)物約為1 400 bp,缺陷株P(guān)CR產(chǎn)物約為2 700 bp,與設(shè)計(jì)結(jié)果相符。擴(kuò)增產(chǎn)物測(cè)序結(jié)果也符合預(yù)期結(jié)果,證明cag1基因缺陷株構(gòu)建成功。見圖3。
圖3 H.pylori cag1基因缺陷株的產(chǎn)物鑒定Fig 3 Identification of H.pylori cag1 gene mutant
H.pylori NCTC11637野生株和cag1基因缺陷株分別與GES-1細(xì)胞共培養(yǎng)8 h的結(jié)果顯示,野生株感染后的細(xì)胞幾乎都被破壞,無(wú)正常形態(tài),出現(xiàn)破碎、分散、延長(zhǎng)和不規(guī)則變化的現(xiàn)象;而cag1基因缺陷株感染的細(xì)胞更接近于未感染細(xì)胞,仍存在大量梭形的正 常細(xì)胞,較少出現(xiàn)細(xì)胞破壞的現(xiàn)象。見圖4。
圖4 GES-1細(xì)胞與H.pylori野生株和cag1基因缺陷株共培養(yǎng)后的形態(tài)學(xué)觀察Fig 4 Morphological image of GES-1 cells infected with the H.pylori wild-type strain and cag1 gene mutant strain
H.pylori是胃部疾病的重要病原體,其全球感染率高達(dá)50%,已成為世界重大公共衛(wèi)生問(wèn)題。國(guó)際癌癥研究機(jī)構(gòu)(IARC)將其列為第一類致癌原[4]。近期文獻(xiàn)報(bào)道了cag PAI及其編碼的相關(guān)毒力蛋白CagA 在 H.pylori感染致病中的重要性[5-6]。流行病學(xué)研究證明,cag PAI陽(yáng)性的H.pylori菌株致病性明顯高于cag PAI陰性株[7]。整個(gè)cag PAI區(qū)域長(zhǎng)達(dá)35 000 ~40 000 bp,包含29 ~31 個(gè)基因[8-9]。其編碼蛋白構(gòu)成一種類似菌毛樣結(jié)構(gòu)的Ⅳ型分泌系統(tǒng),該結(jié)構(gòu)伸出細(xì)菌表面,可將毒力因子注入宿主細(xì)胞[10]。該Ⅳ型分泌系統(tǒng)的蛋白中有11個(gè)與A.tumefaciens中的經(jīng)典 VirB/D4系統(tǒng)同源[3]。
目前,關(guān)于cag1基因功能的研究甚少。但在H.pylori感染的胃組織標(biāo)本中,cag1基因表達(dá)水平極高。與其相似的高表達(dá)基因還有尿素酶基因和過(guò)氧化氫酶基因等,上述基因功能與細(xì)菌存活和生長(zhǎng)密切相關(guān),說(shuō)明在惡劣環(huán)境下cag1基因可能對(duì)維持細(xì)菌存活具有重要的作用[11]。生物信息學(xué)分析結(jié)果顯示,cag1編碼蛋白存在信號(hào)肽,在N端第21和22個(gè)氨基酸位置有切割位點(diǎn),并且預(yù)測(cè)其可能是一種新型的分泌蛋白[12]。
本研究以cag PAI首個(gè)編碼基因cag1作為研究對(duì)象,利用同源重組原理,構(gòu)建cag1基因的缺陷株。選用克隆質(zhì)粒 pBluescript SKⅡ(-)構(gòu)建自殺質(zhì)粒,并在載體中插入一個(gè)含啟動(dòng)子的Kmr基因片段,采用PCR方法擴(kuò)增得到cag1基因兩側(cè)片段F1(598 bp)與F2(737 bp),作為同源臂連接于載體抗性基因片段的上下游,成功構(gòu)建cag1基因缺陷自殺質(zhì)粒[13]。采用電擊轉(zhuǎn)化技術(shù)將該質(zhì)粒轉(zhuǎn)化入野生株。由于pBluescript SKⅡ(-)在H.pylori中無(wú)法復(fù)制,但具有自殺性,致細(xì)菌染色體與載體發(fā)生同源重組,使Kmr基因置換野生株的cag1基因,通過(guò) Kmr篩選cag1基因敲除的缺陷株 pBluescript/Δcag1∶∶Kmr得以建立,并用 PCR方法鑒定該缺陷株。H.pylori感染宿主細(xì)胞后,會(huì)誘導(dǎo)細(xì)胞形態(tài)發(fā)生變化,導(dǎo)致細(xì)胞死亡。這種細(xì)胞形態(tài)延長(zhǎng)的變化稱為蜂鳥樣改變。為了檢測(cè)cag1基因缺失對(duì)細(xì)菌毒力的影響,在獲得cag1基因缺陷株后,觀察H.pylori野生株和cag1基因缺陷株與GES-1細(xì)胞共培養(yǎng)后細(xì)胞形態(tài)的變化。結(jié)果顯示,野生株感染細(xì)胞后8 h,細(xì)胞破碎、分散、延長(zhǎng)且形態(tài)不規(guī)則;而cag1基因缺陷株感染后,細(xì)胞大多形態(tài)正常。以上結(jié)果說(shuō)明,cag1基因缺失后,共培養(yǎng)的GES-1細(xì)胞破壞減少。因此,我們認(rèn)為cag1基因缺失使H.pylori的毒力減弱,但毒力減弱的具體機(jī)制尚有待進(jìn)一步研究。
[1] Peek RM Jr,Crabtree JE.Helicobacter infection and gastric neoplasia[J].J Pathol,2006,208(2):233 -248.
[2] Basso D,Plebani M,Kusters JG.Pathogenesis of Helicobacter pylori infection[J].Helicobacter,2010,15(Suppl 1):14-20.
[3] Akopyants NS,Clifton SW,Kersulyte D,et al.Analyses of the cag pathogenicity island of Helicobacter pylori[J].Mol Microbiol,1998,28(1):37 -53.
[4] Vogiatzi P,Cassone M,Luzzi I,et al.Helicobacter pylori as a class I carcinogen:physiopathology and management strategies[J].J Cell Biochem,2007,102(2):264-273.
[5] Hatakeyama M.The role of Helicobacter pylori CagA in gastric carcinogenesis[J].Int J Hematol,2006,84(4):301-308.
[6] Cendron L,Zanotti G.Structural and functional aspects of unique type IV secretory components in the Helicobacter pylori cag-pathogenicity island[J].FEBS J,2011,278(8):1223-1231.
[7] Kusters JG,Van Vliet AH,Kuipers EJ.Pathogenesis of Helicobacter pylori infection[J].Clin Microbiol Rev,2006,19(3):449-490.
[8] Covacci A,Telford JL,Del Giudice G,et al.Helicobacter pylori virulence and genetic geography[J].Science,1999,284(5418):1328-1333.
[9] Censini S,Lange C,Xiang Z,et al.cag,a pathogenicity island of Helicobacter pylori,encodes type I-specific and disease-associated virulence factors[J].Proc Natl Acad Sci U S A,1996,93(25):14648-14653.
[10] Tegtmeyer N,Wessler S,Backert S.Role of the cagpathogenicity island encoded type IV secretion system in Helicobacter pylori pathogenesis[J].FEBS J,2011,278(8):1190-1202.
[11] Boonjakuakul JK,Syvanen M,Suryaprasad A,et al.Transcription profile of Helicobacter pylori in the human stomach reflects its physiology in vivo[J].J Infect Dis,2004,190(5):946-956.
[12] Olbermann P,Josenhans C,Moodley Y,et al.A global overview of the genetic and functional diversity in the Helicobacter pylori cag pathogenicity island[J].PLoS Genet,2010,6(8):e1001069.
[13] Kim KM,Lee SG,Park MG,et al.Gamma-glutamyltranspeptidase of Helicobacter pylori induces mitochondria-mediated apoptosis in AGS cells[J].Biochem Biophys Res Commun,2007,355(2):562-567.
江蘇大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2013年5期