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    發(fā)酵法制備大豆肽的工藝優(yōu)化及其抗氧化能力*

    2013-10-30 03:34:16楊潔芳劉會平俞佳王淑王浩
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2013年6期
    關(guān)鍵詞:發(fā)酵法多肽蔗糖

    楊潔芳,劉會平,俞佳,王淑,王浩

    (天津科技大學(xué)食品工程與生物技術(shù)學(xué)院,天津,300457)

    肽(pepetides)是α -氨基酸以肽鍵形式連接而成的化合物,它是蛋白質(zhì)水解的中間產(chǎn)物[1],具有優(yōu)于大豆蛋白的食品功能性和生物活性。工業(yè)生產(chǎn)中主要的制備方法是復(fù)合酶解法,利用內(nèi)切酶將大豆蛋白水解成分子量較小的肽,再由外切酶將疏水性氨基酸從多肽鏈的末端切下來。但酶解法產(chǎn)肽率相對較低,成本較高,而且得到的終產(chǎn)品往往帶有明顯的苦味[2],限制了酶解法在多肽生產(chǎn)中的應(yīng)用。目前常用的脫苦方法有活性炭吸附[3],超濾[4],β-環(huán)糊精包埋[5],蛋白酶優(yōu)選[6],但這些方法都有一定的弊端,比如增加生產(chǎn)成本以及必需氨基酸的損失。

    發(fā)酵法是一種集制備與脫苦于一體的高效方法[7],肽段在微生物代謝活動中產(chǎn)生的混合酶作用下釋放,同時微生物也借助多肽提高生長代謝及產(chǎn)酶能力,循環(huán)協(xié)作,效率更高[8],而且產(chǎn)品的風(fēng)味、色澤等感官特性均優(yōu)于酶法水解的產(chǎn)物[9],增強了其在食品中的應(yīng)用。同時,固態(tài)發(fā)酵法具有節(jié)水節(jié)能,低能耗的優(yōu)點,有利于現(xiàn)代規(guī)?;a(chǎn)。本實驗通過實驗確定了高產(chǎn)大豆肽的工藝,并對肽粗品進(jìn)行抗氧化能力的測定,旨在為大豆肽的工業(yè)生產(chǎn)和應(yīng)用提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 主要原材料

    大豆分離蛋白(蛋白質(zhì)86.51%),大豆肽粉(淺黃色粉末,吸濕性強,短肽含量156.05 mg/g)購自北京山松生物制品有限公司。

    枯草芽孢桿菌(Bacillus subtitles)1398:由天津科技大學(xué)食品學(xué)院菌種保藏室提供。

    1.2 化學(xué)試劑與培養(yǎng)基

    1,1-二苯基-2-苦基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH),Gly-Gly-Tyr-Arg 標(biāo)準(zhǔn)品:美國Sigma公司產(chǎn)品。

    菌種計數(shù)及傳代培養(yǎng)基:牛肉膏0.5%,蛋白胨1.0%,NaCl 0.5%,pH 7.2,固體時加瓊脂2.0%。121 ℃滅菌15 ~20 min。

    種子培養(yǎng)基:牛肉膏0.5%,蛋白胨1.0%,NaCl 0.5%,pH 7.2,121 ℃滅菌15 ~20 min。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 肽含量的測定

    取0.1 g 干燥并研磨好的發(fā)酵產(chǎn)物,加入2.5 mL蒸餾水,于60 ℃水浴條件下浸提30 min。取等體積的10% TCA 加入到浸提液中,4 000 r/min 離心15 min,去除酸不溶性蛋白和長鏈肽沉淀。取3.0 mL 上清液于1 號試管中,0 號試管加3 mL 蒸餾水做參比,然后向2 支試管中分別加入2.0 mL 雙縮脲試劑,充分混勻,靜置10 min,1 000 r/min 離心10 min,在可見光分光光度計上,調(diào)節(jié)波長為540 nm,測定吸光度。重復(fù)操作3 次。

    式中:c—多肽的濃度;n—稀釋倍數(shù);v—多肽液的體積;w—多肽的質(zhì)量。

    1.3.2 平均肽鏈長度的測定[10]

    采用甲醛滴定法,在水解度較高時,水解度與平均肽鏈長度關(guān)系大約表示為:

    1.3.3 粗多肽抗氧化能力的測定

    將干燥的發(fā)酵產(chǎn)物溶于10 倍水溶液中,于55 ℃水浴鍋中恒溫浸提60 min,將上層溶液先用定性濾紙抽濾,得到較為澄清的肽混合液,再用0.22 μm 微孔濾膜進(jìn)行微濾,得到粗多肽溶液。將此溶液進(jìn)行真空旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),得到粗肽濃縮液,再分裝至平皿中進(jìn)行凍干,并進(jìn)行抗氧化能力的測定(DPPH·[11]、O2-·[12]、·OH[13]清除能力)。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 發(fā)酵法制備大豆蛋白活性肽工藝優(yōu)化

    2.1.1 蔗糖添加量對大豆肽的影響

    以大豆分離蛋白為基礎(chǔ)培養(yǎng)基,分別添加0.5%、1.0%、1.5%、2.0%、2.5%的蔗糖進(jìn)行單因素實驗。

    由圖1 可知,平均鏈長隨著蔗糖添加量的增加先增加后減少,而肽含量先略微增加后顯著下降,過量的碳源不但不能完全被微生物所利用,而且會影響菌種產(chǎn)酶水解蛋白的能力,使短肽水解成單個氨基酸的趨勢增強,而蛋白水解成短肽的趨勢減弱,當(dāng)蔗糖添加量達(dá)到2.0%后,短肽水解成單個氨基酸的程度大于蛋白水解成肽的程度,使得短肽含量和平均鏈長均顯著下降。綜合兩個指標(biāo)的考慮,選擇蔗糖添加量為1.0%為最優(yōu)。

    圖1 蔗糖添加量對大豆肽的影響Fig.1 Effect of sucrose content on soybean peptides

    2.1.2 水分添加量對大豆肽的影響

    選擇40%、60%、80%、100%、120%的水分添加量[14],接種量2.0%,36 ℃發(fā)酵培養(yǎng)48 h,進(jìn)行加水量的單因素實驗。

    由圖2 可知,隨著水分添加量的增加,大豆蛋白逐漸被水解成更短的肽鏈,而肽含量先增加后有降低的趨勢,2 個指標(biāo)均在加入多于60%的水后變化不大,說明水分添加量不足會嚴(yán)重影響菌種生長及代謝能力,而水分添加量達(dá)到60%以后,短肽水解成單個氨基酸的程度略大于蛋白水解成短肽的程度。水分添加量60%條件下,氧氣含量比較適合菌種的生長和酵解作用且能耗小不易污染,所以選擇水分添加量60%為最佳值進(jìn)行下面的單因素實驗。

    圖2 水分添加量對大豆肽的影響Fig.2 Effect of water content on soybean peptides

    2.1.3 接種量對大豆肽的影響

    加入確定量的蔗糖和水,選擇1.0%、2.0%、3.0%、4.0%、5.0%的接種量,在36 ℃條件下發(fā)酵48 h,進(jìn)行接種量的單因素實驗。

    由圖3 可知,隨著接種量的增加,蛋白逐步被酵解成短肽,在接種3.0%時達(dá)到最短,肽含量變化則呈先上升后下降的趨勢,同樣在接種3.0%時達(dá)到最大。說明接種量小,過量的碳氮源不能被充分利用,造成浪費。但接種量過大,水分及養(yǎng)分不能滿足細(xì)菌的生長代謝,菌種之間也會相互抑制,造成酶解產(chǎn)肽量顯著下降。所以選擇接種量3.0%為最佳的接種量。

    圖3 接種量對大豆肽的影響Fig.3 Effect of inoculation dose on soybean peptides

    2.1.4 發(fā)酵溫度對大豆肽的影響

    加入確定量的蔗糖和水,接種3.0%的枯草芽孢桿菌,分別在24、28、32、36、40 ℃條件下發(fā)酵48 h,進(jìn)行發(fā)酵溫度的單因素實驗。

    由圖4 可知,枯草芽孢桿菌在28 ~36 ℃生長良好,溫度低于28 ℃,菌種生長代謝緩慢,產(chǎn)肽量較小,高于28 ℃后,含肽量逐漸減小。而平均鏈長隨著溫度的升高先減小后增加,在32 ℃時達(dá)到最小值。說明32 ℃條件下菌種生長代謝處于最佳狀態(tài),能夠最大程度的產(chǎn)生較短的小肽,超過這一溫度,菌種生長代謝作用受抑制,內(nèi)切作用大于外切作用。綜合2 個指標(biāo)考慮,選擇32 ℃為最優(yōu)條件。

    圖4 發(fā)酵溫度對大豆肽的影響Fig.4 Effect of incubation temperature on soybean peptides

    2.1.5 發(fā)酵時間對大豆肽的影響

    加入確定量的蔗糖和水,接種確定量的枯草芽孢桿菌,在一定溫度下發(fā)酵24、36、48、60、72 h,進(jìn)行發(fā)酵時間的單因素實驗。

    由圖5 看出,隨著發(fā)酵時間的延長,菌種逐漸將蛋白分解成短肽甚至單個氨基酸,肽含量在36 h 時達(dá)到最大。而平均鏈長不斷減小,到48 h 后基本不變,說明時間過長,菌種進(jìn)入衰亡期,產(chǎn)酶能力下降。綜合兩個指標(biāo),選擇發(fā)酵36 h 為最佳。以此為依據(jù)設(shè)計正交實驗。

    圖5 發(fā)酵時間對大豆肽的影響Fig.5 Effect of incubation time on soybean peptides

    2.1.6 優(yōu)化發(fā)酵工藝的正交實驗

    經(jīng)過分析上面單因素實驗結(jié)果,設(shè)計了5 因素4水平正交實驗,實驗結(jié)果見表1。

    表1 L16(45)正交實驗設(shè)計及結(jié)果Table 1 L16(45)orthogonal experimental design and results

    根據(jù)正交實驗結(jié)果,各個因素對肽含量的影響順序依次為:接種量>蔗糖添加量>水分添加量>發(fā)酵溫度>發(fā)酵時間。最優(yōu)條件為:蔗糖添加量0.5%,水分添加量70%,接種量2.0%,32 ℃條件下發(fā)酵32 h。進(jìn)行驗證性實驗,測得短肽含量為252.95 mg/g。

    各個因素對平均肽鏈長度的影響順序依次為:水分添加量>發(fā)酵溫度>蔗糖添加量>接種量>發(fā)酵時間,最優(yōu)條件為:蔗糖添加量2.0%,水分添加量80%,接種量3.0%,32 ℃條件下發(fā)酵48 h。水分添加量對平均肽鏈長度的影響最顯著,水分既是微生物生長代謝必需的物質(zhì),又是酶水解蛋白質(zhì)的必要條件,水分添加量過低,對菌種的生長代謝和酶的水解作用都不利,但過高的水分又會使氧氣含量下降,不利于菌的生長。進(jìn)行驗證性實驗,測得平均肽鏈長度為4.0。

    表2 方差分析表Table 2 Table of variance analysis (n=5)

    綜合2 個指標(biāo)考慮,以肽含量為終指標(biāo)時用料更省,發(fā)酵周期更短,更利于工業(yè)生產(chǎn)需要。

    2.2 各樣品的抗氧化能力

    向體內(nèi)補充抗氧化劑,清除過多的自由基或中止體內(nèi)自由基反應(yīng),可防止線粒體腫脹和抑制膜的脂質(zhì)過氧化反應(yīng)、蛋白質(zhì)交連、多糖的降解等的發(fā)生,對保護(hù)生物膜結(jié)構(gòu)與功能的完整性,抑制自由基誘發(fā)的疾病和增強體質(zhì)以及治療疾病都有重要意義。各樣品的DPPH·、O2-·和·OH 清除率見表3。

    表3 樣品DPPH·、O2-·和·OH 清除能力Table 3 DPPH·,O2-· and ·OH clearance capacity of each sample

    由表3 看出,市售肽與發(fā)酵肽均有一定的DPPH·、O2-·和·OH 清除能力,且發(fā)酵肽3 種自由基清除率較市售品分別提高了119.53%,26.02% 和65.56%。說明發(fā)酵法制備大豆肽這一工藝更好的激發(fā)和保留了其中的抗氧化活性成分,有效提高了肽的自由基清除能力。

    3 結(jié)論

    本試驗以大豆肽含量以及平均肽鏈長度為指標(biāo),通過單因素實驗和正交實驗,對發(fā)酵法制備大豆肽的工藝進(jìn)行了優(yōu)化。確定最優(yōu)工藝條件:蔗糖添加量0.5%,水分添加量70%,接種量2.0%,32 ℃條件下發(fā)酵32 h,此條件下測得短肽含量為252.95 mg/g;蔗糖添加量2.0%,水分添加量80%,接種量3.0%,32 ℃條件下發(fā)酵48 h,此條件下測得平均肽鏈長度為4.0。發(fā)酵肽的DPPH·,O2-·和·OH 清除率分別為45.18%,55.50%和57.63%,較市售肽分別提高了119.53%,26.02%和65.56%。結(jié)果表明,發(fā)酵法制備大豆肽這一工藝有效的提高了肽的產(chǎn)率以及樣品的抗氧化能力。

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