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    IFN-γ基因啟動(dòng)子甲基化與慢加急性肝功能衰竭的相關(guān)性研究

    2013-10-17 13:31:30李鳳彩李月凱
    實(shí)用醫(yī)藥雜志 2013年11期
    關(guān)鍵詞:甲基化肝病肝功能

    李鳳彩,李月凱

    慢加急性肝功能衰竭是慢性肝病基礎(chǔ)上出現(xiàn)的以黃疸急劇加深、凝血功能障礙為特征的肝功能失代償[1]。IFN-γ是一個(gè)重要的免疫反應(yīng)調(diào)控因子,主要由活化的Th1細(xì)胞和NK細(xì)胞產(chǎn)生。最近研究表明慢加急性肝功能衰竭患者IFN-γ水平升高,IFN-γ可引起肝臟炎癥,參與慢加急性肝功能衰竭的發(fā)病過(guò)程[2]。

    甲基化是表達(dá)遺傳的一種重要機(jī)制,是指在DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(DNMTs)的介導(dǎo)下,以5-腺苷甲硫氨酸(SAM)為甲基供體,將胞嘧啶加上一個(gè)甲基變?yōu)?-甲基胞嘧啶的一種化學(xué)修飾過(guò)程,可導(dǎo)致基因的表達(dá)異常但DNA序列不發(fā)生改變[3],異常甲基化會(huì)導(dǎo)致很多疾病的發(fā)生。本研究通過(guò)測(cè)定慢加急性肝功能衰竭患者的IFN-γ基因啟動(dòng)子甲基化狀態(tài),探討IFN-γ基因啟動(dòng)子甲基化與慢加急性肝功能衰竭病情嚴(yán)重指標(biāo)的關(guān)系,為慢加急性肝功能衰竭的發(fā)病及預(yù)后提供新的思路。

    1 資料與方法

    1.1 研究對(duì)象 慢加急性肝功能衰竭患者20例。其中男17例,女3例;平均年齡(45.9±11.3)歲。診斷符合2006年《肝衰竭診療指南》。排除標(biāo)準(zhǔn):①急性妊娠脂肪肝;②藥物性肝炎,酒精性肝炎(男性>40g/d至少5年;女性>20g/d至少5年);③懷疑免疫性肝病,肝豆?fàn)詈俗冃?Wilson病)等代謝性肝病;④移植術(shù)后再感染乙肝導(dǎo)致重型肝炎者;⑤確有原發(fā)性肝癌病史;⑥有肝炎以外嚴(yán)重疾病史,包括嚴(yán)重的心臟、肺、腎臟、消化、神經(jīng)、精神疾病、免疫調(diào)節(jié)性疾病、代謝性疾病或惡性腫瘤等。

    1.2 方法 甲基化特異性PCR(MSP)反應(yīng):取新鮮外周靜脈血5 ml,肝素抗凝(25 U/ml),密度梯度離心法分離外周血單個(gè)核細(xì)胞(PMBc),按照德國(guó)QIAGEN公司的DNA提取試劑盒步驟提取DNA,按照上海杰美公司的DNA甲基化修飾試劑盒步驟進(jìn)行DNA轉(zhuǎn)化,運(yùn)用MSP擴(kuò)增,根據(jù)Methprimer軟件設(shè)計(jì)引物,序列如下:M引物:5’-AAGAGTTAATATTTTATTAGGGCGA -3’(上游引物),5’-TAAACTCCTTAAATCCTTTAACGAT -3’(下游引物),U引物:5’-TGAAGAGTTAATATTTTATTA GGGTGA-3’(上游引物),5’-TAAACTCCTTAAA TCCTTTAACAAT-3’(下游引物)。引物由上海生物工程公司合成。PCR反應(yīng)條件:預(yù)變性95℃ 3 min,95℃變性45 s,52℃退火1 min,72℃引物延伸45 s,共運(yùn)行35個(gè)循環(huán),最后72℃延伸10 min,4℃保存。取8μl PCR擴(kuò)增產(chǎn)物加樣后,進(jìn)行電泳,條件為120 V,35 min。電泳結(jié)束后,在紫外線下觀察結(jié)果并用凝膠電泳圖像分析系統(tǒng)分析結(jié)果。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS13.0軟件包進(jìn)行,結(jié)果用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差±s)表示,組間顯著性分析采用兩組獨(dú)立樣本資料的χ2檢驗(yàn),P<0.05為具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。

    2 結(jié)果

    2.1 IFN-γ基因啟動(dòng)子的甲基化狀態(tài) 在研究中,筆者用甲基化特異性PCR法(MSP)測(cè)定了慢加急性肝功能衰竭患者的甲基化程度,結(jié)果顯示:20例慢加急性肝功能衰竭患者,IFN-γ甲基化者12例,非甲基化者為8例。

    2.2 IFN-γ基因啟動(dòng)子甲基化與病情嚴(yán)重指標(biāo)的關(guān)系 慢加急性肝功能衰竭的診斷需要滿足血清TBIL>170μmol/L或每天上升速度>17.1μmol/L,血漿凝血酶原活動(dòng)度(PTA)<40%。終末期肝病模型(MELD)評(píng)分系統(tǒng)最早是由于決定肝臟移植器官分配的優(yōu)先權(quán)的需要而提出的,是判斷肝衰竭患者預(yù)后的評(píng)價(jià)體系。該系統(tǒng)是利用血清膽紅素(TBIL)、血肌酐(Cr)、凝血酶原時(shí)間的國(guó)際標(biāo)準(zhǔn)化比值(INR)及原發(fā)病因作為參數(shù)進(jìn)行量化而得出分值。MELD評(píng)分系統(tǒng)對(duì)肝衰竭患者的預(yù)后和生存率有良好的預(yù)測(cè)價(jià)值。本研究將TBIL、PTA、MELD評(píng)分作為評(píng)價(jià)ACLF患者病情嚴(yán)重程度的指標(biāo),分析兩組間TBIL、PTA、MELD評(píng)分,測(cè)得IFN-γ甲基化組TBIL水平明顯低于非甲基化組(P<0.01),見(jiàn)圖1。并測(cè)得IFN-γ甲基化組與非甲基化組比較PTA水平無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05),見(jiàn)圖2。再者,甲基化組MELD水平明顯低于非甲基化組(P <0.01),見(jiàn)圖3。

    圖1 兩組TBIL水平比較

    圖2 兩組PTA水平比較

    圖3 兩組MELD評(píng)分比較

    3 討論

    本研究所測(cè)得慢加急性肝功能衰竭患者的IFN-γ甲基化程度不同,而且不同的IFN-γ甲基化伴有不同的慢加急性肝功能衰竭病情嚴(yán)重程度指標(biāo)TBIL水平、MELD評(píng)分的不同。

    前人研究表明IFN-γ參與慢加急性肝功能衰竭的發(fā)病。孫穎等[3]曾報(bào)道,慢加急性肝功能衰竭患者的肝臟組織的IFN-γ水平明顯升高。Ohta等[4]報(bào)道,在重型肝炎的發(fā)病機(jī)制中,抗原特異性Thl分泌的IFN-γ起重要作用。姜榮龍等[5]報(bào)道,在慢性肝炎患者的外周血中,Th2細(xì)胞占大多數(shù),Th1細(xì)胞占少數(shù),但隨著肝臟炎癥活動(dòng)的加劇,Th1細(xì)胞比例則明顯增加。當(dāng)Th1細(xì)胞亞群占優(yōu)勢(shì)時(shí),其分泌的細(xì)胞因子IFN-γ可通過(guò)直接或間接的作用增強(qiáng)NK細(xì)胞、巨噬細(xì)胞活性,特別是CD8+細(xì)胞活性,促進(jìn)細(xì)胞免疫反應(yīng),加重肝臟的炎癥損傷[6]。

    Melvin等[7]分析了T細(xì)胞系 IFN-γ基因啟動(dòng)子區(qū)甲基化狀態(tài)和其表達(dá)的關(guān)系后發(fā)現(xiàn),IFN-γ基因啟動(dòng)子甲基化程度高時(shí),IFN-γ基因低表達(dá),反之,IFN-γ基因啟動(dòng)子甲基化程度低時(shí),IFN-γ基因高表達(dá),即IFN-γ基因表達(dá)水平和甲基化程度之間存在明顯負(fù)相關(guān)。Yano等[8]研究了Th1和Th2細(xì)胞的IFN-γ基因啟動(dòng)子的甲基化狀態(tài)后也得出了相似的結(jié)論,Th1的基因啟動(dòng)子是低甲基化的,Th1細(xì)胞可產(chǎn)生IFN-γ,而Th2的基因啟動(dòng)子是高甲基化的,Th2細(xì)胞不可產(chǎn)生IFN-γ,為了進(jìn)一步證實(shí)甲基化對(duì)于基因轉(zhuǎn)錄的調(diào)控作用,Yano用5’-氮胞苷處理Th2細(xì)胞,以抑制組蛋白去乙?;刚心嫉交騿?dòng)子區(qū)而抑制甲基化形成,從而導(dǎo)致Th2細(xì)胞IFN-γ基因啟動(dòng)子去甲基化,結(jié)果發(fā)現(xiàn)處理后的Th2細(xì)胞能夠分泌IFN-γ。

    綜上所述,IFN-γ啟動(dòng)子甲基化通過(guò)影響IFN-γ水平參與慢加急性肝功能衰竭的發(fā)病并影響其嚴(yán)重程度。

    [1]中華醫(yī)學(xué)會(huì)感染病分會(huì)肝衰竭及人工肝學(xué)組,中華醫(yī)學(xué)會(huì)肝病分會(huì)重型肝病與人工肝學(xué)組.肝衰竭診療指南[J].中華肝臟病雜志,2006,14(9):643 -646.

    [2]孫 穎,李保森,徐東平,等.肝內(nèi)IFN-γ及其分泌細(xì)胞在乙型慢加急性肝衰竭發(fā)病機(jī)制中的作用[J].傳染病信息,2008,21(4):227-230.

    [3]Wolffe AP.Epigenetics:regulation through repression[J].Science,1999,286(4):481 -486.

    [4]Ohta A,Sekimoto M,Sato M,et al.Indispensable role of TNF - alpha and IFN-gamma at the effector phase of liver injury mediated by Th1 cells specific to hepatitis B virus surface antigen[J].J Immunol,2000,165(2):956 - 961.

    [5]姜榮龍,盧橋生,駱抗先,等.慢性乙型病毒性感染者外周血T輔助細(xì)胞1、2型因子的表達(dá)[J].中華傳染病雜志,2000,18(1):26-28.

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    [7]Melvin AJ,McGurn ME,Bort SJ,et al.Hypomethylation of the interferon-gamma gene correlates with its expression by primaryT-lineage cells[J].Eur J Immunol,1995,25(4):426 -430.

    [8]Yano S,Ghosh P,Kusaba H,et al.Effect of promoter methylationon the regulation of IFN-gamma gene during in vitro differentiation of human peripheral blood T cells into a Th2 population[J].J Immunol,2003,171(24):2510 -2516.

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