唐 群,何澤云,陳 麗,徐文峰,曾海飛
(1.湖南中醫(yī)藥大學(xué),長沙410208;2.湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院,長沙410007)
研究指出,腎小管間質(zhì)部分的慢性氧缺失是促進(jìn)腎臟疾病進(jìn)展和纖維化的重要原因[1]。體外實(shí)驗(yàn)證明,缺氧可刺激腎小管上皮細(xì)胞和間質(zhì)成纖維細(xì)胞向肌成纖維細(xì)胞表型轉(zhuǎn)分化,參與腎間質(zhì)纖維化的發(fā)生、發(fā)展[2],缺氧主要通過缺氧誘導(dǎo)因子1α(hypoxia-inducible factor 1α,HIF-1α)發(fā)揮作用[3],后者可調(diào)控結(jié)締組織生長因子(connective tissue growth factor,CTGF)表達(dá)。現(xiàn)將本研究探討HIF-1α在慢性腎間質(zhì)纖維化中的作用以及六味地黃湯對其表達(dá)的影響報(bào)道如下。
1.1 材料
1.1.1 動(dòng)物 清潔級雄性SD大鼠30只,體質(zhì)量(200±10)g,由湖南中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供并飼養(yǎng)于湖南中醫(yī)藥大學(xué)SPF級動(dòng)物房。
1.1.2 藥物 六味地黃湯(熟地黃24g,山藥12g,山茱萸12 g,澤瀉9g,茯苓9g,牡丹皮9g)購自湖南中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院藥劑科。先將藥材用相當(dāng)于藥材5倍的自來水浸泡2 h,煮沸后再微火煎熬30min,過濾后收集煎液,原藥渣加少量水煎煮,取二煎液。將兩煎液混合,于水浴恒溫器上濃縮藥液至含生藥1g/mL。
1.1.3 主要試劑 一抗為兔抗大鼠HIF-1α、CTGF多克隆抗體(美國Santa Cruz),兔二步法檢測試劑盒(PV-6001)、二抗為非生物素標(biāo)記山羊抗兔IgG抗體(北京中杉金橋公司),DAB顯色試劑盒(武漢博士德公司),ECL化學(xué)發(fā)光試劑(美國Pierce公司)。
1.2 方法
1.2.1 造模 SD雄性大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后隨機(jī)分為假手術(shù)組(10只)、模型組(10只)和六味地黃湯組(10只)。假手術(shù)組打開腹腔暴露腎臟后避免牽拉腎臟,不切除腎臟。模型組、六味地黃湯組大鼠均在無菌條件下進(jìn)行5/6腎切除術(shù),以10%水合氯醛0.30mL/100g腹腔注射麻醉大鼠,常規(guī)消毒鋪巾,從左腹部切口,打開腹腔,靜脈夾夾住腎蒂后迅速切除左腎上下極(切除2/3),以吸收性明膠海綿壓迫止血,復(fù)位腎臟。1周后進(jìn)行第2次手術(shù),切除右側(cè)腎臟。右腎摘除術(shù)后第2天,六味地黃湯組予以六味地黃湯灌胃(生藥含量按公式:人的劑量×0.018×5/kg體質(zhì)量計(jì)算),每天1次,至處死為止;模型組、假手術(shù)組以等容積蒸餾水灌胃,給藥8周后全部處死,中途死亡的大鼠直接剔除。
1.2.2 標(biāo)本收集 各組大鼠分別于灌胃第8周后處死,處死前收集24h尿量,酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)檢測24h尿清蛋白(24urinary albumin,24hUAlb)。腹主動(dòng)脈采血分離血清,酶法測定血肌酐(serum creatinine,Scr)濃度,尿素酶-GLDH 法測定血尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)濃度。腎組織分為兩部分處理:(1)光鏡觀察。標(biāo)本用4%多聚甲醛固定,分別行HE染色、Masson染色及免疫組織化學(xué)檢測。(2)腎組織取出后立即放入液氮罐中,隨后轉(zhuǎn)入-80℃冰箱保存待用。
1.2.3 腎臟組織學(xué)檢查 腎組織經(jīng)4%多聚甲醛固定,梯度乙醇脫水、二甲苯透明、石蠟包埋、切片(厚度為3~4μm)后,分別進(jìn)行HE染色及Masson染色,Olympus顯微鏡觀察并拍照。
1.2.4 免疫組織化學(xué)染色 免疫組織化學(xué)采用兔二步法檢測試劑盒(PV-6001),一抗用兔抗大鼠抗體,一抗及工作濃度:HIF-1α(1∶100)、CTGF(1∶200),二抗用相應(yīng)羊抗兔抗體,染色呈棕褐色者為陽性染色。
1.2.5 圖像分析 Olympus顯微鏡觀察腎組織病理變化并拍照,每張切片隨機(jī)選取5個(gè)視野,用麥克奧迪數(shù)碼醫(yī)學(xué)分析系統(tǒng)(Motic Med 6.0)進(jìn)行圖像分析。測定視野內(nèi)免疫陽性細(xì)胞的平均灰度值,以灰度值進(jìn)行定量分析,測得組織細(xì)胞平均灰度值愈小,其蛋白水平愈高。
1.2.6 Western blot檢測 常規(guī)提取蛋白質(zhì)樣品,BCA法進(jìn)行蛋白質(zhì)定量。每泳道50μg蛋白,10%十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)凝膠電泳分離后濕轉(zhuǎn)至PVDF膜,封閉,加一抗,一抗及工作濃度:HIF-1α(1∶200)、CTGF(1∶300),4℃孵育過夜。洗膜,加相應(yīng)二抗(1∶2 000)室溫孵育1h,ECL試劑在暗室中發(fā)光,X線膠片曝光、顯影、定影。掃描測定條帶密度值,以與β-actin的比值作為表達(dá)強(qiáng)度。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 應(yīng)用SPSS18.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,計(jì)量資料以±s表示,組間比較采用t檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 六味地黃湯對5/6腎切除大鼠腎臟功能的影響 見表1。
2.2 六味地黃湯對5/6腎切除大鼠腎組織形態(tài)學(xué)的影響HE染色下,假手術(shù)組腎小球和腎小管結(jié)構(gòu)清晰,未見明顯異常;模型組腎小球系膜細(xì)胞明顯增生,硬化增多,腎小管明顯萎縮、消失,部分腎小管發(fā)生代償性擴(kuò)張,可見蛋白管型,腎間質(zhì)纖維化明顯,大量淋巴細(xì)胞浸潤。六味地黃湯組病變程度較模型組明顯減輕(圖1)。Masson染色下,假手術(shù)組腎小球和腎小管僅基底膜染成藍(lán)色,腎間質(zhì)無明顯膠原纖維;模型組腎間質(zhì)見大量染成藍(lán)色的膠原纖維;六味地黃湯組腎間質(zhì)可見少量膠原纖維,膠原沉積較模型組明顯減輕(圖2)。
2.3 六味地黃湯對5/6腎切除大鼠腎組織 HIF-1α、CTGF表達(dá)的影響
2.3.1 HIF-1α的表達(dá) 假手術(shù)組 HIF-1α微量表達(dá),主要在腎皮髓質(zhì)交界處,模型組和六味地黃湯組腎小管上皮細(xì)胞、間質(zhì)細(xì)胞胞質(zhì)和胞核中均表達(dá)增加,腎小球表達(dá)不明顯(圖3)。
表1 3組大鼠腎臟功能檢測結(jié)果(±s)
表1 3組大鼠腎臟功能檢測結(jié)果(±s)
*:P<0.05,與六味地黃湯組比較。
組別 n 24hUAlb(mg)BUN(mmol/L) Scr(μmol/L)假手術(shù)組 10 3.60±1.40* 6.49±0.98* 59.60±5.82*模型組 7 22.12±1.05* 13.54±1.33* 87.42±6.92*六味地黃湯組9 19.08±2.02 11.66±1.20 77.44±5.68
2.3.2 CTGF的表達(dá) 假手術(shù)組CTGF表達(dá)不明顯,模型組和六味地黃湯組腎小管上皮細(xì)胞、間質(zhì)細(xì)胞胞質(zhì)和胞核中CTGF均表達(dá)明顯增加,腎小球表達(dá)不明顯(圖4)。
2.3.3 腎組織HIF-1α、CTGF表達(dá)半定量分析 3組腎組織HIF-1α、CTGF表達(dá)在模型組最強(qiáng),六味地黃湯組次之,假手術(shù)組最弱。與六味地黃湯組比較,模型組HIF-1α、CTGF的表達(dá)明顯升高(P<0.05),見表2。
圖1 3組大鼠腎臟的病理改變(HE染色,×250)
圖2 3組大鼠腎臟的病理改變(Masson染色,×250)
圖3 3組大鼠腎組織HIF-1α的蛋白表達(dá)水平(IHC,×400)
圖4 3組大鼠腎組織CTGF的蛋白表達(dá)水平(IHC,×400)
圖5 3組大鼠腎組織HIF-1α蛋白表達(dá)電泳圖
表2 3組大鼠腎組織HIF-1α、CTGF表達(dá)的平均灰度值(±s)
表2 3組大鼠腎組織HIF-1α、CTGF表達(dá)的平均灰度值(±s)
*:P<0.05,與六味地黃湯組比較。
組別 n HIF-1αCTGF假手術(shù)組 10 215.30±24.60* 223.00±21.50*模型組 7 141.00±12.20* 137.60±14.10*六味地黃湯組9 170.70±10.90 184.20±11.40
2.4 六味地黃湯對5/6腎切除大鼠腎組織 HIF-1α、CTGF蛋白水平的影響 與六味地黃湯組比較,模型組HIF-1α、CTGF蛋白表達(dá)水平均明顯升高(P<0.05)。見圖5~8。
圖6 Western blot檢測3組HIF-1α的表達(dá)
圖7 3組大鼠腎組織CTGF蛋白表達(dá)電泳圖
圖8 Western blot檢測3組CTGF的表達(dá)
HIF-1是1992年Semenza等在低氧誘導(dǎo)的肝細(xì)胞癌細(xì)胞株Hep3B細(xì)胞核提取物中發(fā)現(xiàn)的一種蛋白質(zhì),是迄今為止發(fā)現(xiàn)的惟一能在缺氧狀態(tài)下發(fā)揮活性的特異性轉(zhuǎn)錄因子。已有研究表明,缺氧激活的轉(zhuǎn)錄因子HIF-1α在纖維化發(fā)展中起至關(guān)重要的作用[4]。慢性腎衰竭(chronic renal failure,CRF)是各種腎臟疾病持續(xù)進(jìn)展的最終結(jié)局,其主要病理學(xué)特征為腎小球硬化和腎間質(zhì)纖維化。慢性缺氧可誘發(fā)HIF-1α持續(xù)表達(dá),后者上調(diào)一系列促纖維化靶基因?qū)е履I間質(zhì)纖維化。因此,慢性缺氧是引起腎間質(zhì)纖維化的一個(gè)關(guān)鍵因素[5],而 HIF-1α是導(dǎo)致腎間質(zhì)纖維化的關(guān)鍵因子[6-7]。
5/6腎切除大鼠是目前研究慢性腎臟病進(jìn)展的理想動(dòng)物模型。已有研究表明,5/6腎切除的大鼠腎臟組織中存在小動(dòng)脈病變,這種小動(dòng)脈病變可導(dǎo)致腎小球后毛細(xì)血管血流減少和腎小管間質(zhì)缺血,而缺血就意味著低氧。Manotham等[8]研究證實(shí),在5/6腎切除大鼠模型中,在發(fā)生腎小管纖維化前,腎小管已存在明顯的缺氧。Zhang等[9]研究證實(shí),管周毛細(xì)血管丟失和腎小管間質(zhì)缺氧在腎間質(zhì)纖維化不明顯之前的早期階段(術(shù)后第3周)已經(jīng)很嚴(yán)重,并且持續(xù)存在于腎間質(zhì)纖維化的發(fā)展過程中。Zeng等[10]研究發(fā)現(xiàn),HIF-1α在5/6腎切除大鼠腎組織中顯著升高,這一結(jié)果證實(shí)慢性缺氧存在于5/6腎切除模型。俞小芳等[11]研究5/6腎切除大鼠亦發(fā)現(xiàn)在早期階段(術(shù)后第1周末),HIF-1α在腎內(nèi)表達(dá)即開始增加,在術(shù)后12周仍有持續(xù)表達(dá)。Kimura等[6]通過應(yīng)用5/6腎切除的基因敲除小鼠模型證實(shí)了HIF-1α具有促進(jìn)腎纖維化的作用,認(rèn)為抑制HIF-1α的表達(dá)是治療腎臟纖維化的靶點(diǎn)。此外,CTGF是目前公認(rèn)的較強(qiáng)的促纖維化生長因子,其表達(dá)受 HIF-1α調(diào)控[12]。本研究顯示模型組存在明顯的纖維化,且與假手術(shù)組比較,模型組腎組織中HIF-1α、CTGF蛋白表達(dá)水平均明顯升高,說明HIF-1α可能通過調(diào)節(jié)CTGF的表達(dá),促進(jìn)腎間質(zhì)纖維化。
六味地黃丸是臨床上治療腎陰虛證型慢性腎小球腎炎的有效方劑[13]。其臨床療效肯定,但其作用機(jī)制缺乏深入研究。何澤云等[14]研究發(fā)現(xiàn)5/6腎切除大鼠在術(shù)后8周,留存腎不可避免地發(fā)生了間質(zhì)纖維化。給5/6腎切除大鼠灌胃六味地黃湯8周后,其BUN、Scr的水平明顯低于模型組,并能減少留存腎系膜細(xì)胞的增生及間質(zhì)纖維化,使腎切除大鼠生存期延長[15]。蔡惠芳等[16]研究發(fā)現(xiàn),六味地黃丸具有改善5/6腎切除大鼠殘腎腎功能的作用,其改善殘腎腎功能的作用與六味地黃丸提高腎小球的體積密切相關(guān)。李萬斌等[17]研究認(rèn)為,六味地黃丸可能通過促進(jìn)MMP-2的表達(dá),對抗Ⅳ膠原的過度沉積,減輕硬化程度,達(dá)到保護(hù)腎臟、延緩腎衰竭進(jìn)程的積極作用。目前,從缺氧的角度探討六味地黃湯延緩腎間質(zhì)纖維化的機(jī)制研究尚未見報(bào)道,缺氧是導(dǎo)致腎間質(zhì)纖維化的重要原因,而六味地黃湯具有耐缺氧、抗氧化的作用,為本研究提供了堅(jiān)實(shí)的理論依據(jù)。本研究結(jié)果顯示,與模型組比較,六味地黃湯組HIF-1α、CTGF蛋白表達(dá)水平均明顯降低,提示六味地黃湯延緩腎間質(zhì)纖維化的作用機(jī)制可能是通過改善缺氧從而抑制HIF-1α的表達(dá),進(jìn)而下調(diào)CTGF的蛋白水平,從而減輕腎間質(zhì)纖維化。
[1] Fine LG,Norman JT.Chronic hypoxia as a mechanism of progression of chronic kidney diseases:from hypothesis to novel therapeutics[J].Kidney Int,2008,74(7):867-872.
[2] Manotham K,Tanaka T,Matsumoto M,et al.Transdifferentiation of cultured tubular cells induced by hypoxia[J].Kidney Int,2004,65(3):871-880.
[3] Higgins DF,Kimura K,Iwano M,et al.Hypoxia-inducible factor signaling in the development of tissue fibrosis[J].Cell Cycle,2008,7(9):1128-1132.
[4] Copple BL,Bai S,Burgoon LD,et al.Hypoxia-inducible factor-1αregulates the expression of genes in hypoxic hepatic stellate cells important for collagen deposition and angiogenesis[J].Liver Int,2011,31(2):230-244.
[5] Takiyama Y,Harumi T,Watanabe J,et al.Tubular injury in a rat model of type 2diabetes is prevented by metformin:apossible role of HIF-1αexpression and oxygen metabolism[J].Diabetes,2011,60(3):981-992.
[6] Kimura K,Iwano M,Higgins DF,et al.Stable expression of HIF-1alpha in tubular epithelial cells promotes interstitial fibrosis[J].Am J Physiol Renal Physiol,2008,295(4):F1023-1029.
[7] Haase VH.Pathophysiological consequences of HIF activation:HIF as a modulator of fibrosis[J].Ann N Y Acad Sci,2009,1177:57-65.
[8] Manotham K,Tanaka T,Matsumoto M,et al.Evidence of tubular hypoxia in the early phase in the remnant kidney model[J].J Am Soc Nephrol,2004,15(5):1277-1288.
[9] Zhang B,Liang X,Shi W,et al.Role of impaired peritubular capillary and hypoxia in progressive interstitial fibrosis after 56subtotal nephrectomy of rats[J].Nephrology(Carlton),2005,10(4):351-357.
[10]Zeng R,Yao Y,Han M,et al.Biliverdin reductase mediates hypoxia-induced EMT via PI3-kinase and Akt[J].J Am Soc Nephrol,2008,19(2):380-387.
[11]俞小芳,丁小強(qiáng),朱加明,等.5/6腎切除大鼠低氧誘導(dǎo)因子1α和2α在腎內(nèi)的表達(dá)和定位[J].中華腎臟病雜志,2010,26(9):689-695.
[12]Xu H,Liu X,Ning W,et al.Expression of HIF-1alpha in 5/6-nephrectomized rat models of chronic kidney fibrosis[J].ZhongNan DaXue XuBao,2009,3(4):308-312.
[13]何澤云,徐元美.六味地黃丸治療腎陰虛型慢性腎小球腎炎的臨床研究[J].湖南中醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2004,24(1):35-37.
[14]何澤云,陽曉.參麥注射液對5/6腎切除大鼠腎臟及腹膜形態(tài)結(jié)構(gòu)的影響[J].中國中西醫(yī)結(jié)合雜志,1998,18(9):553-555.
[15]何澤云,陳江華,李曉峰.六味地黃丸對腎切除大鼠腎小球化生的影響[J].湖南中醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2004,24(2):1-3.
[16]蔡惠芳,譚元生,何澤云,等.六味地黃丸對大鼠5/6腎切除腎功能的影響[J].湖南中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào),2007,27(2):17-19.
[17]李萬斌,何澤云.六味地黃丸延緩5/6腎切除大鼠腎組織纖維化研究[J].中國藥師,2009,12(4):411-413.