司沛沛,孫雪菲,楊小榮,張 策
谷氨酸是中樞神經(jīng)系統(tǒng)中重要的神經(jīng)遞質(zhì),在胚胎期神經(jīng)發(fā)育、腦的興奮性突觸傳遞、突觸可塑性方面發(fā)揮了重要作用。但是,谷氨酸過度聚集可引起細(xì)胞損傷甚至死亡,稱為興奮性神經(jīng)毒,興奮性神經(jīng)毒模型是最常用、最具毒性、損傷機(jī)制最復(fù)雜、最具臨床意義的一個(gè)神經(jīng)損傷模型,它參與多種神經(jīng)病理過程,如腦缺血損傷、各種神經(jīng)退行性疾病等[1,2]。
沉默信息調(diào)節(jié)因子1(silent information regulator 1,SIRT1)是哺乳動(dòng)物中第一個(gè)被發(fā)現(xiàn)的去乙?;窼irtuin蛋白家族成員,作為一種NAD+依賴的脫乙?;?,它與組蛋白乙?;腹餐S持細(xì)胞核的乙?;胶?。SIRT1以組蛋白和多種非組蛋白作為底物,通過其去乙?;饔谜{(diào)節(jié)基因轉(zhuǎn)錄、染色體穩(wěn)定性和靶蛋白活性,進(jìn)而參與能量代謝、細(xì)胞周期、細(xì)胞衰老及腫瘤發(fā)生發(fā)展等生理病理過程的調(diào)節(jié)。近年來,有關(guān)SIRT1的神經(jīng)保護(hù)作用受到越來越廣泛的關(guān)注。為進(jìn)一步驗(yàn)證SIRT1可能具有的廣泛的神經(jīng)保護(hù)作用,本研究擬采用NMDA誘導(dǎo)的興奮性神經(jīng)毒細(xì)胞模型,應(yīng)用(cell counting Kit-8)CCK-8分析、乳酸脫氫酶(LDH)檢測、Western-blot等方法,明確SIRTI高表達(dá)在NMDA誘導(dǎo)的興奮性神經(jīng)毒中的保護(hù)作用。
1.1 主要試劑 SH-SY5Y人神經(jīng)母細(xì)胞瘤細(xì)胞,購自上海中國科學(xué)院細(xì)胞庫;胎牛血清購自Gibco公司;NMDA試劑購自sigma公司;CCK-8購自Dojindo;Lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染試劑、Opti-MEM無血清培養(yǎng)基購自Invitrogen公司;MEM、F12培養(yǎng)基,Commassie改良增強(qiáng)型蛋白質(zhì)定量試劑盒購自武漢博士德生物工程公司;質(zhì)粒提取試劑盒購自全式金生物有限公司;兔抗人SIRT1抗體購自Abcam公司;β-actin山羊抗兔二抗購自中杉金橋;Super ECL Plus超敏發(fā)光液購自普利萊基因技術(shù)有限公司。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) SH-SY5Y培養(yǎng)基為 MEM、F12,含有10%胎牛血清,100U/mL青霉素、100U/mL鏈霉素。將細(xì)胞以1×105的細(xì)胞濃度接種于孔板或培養(yǎng)瓶中,培養(yǎng)于37℃,5%CO2條件下,每3天以1∶2傳代一次。
1.2.2 NMDA毒性誘導(dǎo) 采用 NMDA(500μmol/L)和甘氨酸(10μmol/L)共孵育2h,更換培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)10h,再進(jìn)行后續(xù)的CCK-8、LDH測定以及蛋白提取。
1.2.3 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染 按照質(zhì)粒提取試劑盒說明書提取質(zhì)粒后,利用脂質(zhì)體介導(dǎo)的方法將其轉(zhuǎn)入SH-SY5Y細(xì)胞中。細(xì)胞培養(yǎng)24 h后進(jìn)行轉(zhuǎn)染,質(zhì)粒和lipo2000以1∶2.5混合后,加入無血清無雙抗培養(yǎng)基中,培養(yǎng)6h后更換為全培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24 h~36h,轉(zhuǎn)染效率達(dá)到最高。
1.2.4 CCK-8的測定 將培養(yǎng)在96孔板中的細(xì)胞在轉(zhuǎn)染24h后,加入NMDA進(jìn)行毒性誘導(dǎo),繼續(xù)培養(yǎng)12h,然后每孔加入CCK-8 10μL,37℃避光培養(yǎng)2h,上酶標(biāo)儀測定,檢測波長450 nm,參比波長650nm。
1.2.5 乳酸脫氫酶釋放檢測 將培養(yǎng)在六孔板中的細(xì)胞轉(zhuǎn)染24h后 ,加入NMDA進(jìn)行毒性誘導(dǎo),繼續(xù)培養(yǎng)12h,收集細(xì)胞培養(yǎng)液進(jìn)行LDH活性檢測。
1.2.6 Western blot檢測與分析 利用Commassie法測定蛋白濃度。用10%分離膠、5%濃縮膠進(jìn)行SDS-PAGE電泳,將蛋白轉(zhuǎn)移到PVDF膜后,用0.3%明膠中室溫封閉1h,加入一抗SIRT1(1∶5 000)、β-actin(1∶3 000)4℃孵育過夜,洗膜后加入二抗(1∶3 000)室溫孵育1.5h。洗膜后加入ECL超敏發(fā)光液,曝光拍照,用分子生物學(xué)圖像分析系統(tǒng)進(jìn)行定量。β-actin條帶作為內(nèi)參。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 應(yīng)用SPSS13.0軟件分析。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,采用單因素方差分析,多重比較采用LSD法。
2.1 SIRT1蛋白水平的改變 Western blot結(jié)果顯示,與正常組相比,SIRT1過表達(dá)組中SIRT1含量上調(diào),增加1.15倍(P<0.05);空質(zhì)粒組、lipo2000組未影響SIRT1的表達(dá)水平(P>0.05)。詳見圖1。
圖1 SIRT1表達(dá)水平的改變
2.2 SIRT1高表達(dá)對(duì)NMDA引起的細(xì)胞活力下降的作用將構(gòu)建的SIRT1表達(dá)載體轉(zhuǎn)入SH-SY5Y細(xì)胞中24h后,加入NMDA(500μmol/L)作用2h,繼續(xù)孵育12h后采用CCK-8檢測細(xì)胞活力。結(jié)果顯示,而SIRT1高表達(dá)可有效抑制NMDA引起的細(xì)胞活力下降,使其活力恢復(fù)60.95%(P<0.05);與正常組相比,lipo2000、SIRT1組對(duì)細(xì)胞活力無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。詳見圖2。
圖2 SIRT1高表達(dá)對(duì)NMDA引起的細(xì)胞活力下降的觀察
2.3 SIRT1高表達(dá)對(duì)NMDA引起的LDH釋放的作用 在LDH實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組相比,NMDA組的LDH水平增高了59.45%(P<0.05);SIRT1高表達(dá)使NMDA誘導(dǎo)釋放的LDH減少24.26%(P<0.05);lipo2000、SIRT1組對(duì)LDH 的釋放無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。詳見圖3。
圖3 SIRT1高表達(dá)對(duì)NMDA引起的LDH釋放的作用
谷氨酸作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)一種重要的神經(jīng)遞質(zhì),當(dāng)在突出間隙中過度積聚時(shí),可以激活突出后膜NMDA受體,使胞外Ca2+內(nèi)流,激活多種蛋白酶,過度產(chǎn)生自由基,這些因素共同作用,引起神經(jīng)元損傷甚至死亡,產(chǎn)生興奮性神經(jīng)毒效應(yīng)[3]。
研究發(fā)現(xiàn),熱量限制(calorie restriction,CR)可以延長酵母及嚙齒動(dòng)物壽命,推遲哺乳動(dòng)物年齡相關(guān)的疾病如癌癥、動(dòng)脈粥樣硬化及糖尿病的發(fā)生,可能正是通過增加去乙酰化酶Sirtuin活性而起作用。這類蛋白修飾酶最初是在酵母中發(fā)現(xiàn),被稱為沉默信息調(diào)節(jié)因子2(silent information regulator 2,Sir2)。隨后,人們在哺乳動(dòng)物體內(nèi)也發(fā)現(xiàn)了具有廣泛去乙酰化作用的Sir2編碼蛋白。在哺乳動(dòng)物基因組中,目前證實(shí)存在7種Sir2同系物(SIRTs 1-7),其中SIRT1是氨基酸序列最接近Sir2的同系物。SIRT1可能通過其去乙?;富钚詤⑴c調(diào)節(jié)物質(zhì)代謝,如抑制糖酵解、維持血糖穩(wěn)定、防止脂肪變性等。最新研究表明,SIRT1高表達(dá)后通過其去乙酰化作用,激活不同信號(hào)通路可防止心肌肥大,血栓形成以及血管平滑肌的肥大。
在多種神經(jīng)損傷模型,如腦缺血性損傷模型、AD大鼠模型、HD小鼠模型、肌萎縮性側(cè)索硬化癥(ALS)和脊髓和延髓肌萎縮癥(SBMA)模型,通過上調(diào)SIRT1增加其去乙酰化酶活性,發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用。在p25轉(zhuǎn)基因鼠,SIRT1過表達(dá)可以顯著對(duì)抗神經(jīng)退行性??;在猴的阿爾茨海默?。ˋlzheimer’s disease,AD)動(dòng)物模型中,高表達(dá)SIRT1能減少腦內(nèi)的β淀粉樣蛋白(amyloid-β,Aβ),且腦內(nèi) Aβ含量與同一區(qū)域的 SIRT1含量呈負(fù)相關(guān)[4]。隨后離體、在體PD模型中發(fā)現(xiàn),過表達(dá)SIRT1可促進(jìn)α-synuclein蛋白降解,減緩神經(jīng)變性[5]。Parker和他的同事們已在線蟲中證明,過表達(dá)SIRT1可以抑制HTT突變引起的神經(jīng)元死亡[6];在轉(zhuǎn)基因小鼠HD模型中,將SIRT1過表達(dá)可以使小鼠的運(yùn)動(dòng)協(xié)調(diào)能力得到顯著改善,并減輕外周神經(jīng)及紋狀體神經(jīng)元的損傷[7,8]。將SIRT1基因轉(zhuǎn)染至原代神經(jīng)元,發(fā)現(xiàn)過表達(dá)SIRT1可以拮抗由SOD1突變引起的神經(jīng)毒性作用。SIRT1高表達(dá)在多種疾病損傷模型中可發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用。本實(shí)驗(yàn)中利用NMDA誘導(dǎo)的興奮性神經(jīng)毒模型,觀察SIRT1高表達(dá)在NMDA誘導(dǎo)的細(xì)胞損傷中的作用。谷氨酸作為中樞神經(jīng)系統(tǒng)一種重要的神經(jīng)遞質(zhì),當(dāng)在突出間隙中過度積聚時(shí),可以激活突出后膜NMDA受體,使胞外Ca2+內(nèi)流,激活多種蛋白酶,過度產(chǎn)生自由基,這些因素共同作用,引起神經(jīng)元損傷甚至死亡,產(chǎn)生興奮性神經(jīng)毒效應(yīng)。在實(shí)驗(yàn)中,利用脂質(zhì)體lipo2000介導(dǎo)的方法將質(zhì)粒轉(zhuǎn)入細(xì)胞中,加入NMDA誘導(dǎo)損傷,采用CCK-8、LDH檢測發(fā)現(xiàn),SIRT1高表達(dá)可以拮抗NMDA神經(jīng)毒性損傷,表現(xiàn)為細(xì)胞活力增加,LDH釋放減少。
而上述保護(hù)效應(yīng)由SIRT1對(duì)底物P5 3、FOXOs、Ku7 0、PGC-1α、TAFI68、P300、PCA 等 的 去 乙 酰 化 作 用 介 導(dǎo) 的[9,10]。相應(yīng)實(shí)驗(yàn)觀察顯示,SIRT1可以通過使P53去乙?;?,從而負(fù)性調(diào)節(jié)其活性,使細(xì)胞免于凋亡,繼續(xù)分裂生長;SIRT1通過使凋亡激活蛋白FOXOs去乙?;种破滢D(zhuǎn)錄,使神經(jīng)元免于凋亡[11];SIRT1可以使NF-κB亞基p65的賴氨酸310位點(diǎn)去乙酰化而降低其活性,防止細(xì)胞損傷;SIRT1通過使HSF1(heat shock factor 1,HSF1)去乙酰化,促進(jìn)HSF1與Hsp70啟動(dòng)子結(jié)合,激活 Hsp70,減少細(xì)胞凋亡[12]。
本實(shí)驗(yàn)表明,在NMDA引起的神經(jīng)毒過程中,SIRT1作用可能受到抑制,介導(dǎo)神經(jīng)損傷,SIRT1高表達(dá)證實(shí)了可以拮抗NMDA引起的細(xì)胞損傷作用,發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用。但是,SIRT1具體的神經(jīng)保護(hù)機(jī)制尚未明確,需要進(jìn)一步研究證實(shí)。
[1]Gc P.Neuroprotection by NMDA receptor antagonists in a variety of neuropathologies[J].Current Drug Targets,2001,2:241-271.
[2]Robert J.Dempsey MD.Attenuation of brain edema,blood-brain barrier breakdown,and injury volume by ifenprodil,apolyaminesite N-Methyl-D-aspartate receptor antagonist,after experimental traumatic brain injury in rats[J].Neurosurgery,2000,47(2):399-404.
[3]Hynd MR,Scott HL,Dodd PR.Glutamate-mediated excitotoxicity and neurodegeneration in Alzheimer’s disease[J].Neurochem Int,2004,45(5):583-595.
[4]Qin W,Chachich,M,Lane,M,etal.Calorie restriction attenuates Alzheimer’s disease type brain amyloidosis in Squirrel monkeys(Saimiri sciureus)[J].J Alzheimers Dis,2006,10(4):417-422.
[5]Wareski P,Vaarmann A,Choubey V,etal.PGC-1{alpha}and PGC-1{beta}regulate mitochondrial density in neurons[J].J Biol Chem,2009,284(32):21379-21385.
[6]Parker JA,Arango M,Abderrahmane S,etal.Resveratrol rescues mutant polyglutamine cytotoxicity in nematode and mammalianneurons[J].Nat Genet,2005,37(4):349-350.
[7]Ho DJ,Calingasan NY,Wille E,etal.Resveratrol protects against peripheral deficits in a mouse model of Huntington’s disease[J].Exp Neurol,2010,225(1):74-84.
[8]Jeong H,Cohen DE,Cui L,etal.Sirt1mediates neuroprotection from mutant huntingtin by activation of the TORC1and CREB transcriptional pathway[J].Nat Med,2012,18:159-165.
[9]Kim D,Nguyen MD,Dobbin MM,etal.SIRT1deacetylase protects against neurodegeneration in models for Alzheimer’s disease and amyotrophic lateral sclerosis[J].EMBO J,2007,26(13):3169-3179.
[10]Han S,Choi JR,Soon Shin K,etal.Resveratrol upregulated heat shock proteins and extended the survival of G93A-SOD1mice[J].Brain Res,2012,1483:112-117.
[11]Anekonda TS,Reddy PH.Neuronal protection by sirtuins in Alzheimer’s disease[J].J Neurochem,2006,96(2):305-313.
[12]Donmez G,Arun A,Chung CY,etal.SIRT1protects against alpha-synuclein aggregation by activating molecular chaperones[J].J Neurosci,2012,32(1):124-132.