福建部分地區(qū)規(guī)模雞場(chǎng)雞毒支原體感染血清學(xué)調(diào)查

黃招玲 潘書(shū)磊 福建農(nóng)業(yè)職業(yè)技術(shù)學(xué)院 福州 350119

雞毒支原體（Mycoplasma gallisepticum，MG）又稱雞敗血支原體，屬支原體科、支原體屬。G-，無(wú)細(xì)胞壁，是目前對(duì)家禽生產(chǎn)危害最大的病原之一［1］，主要引起雞、火雞慢性呼吸道疾?。?］，感染雞出現(xiàn)咳嗽、氣喘、流鼻液和呼吸道啰音為臨床特征；病理特征［3］為氣囊增厚、混濁，鼻道、氣囊及支氣管的黏膜發(fā)生卡他或黏液性炎癥。該病病程長(zhǎng)，發(fā)展緩慢，流行廣泛，既可水平傳播又可垂直傳播，感染后雞群出現(xiàn)免疫抑制問(wèn)題［1］，易并發(fā)或繼發(fā)大腸桿菌病、新城疫、傳染性支氣管炎和傳染性喉氣管炎等［4］。資料統(tǒng)計(jì)，雞毒支原體感染會(huì)導(dǎo)致雛雞的弱雛率增加10 %左右，蛋雞的產(chǎn)蛋率下降10%～20%，肉雞的體重減少38%［5］。

實(shí)驗(yàn)室診斷雞毒支原體感染的方法有血清平板凝集試驗(yàn)、HI、ELISA、PCR和病原分離培養(yǎng)等［6］，臨床中以血清平板凝集試驗(yàn)和ELISA 方法較為常用。ELISA 檢測(cè)方法的快速、靈敏，是臨床診斷雞毒支原體感染的首選，本試驗(yàn)利用ELISA 方法對(duì)來(lái)自福建3個(gè)地區(qū)（福州、福清、晉江）4個(gè)規(guī)模場(chǎng)952 份雞血清（4個(gè)規(guī)模雞場(chǎng)未免雞毒支原體雞場(chǎng)）進(jìn)行雞毒支原體感染抗體檢測(cè)，測(cè)得血清中雞毒支原體感染抗體平均陽(yáng)性率為47.22%，最高為60.16%，最低為39.13%，雞群處于較嚴(yán)重的感染狀態(tài)。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 試劑 雞敗血支原體（MG）感染抗體檢測(cè)試劑盒購(gòu)自北京愛(ài)德士元亨生物科技有限公司（批號(hào)：JG781）。

1.1.2 待檢血清 2012年7月至12月，分別采自福建3個(gè)地區(qū)4個(gè)規(guī)模未免雞毒支原體場(chǎng)的不同品種、年齡的雞群，共采集能用血清952 份。

1.2 方法 設(shè)陽(yáng)性、陰性對(duì)照，將待檢血清用樣品稀釋液作500倍稀釋后，按照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行試驗(yàn)，測(cè)定樣本在650 nm 波長(zhǎng)下的吸光值。計(jì)算樣品S/P，若S/P≤0.5，判為陰性，即未感染MG，S/P＞0.5，判為陽(yáng)性，即感染MG。

2 結(jié)果與分析

2.1 4個(gè)規(guī)模雞場(chǎng)MG 感染血清抗體陽(yáng)性率情況從表1 中可得出，所調(diào)查的4個(gè)規(guī)模雞場(chǎng)雞毒支原體感染血清抗體陽(yáng)性率為39.13%～60.16%，平均血清抗體陽(yáng)性率為47.22%，且調(diào)查發(fā)現(xiàn)飼養(yǎng)管理水平高，應(yīng)激小的雞場(chǎng)血清抗體陽(yáng)性率較低。表明所調(diào)查的4個(gè)規(guī)模雞場(chǎng)均不同程度感染MG，但感染強(qiáng)度受飼養(yǎng)管理水平、雞群健康狀況的影響。

表1 4個(gè)規(guī)模雞場(chǎng)MG 感染血清抗體陽(yáng)性率情況表

2.2 不同品種雞MG 感染血清抗體陽(yáng)性率情況從表2 中可以看出，海蘭褐、羅曼、艾維茵、京白904血清抗體陽(yáng)性率為37.36%～62.15%，平均血清抗體陽(yáng)性率為45.56%。表明不同品種的雞群均可發(fā)生雞毒支原體感染，但本試驗(yàn)調(diào)查所得不同品種血清抗體陽(yáng)性率不同結(jié)果，無(wú)法證明雞毒支原體的感染與品種的相關(guān)性。

表2 不同品種雞MG 感染血清抗體陽(yáng)性率情況

2.3 不同年齡雞MG 感染血清抗體陽(yáng)性率情況從表3 發(fā)現(xiàn)6 周齡以內(nèi)的雞血清抗體陽(yáng)性率最高，高達(dá)57.69%，說(shuō)明6 周齡以內(nèi)雞發(fā)生雞毒支原體的感染性最高；7～8 周齡雞血清抗體陽(yáng)性率為50.96%，9～18 周齡，雞群陽(yáng)性率為32.52%，19 周齡及19 周齡以上雞群陽(yáng)性率為27.52%，說(shuō)明隨著年齡的增加雞群感染雞毒支原體的機(jī)率不斷減小。

表3 不同年齡雞MG 感染血清抗體陽(yáng)性率情況

3 小結(jié)與討論

1）機(jī)體一旦感染雞毒支原體后，難以清除病原，將終生處于持續(xù)性感染，并且隨時(shí)向外界排毒，在飼養(yǎng)管理水平較好、機(jī)體健康情況下即使體內(nèi)存在雞毒支原體，也不表現(xiàn)臨床癥狀，但當(dāng)生長(zhǎng)環(huán)境惡劣、雞群處于應(yīng)激狀態(tài)，如寒冷刺激、疫苗免疫時(shí)，病原菌在氣囊、氣管黏膜內(nèi)迅速繁殖，表現(xiàn)出呼吸困難等臨床癥狀。本試驗(yàn)調(diào)查的福建省3個(gè)地區(qū)4個(gè)規(guī)?；u場(chǎng)MG 感染血清抗體陽(yáng)性率結(jié)果表明，不分品種、年齡大小均可發(fā)生感染，但感染的程度主要與飼養(yǎng)管理水平、應(yīng)激水平有很大的相關(guān)性。雞毒支原體在雞群長(zhǎng)期存在，提高飼養(yǎng)管理水平，增強(qiáng)機(jī)體體質(zhì)，減少雞群應(yīng)激水平是防止該病暴發(fā)的重要手段。

2）通過(guò)調(diào)查發(fā)現(xiàn)，規(guī)?；u場(chǎng)MG 感染血清抗體陽(yáng)性率為39.13%～60.16%，說(shuō)明該病在雞群中感染較嚴(yán)重，該病呈現(xiàn)慢性經(jīng)過(guò)，病原體通過(guò)黏附蛋白吸附于氣管黏膜相應(yīng)受體，并在黏膜上繁殖，產(chǎn)生炎癥，管腔內(nèi)蓄積大量炎癥產(chǎn)物，呼吸道的屏障作用受損，容易誘發(fā)其他呼吸道疾病的發(fā)生，感染的雞生長(zhǎng)發(fā)育受阻，飼料報(bào)酬率低，胴體品質(zhì)下降，死淘率增加。

3）疫苗防控并提高飼養(yǎng)管理水平是減少慢性呼吸道病的主要措施。目前主要有雞毒支原體培養(yǎng)物濃縮滅活油乳劑苗，免疫接種可使雞產(chǎn)生良好的免疫力，免疫期可達(dá)半年以上，但是產(chǎn)生抗體需要較長(zhǎng)時(shí)間、接種的劑量較大、接種次數(shù)較多，不能通過(guò)點(diǎn)眼滴鼻的方式刺激黏膜免疫；另一種是弱毒苗，少量接種就可以快速刺激機(jī)體產(chǎn)生抗體，可以通過(guò)點(diǎn)眼滴鼻刺激黏膜免疫，但是受母源抗體水平的干擾，同時(shí)存在散毒的風(fēng)險(xiǎn)。據(jù)報(bào)道由中國(guó)獸藥監(jiān)察所研制的雞毒支原體弱毒F-36 活苗免疫雞群，不影響雞體增重，不引起氣囊損傷，免疫保護(hù)率可達(dá)80.00%，免疫期達(dá)9個(gè)月，且可進(jìn)行滴眼、噴霧、飲水免疫［5］。但雞毒支原體的免疫主要是T 細(xì)胞介導(dǎo)的細(xì)胞免疫，免疫力與抗體水平的相關(guān)性不大，因此，任何一種疫苗都無(wú)法提供完全的保護(hù)作用，故在臨床中為了更好地控制雞毒支原體帶來(lái)的危害，不同養(yǎng)殖場(chǎng)可進(jìn)行不同的免疫計(jì)劃，將滅活苗與弱毒苗結(jié)合起來(lái)使用并且配合藥物防治或許是防控疫病暴發(fā)的重要舉措，但是疫苗的具體使用方法，滅活苗先用還是弱毒苗先用、什么時(shí)候使用疫苗免疫接種、用藥的時(shí)間等都需要試驗(yàn)驗(yàn)證，不可盲目參考。

幼齡雞感染MG 后危害較嚴(yán)重，甚至造成不可逆的損傷，導(dǎo)致生長(zhǎng)發(fā)育不良，淘汰率增加，在引種時(shí)務(wù)必嚴(yán)格把關(guān)，嚴(yán)禁從疫區(qū)引種，從源頭上杜絕疫病的進(jìn)入。

［1］卡爾尼克B W.禽病學(xué)［M］.10 版.高福，譯.北京：中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社，1991：240-250.

［2］Saif Y M.禽病學(xué)［M］.11 版.北京：中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社，2005：131-146.

［3］甘孟侯.中國(guó)禽病學(xué)［M］.北京：中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社，1999：157-163.

［4］冼瓊珍，盧玉葵，廖秋華，等.某集約化雞場(chǎng)雞毒支原體感染的血清學(xué)調(diào)查［J］.佛山科學(xué)技術(shù)學(xué)院學(xué)報(bào)：自然科學(xué)版，2002，20（2）：70-73.

［5］馮元璋.雞毒支原體感染和危害［J］.中國(guó)家禽，2008，30（12）：45-47.

［6］Brown M B，Bradbury J，Davis J K.Molecular and diagnostic procedures in mycoplasmology［M］..Academic Press Inc.，1996：93-104.