孔評石夏惠
IL-17和IFN-γ在紅內(nèi)期間日瘧原蟲感染者外周血T細(xì)胞亞群中的表達(dá)
孔評石1,2夏惠2★
目的 觀察分析間日瘧原蟲感染患者外周血T細(xì)胞亞群中分泌IL-17和IFN-γ的細(xì)胞的表達(dá)水平。 方法 采用流式細(xì)胞術(shù)檢測分析患者組(PV)和健康對照組(HD)外周血CD3+、CD3+CD8+、CD3+CD8-和γδT細(xì)胞中分泌胞內(nèi)因子IL-17、IFN-γ的細(xì)胞的百分比。 結(jié)果 在所有檢測的細(xì)胞亞群中,分泌IFN-γ的CD3+CD8-和γδT細(xì)胞在其所屬亞群中所占比例明顯高于健康對照組,分泌IL-17的γδT細(xì)胞的比例明顯高于健康對照組。 結(jié)論 本研究對于理解機(jī)體抗瘧原蟲的細(xì)胞免疫的功能狀態(tài)具有一定意義。
IL-17;IFN-γ;γδT細(xì)胞;間日瘧原蟲1,22★
瘧疾是危害人類最嚴(yán)重的寄生蟲病。盡管近年來瘧疾防治工作取得了重要進(jìn)展,但惡性瘧原蟲(Plasmodium falciparum,Pf)每年仍造成數(shù)十萬患者死亡[1]。間日瘧是最廣泛傳播的蟲種,亦是我國主要的流行蟲種,但長期以來對間日瘧的免疫機(jī)制研究不夠深入。
瘧疾的抗感染免疫機(jī)制中存在著復(fù)雜的細(xì)胞因子效應(yīng)。在以往的研究中表明IFN-γ、TNF-α、IL-12、 IL-6等多種細(xì)胞因子在抗瘧原蟲感染中發(fā)揮了重要作用,其中IFN-γ在抗瘧原蟲感染和免疫調(diào)節(jié)中發(fā)揮了重要的調(diào)節(jié)作用。近年來,IL-17在感染免疫中的作用受到越來越多的認(rèn)識,但在瘧疾感染中的表達(dá)狀況卻少見報(bào)道。本研究通過對間日瘧原蟲紅內(nèi)期現(xiàn)癥感染者外周血T細(xì)胞亞群分泌IL-17和IFN-γ的特征進(jìn)行觀察分析,旨在了解間日瘧感染中的細(xì)胞因子表達(dá)特征,從而進(jìn)一步理解間日瘧感染中細(xì)胞免疫和調(diào)節(jié)的機(jī)制。
1.1 實(shí)驗(yàn)對象
24例間日瘧患者(PV)全血采自蚌埠市周邊縣區(qū)醫(yī)院?;颊呓?jīng)鏡檢診斷為紅內(nèi)期間日瘧原蟲感染,用肝素抗凝管抽取血樣于37℃保溫4 h內(nèi)送達(dá)實(shí)驗(yàn)室,經(jīng)鏡檢復(fù)檢確認(rèn)的血樣用于實(shí)驗(yàn)。23例健康志愿者(HD)外周血取自蚌埠醫(yī)學(xué)院學(xué)生和教師。所有人群均排除肝炎與結(jié)核病史。
1.2 主要試劑和設(shè)備
1.2.1 主要實(shí)驗(yàn)設(shè)備
HW0301T-VBA型CO2培養(yǎng)箱:美國Harris公司。FACSCalibur流式細(xì)胞儀:美國BD公司。
1.2.2 主要實(shí)驗(yàn)試劑
熒光標(biāo)記鼠抗人單克隆抗體:抗IFN-γ-FITC,抗IL-17A FITC,抗TCRγδ-PE,抗CD3 -PERCP,抗CD8-APC均為eBioscience公司產(chǎn)品。以上均為小鼠抗人單克隆抗體。佛波醇酯(PMA)、 鈣離子霉素(Ionomycin)、莫能霉素(monesin)為Sigma公司產(chǎn)品。
1.3 方法
1.3.1 間日瘧患者組和健康對照組細(xì)胞因子的激發(fā)和阻滯
所有樣本均取1 mL全血加1 mL含10%小牛血清的RPMI1640稀釋,置于48孔培養(yǎng)板,加入20 ng/mL佛波醇酯和500 ng/mL鈣離子霉素置5%CO2培養(yǎng)箱刺激6 h(37℃,飽和濕度),并于刺激2 h后加入2.5 mol/L莫能霉素繼續(xù)培養(yǎng)4 h,然后收集細(xì)胞進(jìn)行細(xì)胞染色。1.3.2 流式細(xì)胞術(shù)檢測分析胞內(nèi)因子
流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞因子按照常規(guī)方法進(jìn)行,同時(shí)設(shè)置同型對照組。具體如下:100 μL患者和對照者壓積全血(各分兩管)加入PeCy5.5標(biāo)記的抗CD3抗體、APC標(biāo)記的抗CD8抗體和PE標(biāo)記的抗TCR-γδ抗體,4℃ 避光反應(yīng)20 min,加入溶血?jiǎng)˙D Biosciences)室溫避光溶解紅細(xì)胞10 min,染色緩沖液(PBS-5%NBS-0.1% NaN3)洗兩次,2%多聚甲醛4℃固定30 min,染色緩沖液洗兩次,透膜緩沖液(PBS-10%NBS-0.1%皂素)4℃避光透膜15 min, 5%牛血清白蛋白和10%小鼠血清4℃避光封閉30 min,兩管分別加入FITC標(biāo)記的抗IL-17A抗體和FITC標(biāo)記的抗IFN-γ抗體,同型對照管加抗小鼠IgG1 FITC,4℃避光反應(yīng)30 min,透膜緩沖液洗兩次,染色緩沖液洗一次,用2%的多聚甲醛200 μL重懸細(xì)胞,用流式細(xì)胞儀檢測。應(yīng)用CellQuest和WinMDI 2.8軟件分析流式檢測結(jié)果,非特異性吸附從同型對照中減去。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析
采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)分析檢測結(jié)果,顯著性檢驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)為0.05,用SPSS13.0軟件完成。
2.1 IFN-γ在患者T細(xì)胞亞群中的表達(dá)
經(jīng)分析,我們在對間日瘧患者全部的外周血淋巴細(xì)胞中CD3+T細(xì)胞和CD3+CD8+T亞群的觀察中沒有發(fā)現(xiàn)分泌IFN-γ的陽性細(xì)胞比例的變化,但發(fā)現(xiàn)患者組CD3+CD8-T細(xì)胞中分泌IFN-γ的細(xì)胞比例(4.52±2.26%)顯著高于對照組(2.71±1.04%),同時(shí)發(fā)現(xiàn)患者組γδ T細(xì)胞中分泌IFN-γ的細(xì)胞所占的比例(13.52±5.32%)亦顯著高于對照組(7.43±4.15%),見圖1、圖2。
2.2 IL-17在患者T細(xì)胞亞群中的表達(dá)
圖1 用流式細(xì)胞術(shù)分析一例間日瘧感染患者和健康對照者外周血T細(xì)胞亞群的胞內(nèi)因子Figure1 Using FACS to study the intra-cellular cytokines in T cell subsets of the peripheral blood from a PV patient and that from HD.
圖2 患者組和健康對照組T細(xì)胞亞群中分泌IFN-γ的細(xì)胞比例的比較Figure2 Comparison of the proportions of cells secreteing IFN-γ in T cell subsets in PV and HD
圖3 患者組和健康對照組T細(xì)胞亞群中分泌IL-17的細(xì)胞比例的比較Figure3 Comparison of the proportions of cells secreteing IL-17 in T cell subsets in PV and HD
在對全部的CD3+T細(xì)胞、CD3+CD8+T細(xì)胞和CD3+CD8-T細(xì)胞亞群的分析中沒有發(fā)現(xiàn)分泌IL-17的陽性細(xì)胞比例的顯著變化,但間日瘧患者γδ T細(xì)胞中分泌IL-17的細(xì)胞所占的比例(5.88±2.13%)顯著高于對照組(3.77±1.73%),見圖1、圖3。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:急性期瘧疾患者血循環(huán)中T細(xì)胞亞群表現(xiàn)出胞內(nèi)因子分泌模式的顯著變化,其中γδ T細(xì)胞分泌IL-17和IFN-γ顯著增高,而在CD3+CD8-T細(xì)胞中分泌IFN-γ的陽性細(xì)胞的比例增加更為顯著。
瘧疾感染中的免疫機(jī)制研究一直受到普遍關(guān)注。以往的研究表明瘧原蟲感染中存在著復(fù)雜的細(xì)胞免疫機(jī)制和細(xì)胞因子效應(yīng)。急性瘧疾感染中作為效應(yīng)細(xì)胞的T細(xì)胞亞群分泌IFN-γ、TNF-α、IL-1和IL-12等細(xì)胞因子發(fā)揮了重要的抗感染作用。對惡性瘧和鼠瘧模型的研究揭示了IFN-γ在免疫保護(hù)和病理損傷中均處于中心的位置,及時(shí)而適當(dāng)強(qiáng)度的IFN-γ響應(yīng)是有效的抗原蟲反應(yīng)的表現(xiàn)[2~3]。最早的IFN-γ是由NK細(xì)胞開始分泌,隨后是γδT細(xì)胞 (24~48 h),最后是αβT細(xì)胞(4~6天后)分泌。這些T細(xì)胞亞群細(xì)胞分泌的IFN-γ在生理濃度下誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞活化以增強(qiáng)吞噬和殺傷感染紅細(xì)胞[4],但I(xiàn)FN-γ激活巨噬細(xì)胞產(chǎn)生的TNF-α、IL-1、IL-6等導(dǎo)致炎癥級聯(lián)放大效應(yīng)[5]。長期的高水平炎性因子將導(dǎo)致機(jī)體免疫損傷和重癥瘧疾的發(fā)生。實(shí)驗(yàn)證實(shí)在惡性瘧重癥患者的PBMC培養(yǎng)上清和血漿中IFN-γ的水平遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于無癥狀患者[6]。以往的IFN-γ研究多集中于Pf和鼠瘧感染模型實(shí)驗(yàn),直接針對p.v的細(xì)胞免疫研究較為欠缺。
IL-17是一種重要的促炎性細(xì)胞因子,相關(guān)研究報(bào)道了IL-17能夠通過招募和活化中性粒細(xì)胞、促進(jìn)促炎性細(xì)胞因子、趨化因子及抗體的生成以及激活T細(xì)胞等功能對細(xì)菌、真菌、病毒等病原體發(fā)揮重要的抗感染作用和免疫調(diào)節(jié)作用[7~9]。近年來的諸多證據(jù)表明IL-17在寄生蟲感染免疫中同樣發(fā)揮著重要作用。研究發(fā)現(xiàn),給感染肺孢子蟲的野生型小鼠注射抗IL-17的中和抗體后導(dǎo)致使感染小鼠體內(nèi)的蟲荷增加,表明了IL-17的保護(hù)性作用[10];同時(shí)作為促炎性因子IL-17在炎性病理中亦扮演了重要角色。感染曼氏血吸蟲繼而用可溶性血吸蟲卵抗原免疫的小鼠會由IL-17介導(dǎo)發(fā)生炎性肉芽腫,導(dǎo)致嚴(yán)重的免疫病理損傷[11]。IL-17受體缺損的小鼠對剛地弓形蟲易感性提高,但同時(shí)病理損傷亦減輕,同樣證明了寄生蟲可通過誘導(dǎo)產(chǎn)生高水平的IL-17應(yīng)答參與免疫病理過程[12]。盡管現(xiàn)有的證據(jù)似乎足以證實(shí)IL-17在寄生蟲感染免疫過程中至關(guān)重要的保護(hù)性和炎性病理的雙向效應(yīng),但I(xiàn)L-17在瘧疾免疫中扮演的角色至今很少受到關(guān)注。
我們先前在實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),間日瘧患者血清中的IFN-γ和IL-17均顯著高于健康對照者,提示IFN-γ和IL-17均參與了抗p.v免疫應(yīng)答,但增高的細(xì)胞因子來源并不清楚。在本實(shí)驗(yàn)中對T細(xì)胞亞群分泌細(xì)胞因子的觀察中我們發(fā)現(xiàn),間日瘧原蟲感染者分泌IFN-γ的CD3+CD8-T細(xì)胞比例顯著高于健康對照組,分泌IL-17和IFN-γ的γδT細(xì)胞比例亦顯著高于對照組,部分顯示了在p.v感染中細(xì)胞因子來源的特定模式。Bueno等[13]最近在對美洲間日瘧感染者的研究中發(fā)現(xiàn)產(chǎn)生IL-17的CD4+T細(xì)胞在美洲間日瘧急性感染病人外周血中顯著增加,并與產(chǎn)生IFN-γ的CD4+T細(xì)胞數(shù)量密切相關(guān),該結(jié)果提示產(chǎn)生IFN-γ和IL-17的T細(xì)胞亞群參與的細(xì)胞因子效應(yīng)的平衡在保持適度的炎性響應(yīng)和控制原蟲血癥的發(fā)展中具有重要意義,亦在一定程度上與我們的實(shí)驗(yàn)結(jié)果相為佐證。
以往的研究已經(jīng)證實(shí)γδT細(xì)胞是IFN-γ的重要來源,近年來越來越多的證據(jù)表明γδT細(xì)胞也是IL-17的重要來源。Schulz等[7]發(fā)現(xiàn)γδT細(xì)胞通過分泌IL-17在沙門氏菌腸炎的保護(hù)性免疫中發(fā)揮效應(yīng);Peng等[14]認(rèn)為結(jié)核病人中異常增多的分泌IL-17的γδT細(xì)胞參與了抗結(jié)核免疫和結(jié)核病的病理過程。本實(shí)驗(yàn)通過對胞內(nèi)因子的檢測分析初步顯示了IL-17和IFN-γ在各淋巴細(xì)胞亞群表達(dá)狀況,證明了在間日瘧感染中作為非特異性免疫的重要組成部分的γδT細(xì)胞是IL-17和IFN-γ的重要來源,同時(shí)CD3+CD8-T細(xì)胞也是IFN-γ的重要來源。這種分泌IL-17和IFN-γ的細(xì)胞比例的增多在間日瘧感染過程中是發(fā)揮協(xié)同保護(hù)性的作用抑或傾向于造成炎性病理損傷仍有待于進(jìn)一步的確認(rèn);而是否能夠在病程的不同階段通過干預(yù)T細(xì)胞亞群的細(xì)胞因子分泌來有效地控制原蟲血癥和降低炎性病理的發(fā)生亦有待于更深入的研究。
[1] Global Health Observatory(GHO). Malaria[EB/OL].[2013-11-03]. http://www.who.intlgho/malaria/en/index.html.
[2] Luty A J, Lell B, Schmidt-Ott R, et al. Interferon-gamma responses are associated with resistance to reinfection with Plasmodium falciparum in young African children[J]. J Infect Dis, 1999, 179(4): 980-988.
[3] Su Z, Stevenson M M. Central role of endogenous gamma interferon in protective immunity against blood-stage Plasmodium chabaudi AS infection[J]. Infect Immun, 2000, 68(8): 4399-4406.
[4] Fritsche G, Larcher C, Schennach H, et al. Regulatory interactions between iron and nitric oxide metabolism for immune defense against Plasmodium falciparum infection[J]. J Infect Dis, 2001, 183(9): 1388-1394.
[5] Kern P, Hemmer C J, Van Damme J, et al. Elevated tumor necrosis factor alpha and interleukin-6 serum levels as markers for complicated Plasmodium falciparum malaria[J]. Am J Med, 1989, 87(2): 139-143.
[6] Riley E M, Jakobsen P H, Allen S J, et al. Immune response to soluble exoantigens of Plasmodium falciparum may contribute to both pathogenesis and protection in clinical malaria: evidence from a longitudinal, prospective study of semi-immune African children[J]. Eur J Immunol, 1991, 21(4): 1019-1025.
[7] Schulz S M, K?hler G, Holscher C, et al. IL-17A is produced by Th17, γδT cells and other CD4-lymphocytes during infection with Salmonella enterica serovar Enteritidis and has a mild effect in bacterial clearance[J]. Int Immunol, 2008, 20(9): 1129-1238.
[8] Conti H R, Shen F, Nayyar N, et al. Th17 cells and IL-17 receptor signaling are essential for mucosal host defense against oral candidiasis[J]. J Exp Med, 2009, 206(2): 299-311.
[9] Crowe C R, Chen K, Pociask D A, et al. Critical Role of IL-17RA in immunopathology of influenza infection[J]. J Immunol, 2009, 183(8): 5301-5310.
[10] Rudner X L, Happel K I, Young E A, et al. Interleukin-23 (IL-23)-IL-17 cytokine axis in murine Pneumocystis carinii infection[J]. Infect Immun, 2007, 75(6): 3055-3061.
[11] Rutitzky L I, Lopes da Rosa J R, Stadecker M J. Severe CD4 T cell-mediated immunopathology in murine schistosomiasis is dependent on IL-12p40 and correlates with high levels of IL-17[J]. J Immunol, 2005, 175(6): 3920-3926.
[12] Kelly M N, Kolls J K, Happel K, et al. Interleukin-17/ interleukin-17 receptor-mediated signaling is important for generation of an optimal polymorphonuclear response against Toxoplasma gondii infection[J]. Infect Immun, 2005, 73(1): 617-621.
[13] Bueno L L, Morais C G, Lacerda M V, et al. Interleukin-17 producing T helper cells are increased during natural Plasmodium vivax infection[J]. Acta Trop, 2012, 123(1): 53-57.
[14] Peng M Y, Wang Z H, Yao C Y, et al. Interleukin 17-producing γδ T cells increased in patients with active pulmonary tuberculosis[J]. Cell Mol Immunol, 2008, 5(3): 203-208.
Expressions of IL-17 and IFN-γ in the T cell subset in the peripheral blood of patients infected with blood-stage plasmodium vivax
KONG Pingshi, XIA Hui
(1.The Second Tranditional Chinese Medicine Hospital of Jiangsu, Jiangsu, Nanjing 210017, China; 2.Pathogen Biology Laboratory of Bengbu Medical College, Anhui, Bengbu, 233030, China)
Objective To investigate the expressions of T cell subset which secretes IL-17 or IFN-γ in the peripheral blood of patients infected withplasmodium vivax (p.v). Methods Using FACS to detect the proportion of the cells secreteing intra-cellular cytokines IL-17 or IFN-γ of CD3+, CD3+CD8+, CD3+CD8-and γδT cells in the T cell subset of peripheral blood from patients infected withp.vand healthy donors. Results Among all of the detected T cell subsets of PV, the proportion of the CD3+CD8-T cells and γδT cells secreteing IFN-γ and the γδT cells secreteing IL-17 were higher than that of HD. Conclusion This analysis furthers people's understanding of the function of anti-p.vcellular immunity of human beings.
IL-17; IFN-γ; γδT;Plasmodium vivax
安徽省教育廳自然科學(xué)研究重點(diǎn)資助項(xiàng)目(kj2012-A-200)
1.江蘇省第二中醫(yī)院檢驗(yàn)科,江蘇,南京 210017 2.蚌埠醫(yī)學(xué)院病原生物學(xué)教研室,安徽,蚌埠 233030
★通訊作者:夏惠,E-mail: landsky0330@163.com