趙 飛,辛 盛,盧向陽(yáng),田 云
(1.湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)生物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,湖南長(zhǎng)沙410128;2.湖南省農(nóng)業(yè)生物工程研究所,湖南長(zhǎng)沙410128)
解纖維梭菌纖維小體的研究進(jìn)展
趙 飛1,2,辛 盛1,2,盧向陽(yáng)1,2,田 云1,2
(1.湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)生物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,湖南長(zhǎng)沙410128;2.湖南省農(nóng)業(yè)生物工程研究所,湖南長(zhǎng)沙410128)
解纖維梭菌(Clostridium cellulolyticum)是一種非反芻類中溫兼性厭氧細(xì)菌,能夠分泌纖維小體多酶復(fù)合物,對(duì)結(jié)晶纖維素具有高效的降解能力。纖維小體均含有最多可以結(jié)合8個(gè)酶分子的腳手架蛋白CipC,CipC的N端是由碳水化合物結(jié)合模塊、8個(gè)高度同源的粘連模塊和2個(gè)親水性的X2模塊組成。纖維小體復(fù)合物的所有酶組分都含有一個(gè)特殊的對(duì)接蛋白模塊,能夠特異性地與CipC粘連蛋白相結(jié)合。編碼CipC蛋白以及9個(gè)與纖維素降解相關(guān)酶類的基因都在一個(gè)高達(dá)26 kb的大基因簇上。近年來(lái),解纖維梭菌纖維小體的相關(guān)研究不斷深入,已成功設(shè)計(jì)、構(gòu)建人工纖維小體,并且成功在釀酒酵母中轉(zhuǎn)入、表達(dá)纖維小體。通過(guò)對(duì)現(xiàn)有工程菌株的代謝網(wǎng)絡(luò)改造,可以提高生物煉制的產(chǎn)率、降低生產(chǎn)成本。
解纖維梭菌;纖維小體;腳手架蛋白;纖維素酶
隨著化石能源——石油、煤炭、天然氣等的不斷消耗枯竭,迫切需要發(fā)展新型綠色可再生能源來(lái)支撐人類社會(huì)的可持續(xù)發(fā)展。纖維素資源是地球上最豐富的可再生資源,但絕大多數(shù)纖維素以焚燒或堆積形式被處理掉,不僅造成資源的浪費(fèi),還對(duì)環(huán)境產(chǎn)生極大的污染。利用微生物發(fā)酵實(shí)現(xiàn)纖維素向化工原料和燃料的轉(zhuǎn)化,是解決纖維素堆積問(wèn)題與化石能源枯竭問(wèn)題的重要方式。纖維素分子是由β-D-吡喃葡萄糖(β-D-Glcp)單元通過(guò)β-1,4-糖苷鍵聚合在一起形成的均一直鏈聚糖,纖維素分子聚集在一起形成纖維絲,這種物質(zhì)非常致密且高度有序,致使纖維素中的多數(shù)β-1,4-糖苷鍵不易與酶接觸,難以降解。在無(wú)氧的環(huán)境中,細(xì)菌是纖維素的主要降解者,其中梭菌作用顯著[1],因此人們從室溫及高熱環(huán)境中分離到了大量的梭菌菌株,解纖維梭菌(Clostridium cellulolyticum)便是其中之一[2]。
解纖維梭菌是一種非反芻類中溫兼性厭氧細(xì)菌,于1992年首次從腐爛草堆中分離得到[3],其分泌產(chǎn)生的多酶復(fù)合體系——纖維小體,是一種可以有效降解植物細(xì)胞壁成分的復(fù)雜胞外酶系,由沒(méi)有催化活性的腳手架蛋白(Scaffoldin)以及多種可以降解纖維素、半纖維素和果膠質(zhì)的纖維小體糖苷水解酶組成[4]。解纖維梭菌纖維小體在生物質(zhì)降解過(guò)程中起著十分重要的作用,是符合統(tǒng)合生物加工過(guò)程(Consolidated bioprocessing,CBP)要求的最有希望的典型厭氧纖維素降解菌之一[5]。近年來(lái)的研究熱點(diǎn)集中在揭示纖維小體的組成、酶組分的協(xié)同作用、結(jié)構(gòu)特征、纖維素的降解機(jī)制以及天然生境中纖維小體的多樣性,并通過(guò)基因工程手段對(duì)纖維小體進(jìn)行基因突變與人工改造。這些研究有助于更深入了解纖維小體的功能及其降解纖維素的作用機(jī)制,以便設(shè)計(jì)出更高效的纖維素降解活性組分。
纖維小體復(fù)合體由結(jié)構(gòu)蛋白模塊和催化模塊兩類組分組成,結(jié)構(gòu)蛋白模塊包括纖維小體中關(guān)鍵的非催化亞基——腳手架蛋白,其上含有多個(gè)粘連模塊(Cohesin),這些粘連模塊通過(guò)與催化蛋白上的對(duì)接模塊(Dockerin)特異性地結(jié)合,將各種催化蛋白穩(wěn)定在復(fù)合體的超分子結(jié)構(gòu)中。催化模塊包括降解植物細(xì)胞壁所必需的各種纖維素酶、半纖維素酶及果膠酶等。此外,腳手架蛋白和部分酶蛋白中還含有能與纖維素特異性結(jié)合的碳水化合物結(jié)合模塊(Carbohydrate-binding module,CBM),其對(duì)底物具有定向效應(yīng)。不同厭氧微生物的纖維小體中腳手架蛋白上的粘連模塊(表 1)、催化蛋白上的對(duì)接模塊及碳水化合物結(jié)合模塊的類型及數(shù)目均不同[6]。
表1 不同厭氧細(xì)菌的腳手架蛋白結(jié)構(gòu)Tab.1 Scaffoldin structure of different anaerobic bacteria
解纖維梭菌纖維小體是由糖基化無(wú)催化活性的腳手架蛋白Cip C[4]、解纖維梭菌編碼的對(duì)應(yīng)纖維素酶通過(guò)粘連蛋白與對(duì)接蛋白相互作用而形成的。通過(guò)對(duì)基因上游約3 kb測(cè)序分析顯示,“cel”基因簇的cipC基因是該基因簇的第1個(gè)基因,這個(gè)基因簇編碼了多種屬于不同糖苷水解酶(GH)的水解酶類,除“cel”基因簇之外,還發(fā)現(xiàn)了3個(gè)編碼纖維小體蛋白的基因(cel5A、cel5D、cel44O)[14]。已知解纖維梭菌纖維小體基因的遺傳編碼結(jié)構(gòu)如圖1所示。
圖1 解纖維梭菌纖維小體基因的遺傳編碼結(jié)構(gòu)Fig.1 The hereditary coding structure of cellulosome gene from Clostridium cellulolyticum
圖1中cel 48F、cel8C、cel9G、cel9E、cel 9H、cel9J、cel 9M、cel 5N、cel 5A、cel 5D為纖維素酶基因,man5K為半纖維素酶基因,rgl11Y為果膠酶基因,cipC為腳手架基因,cel 44O、cel 5I為其它粘附蛋白基因,orfX為未知蛋白功能基因[14]。
2.1 解纖維梭菌纖維小體的腳手架蛋白
“cel”編碼的腳手架蛋白Cip C的組織排列與噬纖維梭菌(Clostridium cellulovorans)的腳手架蛋白相似。其大小為160 000,由一系列橢圓形模塊像珍珠項(xiàng)鏈一樣連接而成。其N端有1個(gè)CBM3a模塊,后面接著1個(gè)未知功能的X2模塊和7個(gè)疏水的粘連蛋白模塊[15]。其C端含有第2個(gè)未知功能的X2模塊,其后是第8個(gè)粘連蛋白模塊,但不含任何對(duì)接蛋白模塊,該模塊有可能參與錨定于細(xì)胞表面的過(guò)程,類似于熱纖梭菌(Clostridium thermocellum)纖維小體的腳手架蛋白Cip A[16]。已知解纖維梭菌纖維小體中復(fù)合體組裝模式如圖2所示。
圖2 解纖維梭菌纖維小體中復(fù)合體組裝模式Fig.2 The construction mode of the complex in Clostridium cellulolyticum cellulosome
分析CipC中的3類蛋白模塊發(fā)現(xiàn),CipC中的CBM3a含有160個(gè)氨基酸,這與熱纖梭菌纖維小體腳手架蛋白的CBM3a很相似。結(jié)構(gòu)分析顯示,其含有鈣離子結(jié)合位點(diǎn),由9條鏈組成果凍卷的拓?fù)浣Y(jié)構(gòu),推測(cè)其它面為纖維素結(jié)合面,在其頂端有1條未知功能的小溝。研究表明,2個(gè)X2模塊具有親水性,其功能尚不清楚,這些親水的模塊可能起到構(gòu)象鏈接片段的作用,也可能起到增大腳手架蛋白可溶性的作用,而腳手架蛋白中包含多個(gè)疏水的粘連蛋白;Doi等[17]發(fā)現(xiàn)X2模塊可能參與纖維小體結(jié)合到細(xì)胞表面的過(guò)程,結(jié)合實(shí)驗(yàn)顯示,X2模塊可能含有親水結(jié)構(gòu)域(HLD),該結(jié)構(gòu)域可能具有對(duì)細(xì)胞表面和纖維素的雙重親和性功能[18]。纖維小體復(fù)合物的組裝依靠酶分子相連的對(duì)接蛋白與腳手架上的粘連蛋白的特定相互作用,但不同酶組分并未嚴(yán)格限定只能與某種特定的粘連蛋白作用[16]。研究發(fā)現(xiàn),解纖維梭菌還編碼其N末端具有GH5催化結(jié)構(gòu)域的蛋白Cel5I,這個(gè)催化結(jié)構(gòu)域連接2個(gè)CBM3a模塊以及3個(gè)C末端表層同源結(jié)構(gòu)域(S-Layer homology module,SLH),Cel5I缺少對(duì)接蛋白結(jié)構(gòu)域,說(shuō)明該蛋白與細(xì)胞壁結(jié)合,而不是與CipC蛋白結(jié)合。
2.2 解纖維梭菌纖維小體中的主要酶組分
解纖維梭菌與纖維素降解相關(guān)的基因大部分位于一個(gè)約26 kb的大基因簇(“cel”簇)中。該基因簇編碼了多種屬于不同糖苷水解酶家族(GH)的水解酶類(圖1):8個(gè)纖維素酶基因、1個(gè)甘露聚糖酶基因及1個(gè)鼠李半乳糖醛酸聚糖裂解酶基因。此外,還發(fā)現(xiàn)了3個(gè)編碼纖維小體蛋白的基因cel5A、cel5D、cel44O。
解纖維梭菌纖維小體中纖維素酶和其它纖維素降解系統(tǒng)相關(guān)的酶類都是多結(jié)構(gòu)域蛋白組分。這些結(jié)構(gòu)域中部分是結(jié)構(gòu)和功能獨(dú)立模塊,部分是1個(gè)或2個(gè)結(jié)構(gòu)域連接起來(lái)行使功能。對(duì)接蛋白模塊是纖維小體酶類的共同模塊,Pagès等[8]證明對(duì)接蛋白模塊與纖維小體的形成有關(guān),它將纖維素酶錨定于腳手架蛋白Cip C上。在解纖維梭菌纖維小體中,僅Man5K和Cel44O兩個(gè)蛋白在其C端發(fā)現(xiàn)相應(yīng)的對(duì)接蛋白, Cel48F、Cel8C、Cel5N、Cel5A和Man5K都具有2個(gè)結(jié)構(gòu)域:1個(gè)由糖苷水解酶結(jié)構(gòu)域組成的催化模塊和1個(gè)對(duì)接蛋白模塊。許多纖維小體酶類包含1個(gè)或2個(gè)與糖苷水解酶結(jié)構(gòu)域連接的其它結(jié)構(gòu)域組分,這些組分大部分歸類到碳水化合物結(jié)合模塊(CBM)家族中(圖3)。
圖3 解纖維梭菌纖維小體水解酶類結(jié)構(gòu)域Fig.3 The structure domain of the hydrolases in Clostridium cellulolyticum cellulosome
以下纖維素酶已得到表達(dá)、純化與表征:Cel48F、Cel48C、Cel5A、Cel5D、Cel9G(作為Cel9G、Cel9H和Cel9J的代表)、Cel9E和Cel9M,它們對(duì)不同底物的催化活性不同。Cel44O和Cel5N尚未被研究,但Cel44O與熱纖梭菌Cel44J的C端非常相似,Cel44J是具有部分木聚糖降解能力的纖維素酶[19],因此推測(cè)Cel44O可能也是一種纖維素酶。Cel48F是解纖維梭菌纖維小體的主要組分,只含有糖苷水解酶第48家族的催化結(jié)構(gòu)域,是一種持續(xù)性作用的纖維素內(nèi)切酶[20]。該酶對(duì)非結(jié)晶磷酸膨脹纖維素的活性較高,但對(duì)羧甲基纖維素(CMC)活性較低,這可能是其催化位點(diǎn)是由2對(duì)環(huán)肽構(gòu)成,而CMC的羧甲基取代物不能與被環(huán)肽封閉的活性位點(diǎn)很好地結(jié)合所導(dǎo)致的[21]。
4種纖維素內(nèi)切酶Cel48C、Cel5A、Cel5D和Cel9M的底物水解譜(Substrate hydrolysis spectra)相似,對(duì)不同的非結(jié)晶纖維素、CMC和磷酸膨脹纖維素均表現(xiàn)出較高活性,但是都不能水解β-1,3鍵。Cel5A對(duì)纖維二糖的抑制敏感,Cel48C對(duì)纖維二糖的抑制不敏感[22],Cel9M水解微結(jié)晶纖維素的主要產(chǎn)物是纖維四糖,同時(shí)對(duì)木聚糖表現(xiàn)出較強(qiáng)的酶活力。
Cel9G是一種特殊的內(nèi)切纖維素酶,含有糖苷水解酶第9家族(GH9)的催化結(jié)構(gòu)域,該結(jié)構(gòu)域與CBM3c家族的纖維素結(jié)合域通過(guò)18-氨基酸殘基連接肽連在一起[23],兩者之間形成多個(gè)氫鍵,這使得兩個(gè)結(jié)構(gòu)域的位置相對(duì)穩(wěn)定。GH9催化結(jié)構(gòu)域單獨(dú)存在時(shí)沒(méi)有催化活性,必須連接到CBD上才能發(fā)揮功能,作用于微結(jié)晶纖維素[24]。Cel9G可有效水解CMC,在所有已表征的解纖維梭菌纖維小體的纖維素酶中, Cel9G對(duì)微結(jié)晶纖維素的活性最高。因此推測(cè),當(dāng)纖維小體與微結(jié)晶纖維素結(jié)合后,Cel9G參與纖維素高級(jí)結(jié)構(gòu)的破壞,然后釋放出單鏈進(jìn)行內(nèi)切水解。
Cel9E對(duì)p NP-纖維二糖苷的活性很高,其降解微結(jié)晶纖維素的產(chǎn)物幾乎全是纖維二糖,因此Cel9E是一種纖維二糖水解酶[25]。Man5K和Rgl11Y是兩種非纖維素酶,由位于“cel”簇第二部分的基因編碼。Rgl11Y是一種內(nèi)切型鼠李糖醛酸聚糖裂解酶, Man5K是一種內(nèi)切甘露聚糖酶,作用于半乳甘露聚糖中乳糖側(cè)鏈替換度較低的主鏈。這些酶因帶有對(duì)接蛋白,從而被組合進(jìn)了纖維小體[26]。
酶學(xué)和結(jié)構(gòu)學(xué)研究表明,解纖維梭菌纖維小體中存在多種纖維素酶,其中Cel48F和Cel9G是持續(xù)性作用的酶組分,也是纖維小體的主要催化組分,這兩種酶的催化特征明顯不同,其降解纖維素方式也不同。需要注意的是,所有酶組分對(duì)結(jié)晶纖維素的催化活性都較低,但纖維小體對(duì)結(jié)晶纖維素卻有較高催化效率,表明不同酶組分之間的相互協(xié)調(diào)作用于對(duì)高效降解纖維素十分重要。
解纖維梭菌吸附于纖維素上是纖維素降解的第一步,當(dāng)菌體進(jìn)入不溶性纖維素后,便開(kāi)始利用結(jié)晶纖維素生長(zhǎng)。在不溶性底物上可檢測(cè)到粘附著的大量菌體,這可能是由細(xì)胞粘連的纖維小體或細(xì)胞連接的纖維素酶介導(dǎo)的。在營(yíng)養(yǎng)豐富的培養(yǎng)基中,解纖維梭菌只能代謝少量的可溶性碳水化合物[27]。與在纖維二糖上生長(zhǎng)不一樣,解纖維梭菌在纖維素上生長(zhǎng)時(shí),菌體必須先粘附于底物上,再將其水解形成可溶性糖。細(xì)菌的生長(zhǎng)受到可溶性底物的限制,纖維素上所釋放的可溶性糖是菌體生長(zhǎng)所需的底物,一旦生成就會(huì)被細(xì)菌快速吸收[28],從而減輕產(chǎn)物對(duì)酶的抑制作用。連續(xù)培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),纖維二糖的主要代謝產(chǎn)物是乙酸,其次才是乙醇和乳酸。當(dāng)乙醇和乳酸等還原性化合物達(dá)到飽和、生物質(zhì)不能再次氧化EMP途徑中生成的所有NADH時(shí),NADH通過(guò)NADH-鐵氧還蛋白-還原酶和氫化酶途徑,以較慢速率再生為NAD+。在纖維二糖充足的條件下,NADH-鐵氧還蛋白-還原酶和氫化酶的活性是維持氧化還原平衡的關(guān)鍵,其碳流主要是通過(guò)排出胞外多糖、胞外蛋白、氨基酸及丙酮酸等溢流而達(dá)到平衡。
解纖維梭菌屬于中溫兼性厭氧細(xì)菌,因其高效降解結(jié)晶纖維素受到高度重視。迄今為止,對(duì)于解纖維梭菌的研究中,已經(jīng)發(fā)現(xiàn)其30個(gè)編碼纖維小體催化亞基的基因,且對(duì)其第一個(gè)纖維素降解的負(fù)突變菌株Cip C Mutl的分子研究發(fā)現(xiàn),解纖維梭菌中至少能夠合成22個(gè)含有對(duì)接蛋白的組分。因此,利用現(xiàn)代分子生物學(xué)技術(shù)克隆調(diào)節(jié)基因以及結(jié)構(gòu)基因變得簡(jiǎn)單可行,這為新的研究提供了無(wú)限的空間。通過(guò)結(jié)構(gòu)基因及調(diào)節(jié)基因的表達(dá),便可以工程化地改變解纖維梭菌纖維小體的組分,從而利用基因工程設(shè)計(jì)出功能特定的纖維小體,以提升對(duì)復(fù)雜多糖的降解效率。纖維素直接轉(zhuǎn)化為工業(yè)原料的新型工藝要求對(duì)非纖維素降解菌的基因進(jìn)行改造,使其能夠在纖維素降解的相關(guān)酶系中轉(zhuǎn)入和表達(dá),從而擁有降解纖維素的功能。
統(tǒng)合生物加工過(guò)程(CBP)的工藝要求將纖維素酶和半纖維素酶的生產(chǎn)、水解和發(fā)酵組合在一起完成。因此,將編碼纖維小體的基因轉(zhuǎn)入釀酒酵母中成為解決這一問(wèn)題的有效途徑[29,30]。目前,研究者已將熱纖梭菌腳手架蛋白Cip A的第3粘連蛋白與解纖維梭菌的微型CipC1的C末端融合,形成雜合的微型腳手架蛋白Scaf3,并成功轉(zhuǎn)入產(chǎn)溶劑的梭菌形成產(chǎn)物,這對(duì)直接轉(zhuǎn)化纖維素為可溶性化工產(chǎn)品具有重大意義。
[1] Burrell P C,O′Sullivan H,Song W P,et al.Identification,detection,and spatial resolution of clostridiium populations responsible for cellulose degradation in a methanogenic landfill leachate bioreactor[J].Appl Environ Microbiol,2004,70(4):2414-2419.
[2] Petitdemange E,Caillet F,Giallo J,et al.Clostridium celluloyticum sp.nov.,A cellluloytic mesophilic species from decayed grass [J].Int J Syst Bioresour Technol,1984,34(2):155-159.
[3] Cailliez C,Benoit L,Thirion J P,et al.Characterization of 10 mesophilic cellulolytic clostridia isolated from municipal solid waste digestor[J].Current Microbiology,1992,25(2):105-112.
[4] Gal L,Pages S,Gaudin C,et al.Characterization of the cellulolytic complex(cellulosome)produced by Clostridium cellulolyticum [J].Appl Environ Microbiol,1997,63(3):903-909.
[5] Gowen C M,Fong SS.Exploring biodiversity for cellulosic biofuel production[J].Chem Biodivers,2010,7(5):1086-1097.
[6] Li S,Wu X M,Chen H M,et al.Development in cellulosome from Clostridium thermocellum[J].Biotechnology Bulletin,2011,(5): 31-37.
[7] Kakiuchi M,Isui A,Suzuki K,et al.Cloning and DNA sequencing of the genes encoding Clostridium josuis caffolding protein Cip A and cellulase CelD and identification of their gene products as major components of the cellulosome[J].Journal of Bacteriology, 1998,180(16):4303-4308.
[8] Pagès S,Bélaich A,Tardif C,et al.Interaction between the endoglucanase Cel A and the scaffolding protein CipC of the Clostridium cellulolyticum cellulosome[J].Journal of Bacteriology, 1996,178(8):2279-2286.
[9] Cha J,Matsuoka S,Chan H,et al.Effect of multiple copies of cohesins on cellulase and hemicellulase activities of Clostridium cellulovorans minicellulosomes[J].Journal of Microbiology and Biotechnology,2007,17(11):1782-1788.
[10] Ding S Y,Bayer E A,Steiner D,et al.A scaffoldin of the Bacteroides cellulosolvens cellulosome that contains 11 typeⅡcohesins[J].Journal of Bacteriology,2000,182(17):4915-4925.
[11] Haimovitz R,Barak Y,Mora E,et al.Cohesin-dockerin microarray:Diverse specificities between two complementary families of interacting protein modules[J].Proteomics,2008,8(5):968-979.
[12] Ding S Y,Rincon M T,Lamed R,et al.Cellulosomal scaffoldinlike proteins from Ruminococcusflavefaciens[J].Journal of Bacteriology,2001,183(6):1945-1953.
[13] Xu Q,Gao W C,Ding S Y,et al.The cellulosome system of Acetivibrio cellulolyticus includes a novel type of adaptor protein and a cell surface anchoring protein[J].Journal of Bacteriology, 2003,185(15):4548-4557.
[14] Maamar H.Etude in vivo du Système Celluloytique de Clostridium Cellulolyticum:Caractérisation du Premier Mutant d′Insertion CipC[M].University of Aix-Marseille I,Mareseille,2003.
[15] Pagès S,Bélaich A,Fierobe H P,et al.Sequence analysis of scaffolding protein CipC and ORFXp,a new cohesin-containing protein in Clostridium cellulolyticum:Comparison of various cohesin domains and subcellular localization of ORFXp[J].J Bacteriol,1999,181(6):1801-1810.
[16] Gerngross U T,Romanice M P,Kobayashi T,et al.Sequencing of a Clostridium thermocellum gene(cip A)encoding the cellulosomal SL-protein reveals an unusual degree of internal homology[J].Mol Microbiol,1993,8(2):325-334.
[17] Doi R H,Kosugi A,Murashima K,et al.Cellulosomes from mesophilic bacteria[J].J Bacteriol,2003,185(20):5907-5914.
[18] Kosugi A,Amano Y,Murashima K,et al.Hydrophilic domains of scaffolding protein Cbp A promote glycosyl hydrolase activity and localization of cellulosomes to the cell surface of Clostridium cellulovorans[J].J Bacteriol,2004,186(19):6351-6359.
[19] Ahsan M,Matsumoto M,Kartia S,et al.Purification and characterization of the family J catalytic domain derived from the Clostridium thermocellum endoglucanase CelJ[J].Biosci Biotechnol Biochem,1997,61(3):427-431.
[20] Reverbel-Leroy C,Pagès S,Bélaich A,et al.The processive endocellulase CelF,a major component of the Clostridium cellulolyticum cellulosome:Purification and characterization of the recombinant form[J].J Bacteriol,1997,179(1):46-52.
[21] Parsiegla G,Bélaich A,Bélaich J P.A rhamnogalacturonan lyase in the Clostridium cellulolyticum cellulosome[J].J Bacteriol, 2003,185(16):4727-4733.
[22] Fierobe H P,Bagnara-Tardif C,Gaudin C,et al.Purification and characterization of endoglucanase C from Clostridium cellulolyticum.Catalytic comparison with endoglucanase A[J].Eur J Biochem,1993,217(2):557-565.
[23] Arai T,Ohara H,Karita S,et al.Sequence of Cel Q and properties of CelQ,a component of the Clostridium thermocellum cellulosome[J].Appl Microbiol Biotechnol,2001,57(5-6):660-666.
[24] Mandelman D,Bélaich A,Bélaich J P,et al.X-Ray crystal structure of the multidomain endoglucanase Cel9G from Clostridium cellulolyticum complexed with natural and synthetic cello-oligosaccharides[J].J Bacteriol,2003,185(14):4127-4135.
[25] Gaudin C,Bélaich A,Champ S,et al.CelE,a multidomain cellulose from Clostridium cellulolyticum:A key enzyme in the cellulsome?[J].J Bacteriol,2000,182(7):191-195.
[26] Perret S,Bélaich A,Fierobe H P,et al.Towards designer cellulomes in Clostridia:Mannanase enrichment of the cellulosomes produced by Clostridium cellulolyticum[J].J Bacteriol,2004, 186(19):6544-6552.
[27] Giallo J,Gaudin C,Bélaich J P,et al.Metabolism of glucose and cellobiose by cellulolytic mesophilic Clostridium sp.strain H10 [J].Appl Environ Microbiol,198,45(3):843-849.
[28] Desvaux M,Guedon E,Petitdemange H.Carbon flux distribution and kinetics of cellulose fermentation in steady-state continuous cultures of Clostridium cellulolyticum on a chemically defined medium[J].J Bacteriol,2001,183(1):119-130.
[29] Kitagawa T,Kohda K,Tokuhiro K,et al.Identification of genes that enhance cellulase protein production in yeast[J].J Biotechnol,2010,151(2):194-203.
[30] Fan L H,Zhang Z J,Yu X Y,et al.Self-surface assembly of cellulosomes with two miniscaffoldins on Saccharomyces cerevisiae for cellulosic ethanol production[J].PNAS,2012,109(33): 13260-13265.
Research Development in Cellulosome from Clostridium Cellulolyticum
ZHAO Fei1,2,XIN Sheng1,2,LU Xiang-yang1,2,TIAN Yun1,2
(1.College of Bioscience and Biotechnology,Hunan Agricultural University,Changsha 410128,China; 2.Hunan Agricultural Bioengineering Research Institute,Changsha 410128,China)
Clostridium cellulolyticum is a kind of medium-temperature-facultative anaerobic bacteria in nonruminant that can degrade crystalline cellulose effectively by secreting cellulosome multienzyme complex.Cellulosome contains the scaffoldin CipC which can mostly combine eight enzyme molecules.The N-end of Cip C consists of carbohydrate-binding module(CBM),eight highly homologous cohesins and two hydrophilic X2 modules.The all enzyme components of the cellulosome complex possess a special docking protein module that can bind specifically with the Cip C cohesin.The genes coding Cip C protein and nine cellulose-degradation-related enzyme are all in a big gene cluster up to 26 kb.In recent years,the researches of cellulosome from Clostridium cellulolyticum are deepening.Artificial cellulosome has been successfully designed,constructed,turned in and expressed in Saccharomyces cerevisiae.By reforming metabolic networks of the existing engineering strains,the bio-refinery yield can be improved as well as the cost reduced.
Clostridium cellulolyticum;cellulosome;scaffoldin;cellulase
Q 936
A
1672-5425(2013)03-0001-05
10.3969/j.issn.1672-5425.2013.03.001
科技部國(guó)際科技合作項(xiàng)目(2010DFA62510),教育部2009年度長(zhǎng)江學(xué)者和創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)發(fā)展計(jì)劃項(xiàng)目(IRT0963)
2012-11-30
趙飛(1986-),男,湖南郴州人,碩士研究生,主要從事應(yīng)用微生物學(xué)研究,E-mail:zfwx100@163.com;通訊作者:盧向陽(yáng),教授,E-mail:xiangyangcn@163.com;田云,副研究員,E-mail:tianyun79616@163.com。