宋安東,馮新軍,王風(fēng)芹,謝慧,楊大嬌
1 河南農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,河南鄭州 450002
2 農(nóng)業(yè)部農(nóng)業(yè)微生物酶工程重點實驗室,河南鄭州 450002
生物質(zhì)是一種豐富的可再生資源,利用生物質(zhì)可以生產(chǎn)燃料乙醇,最主要的方法有兩種,即生物化學(xué)法和熱化學(xué)法,后者又包括化學(xué)合成和微生物發(fā)酵[1]。微生物發(fā)酵合成氣生產(chǎn)乙醇,是以生物質(zhì)為原料生產(chǎn)乙醇的一種新技術(shù)。即將生物質(zhì)完全氣化,得到以H2、CO、CO2、N2等為主要成分的合成氣,再利用一些特殊的微生物將合成氣發(fā)酵為乙醇。該技術(shù)不需要昂貴的酶、酸、堿等試劑,可以將木質(zhì)纖維素類生物質(zhì)完全氣化,微生物轉(zhuǎn)化理論上可以完全利用有效氣體,屬環(huán)境友好型技術(shù)[2]。
目前,已經(jīng)發(fā)現(xiàn)的可以利用合成氣合成乙醇的微生物還比較少[3-4],主要是一些常溫微生物和個別的嗜熱微生物[5]。國外一些科研工作者,陸續(xù)從動物糞便(雞糞[6]、兔糞[7]等)、下水道污泥[6]、農(nóng)業(yè)瀉湖[8]、煤漿[6]等物質(zhì)中發(fā)現(xiàn)了一些能夠利用合成氣生產(chǎn)乙醇的微生物,開展的研究主要集中在梭狀芽胞桿菌Clostridium ljungdahlii和梭狀芽胞桿菌Clostridium carboxidivorans 兩株菌上[9-21]。國內(nèi)缺少具專利權(quán)的相關(guān)菌株,郭穎等[22-23]以國外研究較少的C.autoethanogenum為對象進(jìn)行了一些研究。
實驗室在前期以羊駝、長臂猿、小熊貓、狒狒的糞便為樣品進(jìn)行富集培養(yǎng)時,得到可利用合成氣發(fā)酵制取乙醇的A-fm 4、G-fm 4、Lp-fm 4、B-fm 4等4種菌群。本研究以4種富集菌群為研究對象,與合成氣發(fā)酵菌株C.autoethanogenum在兩種接種量下發(fā)酵合成氣生產(chǎn)乙醇的能力進(jìn)行了對比。
A-fm 4、G-fm 4、Lp-fm 4、B-fm 4均為本實驗室富集篩選得到的菌群,C.autoethanogenum DSM10061購自德國菌種保藏中心(DSMZ)。
富集菌群在前期試驗中通過PCR-DGGE 技術(shù)進(jìn)行了初步鑒定,表1是對4種富集菌群中主要微生物的16S rDNA 序列測序后的初步鑒定結(jié)果。
DSM640活化培養(yǎng)基(g/L):NH4Cl 0.90,NaCl 0.90,MgCl2·6H2O 0.40,KH2PO40.75,K2HPO41.50,胰蛋白胨2.00,酵母膏1.00,F(xiàn)eCl3·6H2O 2.40×10?3,纖維二糖1.00,L-鹽酸半胱氨酸0.75,木糖5.00。纖維二糖在培養(yǎng)基滅菌后過濾加入,微量元素溶液1 mL,pH 6.0。
改良培養(yǎng)基(g/L)[13]:NaCl 1.20,NH4Cl 1.50,KCl 0.15,MgSO4·6H2O 0.30,CaCl20.06,KH2PO40.30,酵母膏0.50,2-嗎啉乙磺酸5.00,L-鹽酸半胱氨酸0.20,木糖5.00。微量元素溶液添加10 mL,維生素溶液添加10 mL,pH 5.75。pH 的調(diào)節(jié)應(yīng)在加入2-嗎啉乙磺酸后立即進(jìn)行。
表1 富集菌群中優(yōu)勢微生物16S rDNA 片段序列的比對結(jié)果Table 1 Comparison of 16S rDNA sequences of dominant microbes by sequencing and Blast analysis
發(fā)酵培養(yǎng)基[23](g/L):NH4Cl 1.00,NaCl 1.00,MgSO40.15,KH2PO40.10,CaCl20.04,胰蛋白胨2.00,酵母膏0.30,L-鹽酸半胱氨酸0.20,2-嗎啉乙磺酸10.00。另礦質(zhì)元素溶液10 mL,維生素溶液10 mL,pH 4.5。
維生素貯液[13](mg/L):VB610,硫胺素5.00,VB25.00,泛酸鈣5.00,硫辛酸5.00,對氨基苯甲酸5.00,煙堿酸5.00,VB125.00,生物素2.00,葉酸2.00。配好后用0.22μm 過濾器過濾除菌使用。
微量元素貯液[13](g/L):氨三乙酸2.00,MgSO41.00,(NH4)2SO4·FeSO4·6H2O 0.80,CoCl2·6H2O 0.20,ZnSO4·7H2O 0.20,CuCl2·2H2O 0.02,NiCl2·6H2O 0.02,Na2MoO4·2H2O 0.02,Na2O4Se 0.02,Na2WO4·2H2O 0.02。
所有培養(yǎng)基按配方配制,每80 mL (發(fā)酵培養(yǎng)基為60 mL)分裝入300 mL 的厭氧培養(yǎng)瓶中,放入?yún)捬跖囵B(yǎng)箱,在培養(yǎng)基中加入刃天青,添加量為0.50 mg/L。配好的培養(yǎng)基放置在充滿合成氣的厭氧培養(yǎng)箱內(nèi)放置24~36 h,緩慢去除溶解氧。然后121℃,1.01×104Pa 滅菌20 min。維生素溶液和鹽酸半胱氨酸采用0.45μm 的濾膜過濾除菌。
合成氣組成為CO 85.5%,H210%,CO24.5%,購自河南源正科技發(fā)展有限公司。
C.autoethanogenum 的活化:首次活化,打開安瓿瓶,加入已滅菌的活化培養(yǎng)液0.5 mL,浸潤30 min;用1 mL 注射器吸取200μL,注射入平板培養(yǎng)瓶并涂布,維持在37℃。觀察生長情況,7 d 左右菌種生長良好。向平板培養(yǎng)瓶添加20 mL 活化培養(yǎng)液,培養(yǎng)96 h。再次活化,直接從平板培養(yǎng)瓶中吸取培養(yǎng)液,轉(zhuǎn)接到新鮮的活化培養(yǎng)液中,接種量10%,進(jìn)行培養(yǎng)。
富集菌群的活化:取A- fm 4、G- fm 4、Lp- fm 4和B- fm 4的保存培養(yǎng)液加入活化培養(yǎng)基中,添加量為10%。
采用比濁法,將活化后的菌液接入改良培養(yǎng)基中(接種量10%),每隔一段時間(C.autoethanogenum 為每12 h,富集菌群為每8 h)取一定菌液,在600 nm 下,用可見分光光度計測量OD 值,測定至生物量增長緩慢或不再增長為止,繪制生長曲線,確定生長對數(shù)期。
10%接種量發(fā)酵:將在改良培養(yǎng)基中生長至接種期的菌液轉(zhuǎn)接至發(fā)酵培養(yǎng)液中,接種量為10%,利用注射器,向厭氧瓶內(nèi)充入約200 mL 合成氣。溫度37℃,轉(zhuǎn)速150 r/min 的條件下培養(yǎng)3 d。
25%接種量發(fā)酵:將在改良培養(yǎng)基中生長至接種期的菌液完全離心,收集菌體后用改良培養(yǎng)基懸浮至12 mL,接入4瓶發(fā)酵培養(yǎng)基(即每瓶發(fā)酵培養(yǎng)基接入3 mL),利用注射器,向厭氧瓶內(nèi)充入約200 mL 合成氣。溫度37℃,轉(zhuǎn)速150 r/min 的條件下培養(yǎng)3 d。
用注射器抽取1.5 mL 發(fā)酵液,于?4℃,8000 r/min 離心10 min,取上清液測量乙醇濃度。測定乙醇含量采用Agilent technologies 7890A GC System 氣相色譜,檢測器采用FID,柱子為30 m×0.32 mm×0.3μm HP-FFAP,載氣為氮氣,載氣流率30 mL/min,分流比1∶30,色譜進(jìn)樣口和檢測器的溫度分別為200℃和250℃。
YX-Ⅱ厭氧培養(yǎng)箱,購自上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司,溫度設(shè)置為37℃,每次使用前進(jìn)行氮氣置換5~7次,以保證厭氧環(huán)境。
厭氧培養(yǎng)瓶購自海門市科儀實驗儀器廠。
2.1.1 C.autoethanogenum 接種菌齡
用比濁法繪制生長曲線(圖1)。由圖1可以看出C.autoethanogenum 在36 h 開始進(jìn)入對數(shù)生長期,大約96 h 生長速度明顯減慢,逐漸進(jìn)入穩(wěn)定期。生長較快的時期是60~84 h,72 h 時生長速率達(dá)到最大。選擇72 h 為發(fā)酵接種菌齡。
2.1.2 富集菌群接種菌齡
分析圖2可以看出G- fm 4由8 h 開始進(jìn)入對數(shù)生長期,大約48 h 時菌體生長速度減緩,進(jìn)入穩(wěn)定期;A- fm 4、Lp- fm 4和B- fm 4適應(yīng)期不明顯,進(jìn)入穩(wěn)定期的時間分別在40 h、56 h、64 h左右。富集菌群生長最快的時期都在32 h 左右,選擇32 h 為最佳發(fā)酵接種菌齡。
圖1 梭狀芽胞桿菌生長曲線Fig.1 Growth curve of C.autoethanogenum.
圖2 富集菌群生長曲線Fig.2 Growth curve of A- fm 4,G- fm 4,Lp- fm 4 and B- fm 4.
對比圖1和圖2可以看出,對照菌株C.autoethanogenum 有24 h 左右的生長適應(yīng)期,隨后再進(jìn)入對數(shù)生長期;而富集菌群的適應(yīng)期不明顯,除G- fm 4外,接種后立即進(jìn)行對數(shù)生長。但是,C.autoethanogenum 在96 h 進(jìn)入穩(wěn)定期時的OD600值達(dá)到1.4左右,而4種富集菌群最大OD600值只有0.5左右。
將在改良培養(yǎng)基中生長至72 h 的C.autoethanogenum 以10%的接種量接入發(fā)酵培養(yǎng)基中進(jìn)行發(fā)酵,每12 h 取一次樣測乙醇產(chǎn)量,得到結(jié)果如圖3所示。
由圖3可以看出,C.autoethanogenum 的乙醇產(chǎn)量隨著發(fā)酵時間的延長有所增加,在72 h時達(dá)到最高值,72 h 后乙醇產(chǎn)量總體呈現(xiàn)降低趨勢。所以將72 h 作為發(fā)酵的最佳時間。
2.3.1 10%接種量發(fā)酵的乙醇產(chǎn)量
由圖4可以看出,在10%接種量情況下,C.autoethanogenum、A-fm 4、G-fm 4、Lp-fm 4和B-fm 4的實驗結(jié)果分別為26.99、349.14、232.16、104.25和79.90 mg/L。富集菌群的乙醇產(chǎn)量普遍高于C.autoethanogenum 的實驗結(jié)果,A-fm 4產(chǎn)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)超過C.autoethanogenum 報道的最高值259.64 mg/L。
2.3.2 25%接種量發(fā)酵的乙醇產(chǎn)量
由圖5可以看出,在25%接種量發(fā)酵中,C.autoethanogenum、A-fm 4、G-fm 4、Lp-fm 4和B-fm 4的實驗結(jié)果分別為242.15、485.81、472.73、348.58和272.52 mg/L。富集菌群普遍高于對照菌株C.autoethanogenum,A-fm 4、G-fm 4、LP-fm 4、B-fm 4的乙醇產(chǎn)量分別比C.autoethanogenum 高100.62%、95.20%、44.00%和12.50%,均超過了C.autoethanogenum報道的最高值。
圖3 不同發(fā)酵時間乙醇產(chǎn)量Fig.3 Ethanol production at different time.
圖4 不同菌種乙醇產(chǎn)量比較(10%接種量)Fig.4 Comparison of ethanol production between different strains (10% inoculation size).
圖5 不同菌種乙醇產(chǎn)量比較(25%接種量)Fig.5 Comparison of ethanol production between different strains (25% inoculation size).
比較圖4和圖5可以看出,25%接種量發(fā)酵可以明顯提高乙醇產(chǎn)量,與10%接種量的乙醇產(chǎn)量相比,C.autoethanogenum 和4種富集菌群提高量分別為797.36%、39.14%、103.62%、234.37%和241.08%。
10%接種量發(fā)酵,富集菌群A- fm 4、G- fm 4、LP- fm 4、B- fm 4乙醇產(chǎn)量分別為349.15、232.16、104.25和79.90 mg/L,均高于C.autoethanogenum的26.99 mg/L,A- fm 4的產(chǎn)量高于報道的C.autoethanogenum 最高產(chǎn)量259.64 mg/L。25%接種量發(fā)酵,富集菌群產(chǎn)量分別為485.81、472.73、348.58和272.52 mg/L,普遍高于對照菌株C.autoethanogenum 的242.15 mg/L 及其報道最高值。在相同的生長環(huán)境下,發(fā)酵實驗接種時富集菌群的菌體密度小于C.autoethanogenum,乙醇產(chǎn)量卻高于后者,表明富集菌群利用合成氣產(chǎn)乙醇的能力較高。利用合成氣發(fā)酵生產(chǎn)乙醇的微生物種類偏少,國內(nèi)針對此類微生物的篩選還未見報道。由以上數(shù)據(jù)可知,4種富集菌群能夠利用合成氣合成乙醇,對國內(nèi)在該領(lǐng)域的研究具有重要意義。
25%接種量發(fā)酵可以明顯提高乙醇產(chǎn)量,與10%接種量的乙醇產(chǎn)量相比,C.autoethanogenum和4種富集菌群提高量分別為797.36%、39.14%、103.62%和234.37%,241.08%。鑒于以上結(jié)果,高接種量發(fā)酵可以作為一種提高乙醇產(chǎn)量的措施。不同菌種發(fā)酵時具有不同的最佳接種量,本文只是對10%接種量和25%接種量兩個梯度進(jìn)行了對比研究,后續(xù)研究應(yīng)設(shè)計多個梯度進(jìn)行對比試驗,確定最佳接種量。
富集菌群的產(chǎn)量明顯高于C.autoethanogenum,且與文獻(xiàn)報道的產(chǎn)量相比具有顯著優(yōu)勢。但是文獻(xiàn)所使用的合成氣組分為CO/CO2(95/5,V/V),與本試驗使用合成氣氣體成分有一定差別。本實驗中C.autoethanogenum生長曲線與文獻(xiàn)報道的相似,表明本實驗所用合成氣對C.autoethanogenum生長沒有明顯影響,而對乙醇代謝有一定影響。Kan Liu 等以嗜堿菌Alkalibaculum bacchi 為研究對象,利用兩種不同成分的合成氣進(jìn)行發(fā)酵,發(fā)現(xiàn)合成氣的成分不同會影響乙醇產(chǎn)量[24]。
本試驗進(jìn)行發(fā)酵時,發(fā)酵原料來源于罐裝氣體,生物質(zhì)合成氣中除了可利用氣體如CO、CO2、H2等,還含有硫化物、焦油等不可利用甚至有毒物質(zhì),這些組分會對微生物利用合成氣發(fā)酵產(chǎn)物產(chǎn)生影響。郭穎等[25]研究證明生物質(zhì)合成氣中所含的甲苯、苯酚和焦油在一定量情況下可以提高C.autoethanogenum 乙醇的產(chǎn)量。Asma Ahmed等[26]研究證明合成氣中存在NO 時,梭狀芽胞桿菌 Clostridium carboxidivorans P7T的代謝會受到抑制。合成氣的通入方式也會對發(fā)酵結(jié)果產(chǎn)生影響, Vel Berzin 等[27]以梭狀芽胞桿菌Clostridium sp.MTEtOH550為研究對象采用連續(xù)通氣法,乙醇產(chǎn)量由11.5 g/L 提高到27.2 g/L。后續(xù)試驗需要對這些因素可能造成的影響進(jìn)行研究。
[1]Munasinghe PC,Khanal SK.Biomass-derived syngas fermentation into biofuels:opportunities and challenges.Bioresour Technol,2010,101(13):5013?5022.
[2]Song AD,Feng XJ,Xie H,et al.Comparative analysis on the two technologies of ethanol production from syngas.Chin J Bioprocess Eng,2012,10(5):72?78(in Chinese).宋安東,馮新軍,謝慧,等.合成氣制取乙醇2種技術(shù)比較分析.生物加工過程,2012,10(5):72?78.
[3]Zhang LB,Liu JK,Li D,et al.Study on the Microbiology for syngas ethanol fermentation.Renewable Energy Resour,2007,25(3):27?30(in Chinese).張?zhí)m波,劉繼開,李東,等.合成氣乙醇發(fā)酵的微生物研究.可再生能源,2007,25(3):27?30.
[4]Song AD,Feng XJ,Xie H,et al.Biomass-derived syngas fermentation into fuel ethanol:research progress.Food Ferment Indus,2011,37(6):130?136(in Chinese).宋安東,馮新軍,謝慧,等.生物質(zhì)合成氣發(fā)酵制取燃料乙醇研究進(jìn)展.食品與發(fā)酵工業(yè),2011,37(6):130?136.
[5]Henstra AM,Sipma J,Rinzema A,et al.Microbiology of synthesis gas fermentation for biofuel production.Curr Opin Biotechnol,2007,18(3):200?206.
[6]Hurst KM,Lewis RS.Carbon monoxide partial pressure effects on the metabolic process of syngas fermentation.Biochem Eng J,2010,48(2):159?165.
[7]Vega JL,Prieto S,Elmore BB,et al.The biological production of ethanol from synthesis gas.Appl Biochem Biotech,1989,20-21(1):781?797.
[8]Liou JS,Balkwill DL,Drake GR,et al.Clostridium carboxidivorans sp.nov.,a solvent-producing clostridium isolated from an agricultural settling lagoon,and reclassification of the acetogen Clostridium scatologenes strain SL1 as Clostridium drakei sp.nov..Int J Syst Evol Microbiol,2005,55(5):2085?2091.
[9]Gaddy JL,Clausen EC.Clostridium ljungdahlii,an anaerobic ethanol and acetate producing microorganism:US,5173429.1992-12-22.
[10]Najafpour G,Younesi H.Ethanol and acetate synthesis from waste gas using batch culture of Clostridium ljungdahlii.Enzyme Microb Technol,2006,38(1/2):223?228.
[11]Younesi H,Najafpour G,Mohamed AR.Ethanol and acetate production from synthesis gas via fermentation processes using anaerobic bacterium,Clostridium ljungdahlii.Biochem Eng J,2005,27(2):110?119.
[12]Ahmed A,Lewis RS.Fermentation of biomass-generated synthesis gas:effects of nitric oxide.Biotechnol Bioeng,2007,97(5):1080?1086.
[13]Rajagopalan S,Datar RP,Lewis RS.Formation of ethanol from carbon monoxide via a new microbial catalyst.Biom Bioen,2002,23(6):487?493.
[14]Datar RP,Shenkman RM,Cateni BG,et al.Fermentation of biomass-generated producer gas to ethanol.Biotechnol Bioeng,2004,86(5):587?594.
[15]Liou JSC,Balkwill DL,Drake GR,et al.Clostridium carboxidivorans sp.nov.,a solvent-producing clostridium isolated from an agricultural settling lagoon,and reclassification of the acetogen Clostridium scatologenes strain SL1 as Clostridium drakei sp.nov.Int J Syst Evol Microbiol,2005,55:2085-2091.
[16]Lewis RS,Frankman RS,Allyson T,et al.Ethanol via biomass-generated syngas.Int Sugar J,2008,110(1311):150?155.
[17]Ahmed A,Cateni BG,Huhnke RL,et al.Effects of biomass-generated producer gas constituents on cell growth,product distribution and hydrogenase activity of Clostridium carboxidivorans P7T.Biom Bioen,2006,30(7):665?672.
[18]Cotter JL,Chinn MS,Grunden AM.Influence of process parameters on growth of Clostridium ljungdahlii and Clostridium autoethanogenum on synthesis gas.Enzyme Microb Technol,2009,44(5):281?288.
[19]Cotter JL,Chinn MS,Grunden AM.Ethanol and acetate production by Clostridium ljungdahlii and Clostridium autoethanogenum using resting cells.Bioprocess Biosyst Eng,2009,32(3):369?380.
[20]K?pke M,Held C,Hujer S,et al.Clostridium ljungdahlii represents a microbial production platform based on syngas.Proc Natl Acad Sci USA,2010,107(29):13087?13092.
[21]Ukpong MN,Atiyeh HK,De Lorme MJ,et al.Physiological response of Clostridiumcarboxidivorans during conversion of synthesis gas to solvents in a gas-fed bioreactor.Biotechnol Bioeng,2012,109(11):2720?2728.
[22]Guo Y,Xu JL,Xu HJ,et al.Medium optimization for the growth of Clostridium autoethanogenum.Renewable Energy Resour,2011,29(1):53?56(in Chinese).郭穎,許敬亮,徐惠娟,等.Clostridium autoethanogenum 的生長培養(yǎng)基優(yōu)化.可再生能源,2011,29(1):53?56.
[23]Guo Y,Xu JL,Zhang Y,et al.Medium optimization for ethanol production with Clostridium autoethanogenum with carbon monoxide as sole carbon source.Bioresour Technol,2010,101(22):8784?8789.
[24]Liu K,Atiyeh HK,Tanner RS,et al.Fermentative production of ethanol from syngas using novel moderately alkaliphilic strains of Alkalibaculum bacchi.Bioresour Technol,2012,104:336?341.
[25]Guo Y,Xu JL,Xu HJ,et al.Study on composition effects of syngas and medium on ethanol production with Clostridium autoethanogenum.Acta Energ Solar Sin,2011,32(9):1370?1374(in Chinese).郭穎,許敬亮,徐惠娟,等.合成氣和培養(yǎng)基組分對C.autoethanogenum 發(fā)酵產(chǎn)乙醇的影響研究.太陽能學(xué)報,2011,32(9):1370?1374.
[26]Ahmed A,Lewis RS.Fermentation of biomass-generated synthesis gas:effects of nitric oxide.Biotechnol Bioeng,2007,97(5):1080?1086.
[27]Berzin V,Kiriukhin M,Tyurin M.Elimination of acetate production to improve ethanol yield during continuous synthesis gas fermentation by engineered biocatalyst Clostridium sp.MTEtOH550.Appl Biochem Biotechnol,2012,167(2):338?347.