陶 俐,苗 凱,安 磊,吳中紅,田見暉
(1.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué) 動(dòng)物科技學(xué)院,吉林 長春 130118;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué) 動(dòng)物科技學(xué)院,農(nóng)業(yè)部畜禽遺傳育種重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室,北京 100193)
小鼠胚胎附植研究現(xiàn)狀
陶 俐1,2,苗 凱2,安 磊2,吳中紅2,田見暉2
(1.吉林農(nóng)業(yè)大學(xué) 動(dòng)物科技學(xué)院,吉林 長春 130118;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué) 動(dòng)物科技學(xué)院,農(nóng)業(yè)部畜禽遺傳育種重點(diǎn)開放實(shí)驗(yàn)室,北京 100193)
體外胚胎生產(chǎn)效率低以及胚胎質(zhì)量不高已成為制約我國人類生殖輔助技術(shù)以及畜牧業(yè)健康快速發(fā)展的重要因素。胚胎在體外環(huán)境下發(fā)育的基因調(diào)控機(jī)制及附植前后母胎互作機(jī)理不清是其重要原因。因此,對于體外胚胎發(fā)育的網(wǎng)絡(luò)調(diào)控及母胎對話分子機(jī)制的揭示成為亟待解決的重大科學(xué)問題。隨著生物技術(shù)的發(fā)展,應(yīng)用基因組學(xué)、蛋白質(zhì)組學(xué)、表觀遺傳學(xué)等研究手段深入探討體外胚胎發(fā)育的基因網(wǎng)絡(luò)調(diào)控以及表觀遺傳學(xué)修飾機(jī)制,解析胚胎與母體子宮對話的分子調(diào)節(jié)機(jī)制成為現(xiàn)在研究的熱點(diǎn)。
小鼠;胚胎;附植
E-mail:Eunice8023@yahoo.cn
胚胎附植是哺乳動(dòng)物繁殖的一個(gè)關(guān)鍵環(huán)節(jié),附植前后胚胎內(nèi)部mRNA和蛋白的性質(zhì)和數(shù)量都發(fā)生著復(fù)雜的變化,這些變化構(gòu)成了一個(gè)龐大而復(fù)雜的基因表達(dá)調(diào)控網(wǎng)絡(luò),而母體環(huán)境確保了早期胚胎內(nèi)正常的基因表達(dá)網(wǎng)絡(luò)調(diào)控,并確保了胚胎與子宮的識(shí)別、信息交流及其在子宮內(nèi)的定點(diǎn)、適時(shí)附植。然而,體外胚胎先天缺失母體環(huán)境,常常造成早期胚胎基因表達(dá)異常,致使胚胎發(fā)育潛力不足和妊娠時(shí)母胎對話紊亂,最終影響了胚胎附植[1~4]。例如體外發(fā)育技術(shù)最為完善的牛,也只有30%~40%成熟卵母細(xì)胞體外受精后可發(fā)育至囊胚[5]。近年來的研究證實(shí),不同于體內(nèi)母體環(huán)境,體外成熟(IVM)和體外培養(yǎng)(IVC)的環(huán)境及條件影響到許多早期胚胎發(fā)育相關(guān)基因的表達(dá),并影響到了胚胎的發(fā)育及附植。例如,文獻(xiàn)報(bào)道,約30%的體外胚胎犢牛患有巨胎綜合癥(large offspring syndrome,LOS)是由于體外條件下胚胎發(fā)育相關(guān)基因表達(dá)異常造成的[6]。因此,揭示體外胚胎發(fā)育網(wǎng)絡(luò)調(diào)控以及母胎對話分子調(diào)節(jié)機(jī)制成為亟待解決的重大科學(xué)問題。
本文綜述了利用小鼠模型得出的附植相關(guān)早期胚胎發(fā)育調(diào)控、囊胚附植能力和子宮接受附植能力的研究結(jié)果,希望探索母胎對話的神秘機(jī)制,為人類生殖健康和臨床醫(yī)學(xué)以及畜牧業(yè)生產(chǎn)提供理論指導(dǎo)。
哺乳動(dòng)物胚胎附植前經(jīng)歷了受精和第1次卵裂及持續(xù)的細(xì)胞分裂、細(xì)胞全能性的建立及緊縮形成桑葚胚、細(xì)胞分化形成囊胚等一系列發(fā)育過程(圖1)[7],囊胚成熟到一定程度后,從透明帶中孵化出來并逐步獲得了附植能力。成熟囊胚由滋養(yǎng)外胚層、原始內(nèi)胚層和多能性內(nèi)細(xì)胞團(tuán)3種細(xì)胞組成,內(nèi)細(xì)胞團(tuán)分化形成各種胎兒細(xì)胞,而滋養(yǎng)外胚層則與母體子宮腔上皮發(fā)生生理聯(lián)系直接參與了附植。
早期胚胎基因表達(dá)受多層次調(diào)控,主要是轉(zhuǎn)錄水平的調(diào)控。通過檢測胚胎不同發(fā)育時(shí)期的差異表達(dá)基因,可為進(jìn)一步研究基因表達(dá)調(diào)控提供依據(jù)。2004年,Hamatani等[8]和Wang等[9]分別利用芯片技術(shù)系統(tǒng)檢測了小鼠體內(nèi)不同發(fā)育階段早期胚胎基因表達(dá),初步篩選到一大批不同發(fā)育階段差異表達(dá)基因。Wang等[10]利用基因芯片檢測了體外8個(gè)不同發(fā)育時(shí)期胚胎基因表達(dá)情況,并與Wang[9]的體內(nèi)芯片結(jié)果進(jìn)行比較,試圖揭示造成體內(nèi)外胚胎表型差異的分子機(jī)制,但由于其樣本含量較小(20個(gè)桑椹胚,15個(gè)囊胚),結(jié)果不理想。Kageyama等利用mRNA擴(kuò)增系統(tǒng)及基因芯片技術(shù)對附植前不同發(fā)育階段胚胎轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子的表達(dá)分析發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)錄因子在1-細(xì)胞和2-細(xì)胞,也就是合子基因組激活(zygotic genome activation,ZGA)時(shí)期表達(dá)變化較大[11]。Goossens等構(gòu)建了2-細(xì)胞和8-細(xì)胞抑制消減雜交文庫,并利用實(shí)時(shí)定量PCR驗(yàn)證了部分差異表達(dá)基因,進(jìn)一步利用免疫熒光標(biāo)記從蛋白質(zhì)水平上驗(yàn)證了KRT18,F(xiàn)N1和MYL6三個(gè)基因在附植前不同發(fā)育階段胚胎差異表達(dá)[12],提出可將這三個(gè)基因作為牛囊胚形成的標(biāo)記基因。
高通量轉(zhuǎn)錄譜的對比研究對解析早期胚胎發(fā)育的復(fù)雜網(wǎng)絡(luò)調(diào)控起到一定積極作用,但這些差異表達(dá)基因與不同階段胚胎差異的關(guān)系還需要進(jìn)一步研究。因此,很多學(xué)者通過單個(gè)基因過表達(dá)或抑制表達(dá)研究基因在早期胚胎發(fā)育中的功能。Sheth等將緊密連接相關(guān)蛋白ZO-1或ZO-2的siRNA顯微注射到合子或2-細(xì)胞胚胎,延遲了囊胚腔發(fā)育[13]。Foygel等利用反義 morpholino寡核苷酸(morpholino oligonucleotide,MO)介導(dǎo)Oct4基因敲降,發(fā)現(xiàn)Oct4敲降的胚胎不能發(fā)育至囊胚,表明該基因?qū)δ遗叩陌l(fā)育至關(guān)重要。作者進(jìn)一步利用芯片技術(shù)檢測了由Oct4調(diào)控的基因表達(dá),初步推測了其在早期胚胎發(fā)育中的分子調(diào)控網(wǎng)絡(luò),在30多個(gè)受Oct4調(diào)控的基因中,Rest和Mta2在2-細(xì)胞階段受到 Oct4 的嚴(yán)格調(diào)控[14]。
圖1 小鼠附植前胚胎發(fā)育過程(E0-E5)
早期胚胎發(fā)育到囊胚期,進(jìn)入子宮,開始附植(implantation),這是決定哺乳動(dòng)物繁殖性狀成敗的關(guān)鍵一步,附植成功與否,取決于胚胎和子宮兩個(gè)方面。受精之后,子宮內(nèi)膜和胚胎均發(fā)生了一系列顯著的形態(tài)學(xué)變化,最終子宮內(nèi)膜高度敏感,具備了接受胚胎粘附和侵入的能力,子宮這一可接受囊胚期胚胎附植的狀態(tài)稱為“植入窗口”,亦即窗口期[15~18]。然而,妊娠第4天(以見栓為第1天,妊娠第4天相當(dāng)于E3.5,依次類推)摘除小鼠卵巢誘發(fā)了延遲植入(delayed implantation),并且將延緩植入的囊胚移植到“植入窗口期”子宮內(nèi)亦不能附植[19],表明,胚胎植入前還需要經(jīng)歷“激活”過程。同時(shí),對于附植來說,子宮處于窗口期與激活的囊胚兩個(gè)條件缺一不可。
大多數(shù)哺乳動(dòng)物,排卵后子宮內(nèi)膜的腔上皮(luminal epithelium)、腺上皮(glandular epithelium)和基質(zhì)(stroma)3種組織均發(fā)生了明顯的細(xì)胞增生。子宮內(nèi)膜細(xì)胞尤其是腺上皮的增生方式及程度表現(xiàn)出一定的種間差異[20~23]。以小鼠為例,臨近排卵時(shí),腔上皮細(xì)胞有絲分裂達(dá)到峰值,腺上皮個(gè)別細(xì)胞出現(xiàn)有絲分裂,而基質(zhì)細(xì)胞則不分裂。排卵及其稍后的時(shí)間內(nèi),腔上皮、腺上皮和基質(zhì)均無細(xì)胞增生,排卵后3天,腺上皮細(xì)胞突然出現(xiàn)有絲分裂峰,腔上皮細(xì)胞也出現(xiàn)一個(gè)小的增殖峰。第4天,上皮細(xì)胞增殖現(xiàn)象急劇減少,而基質(zhì)細(xì)胞有絲分裂增多,并持續(xù)至第5天。如果植入失敗,子宮內(nèi)膜細(xì)胞有絲分裂維持在低水平,直到下一個(gè)周期開始。而靈長類動(dòng)物,如果植入失敗,子宮內(nèi)膜迅速退化細(xì)胞發(fā)生凋亡,無植入發(fā)生的子宮內(nèi)膜碎片將以月經(jīng)的形式排出。但一旦胚胎附著,子宮內(nèi)膜變化達(dá)到極致,對囊胚非常敏感并接受其附著。子宮附植的準(zhǔn)備受母體性腺甾類激素(雌激素和孕酮)的調(diào)節(jié),按照子宮接受胚胎的能力,子宮可分為接受前期、接受期(即窗口期)和非接受期三個(gè)發(fā)育階段(圖2),窗口期發(fā)生在雌激素峰之后。如果未發(fā)生囊胚植入,則子宮進(jìn)入非接受期。
圖2 小鼠子宮3個(gè)發(fā)育階段
如果囊胚成功植入,子宮內(nèi)膜基質(zhì)則發(fā)生蛻膜反應(yīng)(decidualization)。在與胚胎接觸的子宮內(nèi)膜上形成植入小室(implantation chamber)[25]。小鼠妊娠后5~5.5天,子宮系膜對側(cè)的植入小室周圍形成初級蛻膜帶(primary decidual zone)。初級蛻膜帶中的蛻膜細(xì)胞分化成偽表皮表型,體積增大,細(xì)胞核增多,富含內(nèi)質(zhì)網(wǎng),并形成大量的緊密連接、橋粒連接和縫隙連接[26],當(dāng)胚胎向系膜對側(cè)延伸時(shí),初級蛻膜帶的蛻膜細(xì)胞開始從植入小室向外發(fā)生凋亡,并被滋養(yǎng)層細(xì)胞吞噬。初級蛻膜帶形成后不久,系膜側(cè)蛻膜形成系膜極(mesometrial pole)。而系膜極的蛻膜細(xì)胞體積較小,只有單個(gè)核,細(xì)胞間存在大量的縫隙聯(lián)接和橋粒聯(lián)接[25]。整個(gè)妊娠期間,蛻膜始終存在。
胚胎附植過程可分為胚胎定向期(apposition),附著期(Attachment)和侵入期(Penetration)3個(gè)階段[27]。胚胎附植過程發(fā)生在窗口期子宮。
2.2.1 定向期
在小鼠中,由于子宮基質(zhì)水腫、膨大導(dǎo)致的子宮腔體閉合,或因囊胚體積增大,胚胎滋養(yǎng)層與子宮內(nèi)膜腔上皮開始接觸。由于動(dòng)物排卵數(shù)目和子宮結(jié)構(gòu)不同,胚胎在宮腔相對位置和滋養(yǎng)層與子宮內(nèi)膜的接觸程度存在顯著差異,據(jù)此,可將胚胎植入分為3個(gè)類型:一是中央或表面植入,特點(diǎn)是胚胎體積增大,充滿宮腔,滋養(yǎng)層與內(nèi)膜大面積接觸,胚泡不侵入子宮壁內(nèi)部。代表動(dòng)物包括食肉類、兔形類和某些靈長類動(dòng)物;二是偏心植入,胚泡體積小,而宮腔相當(dāng)大,胚泡深嵌于一側(cè)宮腔上皮的陷凹或腺窩中,胚泡生出微絨毛插入內(nèi)膜上皮細(xì)胞間隙,并侵入內(nèi)膜基質(zhì)。許多嚙齒類動(dòng)物的植入屬于此類型。三是完全侵入植入,胚泡附著于子宮內(nèi)膜后,侵蝕內(nèi)膜上皮,穿透上皮基膜,完全侵入內(nèi)膜基質(zhì)當(dāng)中。胚胎在子宮壁內(nèi)生長發(fā)育。蝙蝠、靈長類中的狹鼻猴、猩猩和人屬于這種類型[28]。
2.2.2 附著期
胚胎定位后,子宮內(nèi)膜上皮和胚胎滋養(yǎng)層接觸程度逐步增強(qiáng)。交錯(cuò)排列的滋養(yǎng)層細(xì)胞和子宮內(nèi)膜上皮細(xì)胞表面的微絨毛開始發(fā)生變化,逐漸變得鈍圓而無規(guī)則;與此同時(shí),部分細(xì)胞質(zhì)形成球狀突起,滋養(yǎng)層細(xì)胞與內(nèi)膜細(xì)胞頂部或側(cè)壁形成一些堅(jiān)實(shí)的半橋粒連接或共胞質(zhì)區(qū),使滋養(yǎng)層與內(nèi)膜上皮的接觸更趨緊密。子宮內(nèi)膜的上述變化稱為粘附反應(yīng)(attachment reaction)。發(fā)生粘附反應(yīng)同時(shí),子宮內(nèi)膜的血管通透性增大,胚泡周圍的子宮內(nèi)膜明顯水腫。如果給小鼠靜脈注射大分子染料Chicago blue B,可在子宮植入位點(diǎn)清楚地觀察到染料分子從血管滲出形成的藍(lán)色條帶[29](圖3)。
圖3 靜脈注射Chicago blue B后的子宮
2.2.3 侵入期
胚泡粘附后,與子宮內(nèi)膜聯(lián)接的滋養(yǎng)外胚層細(xì)胞分化成為初級滋養(yǎng)層細(xì)胞(primary trophoblast giant cells),并分泌降解子宮內(nèi)膜基質(zhì)的蛋白酶,吞噬凋亡的子宮內(nèi)膜細(xì)胞成分,促使胚胎侵入子宮內(nèi)膜基質(zhì)[25]。根據(jù)滋養(yǎng)層及絨毛膜和子宮內(nèi)膜的關(guān)系,胎盤分為上皮絨毛膜型(epithelio-chorial type)、內(nèi)皮絨毛膜型(endothelio-chorial type)、血內(nèi)皮型(haemo-endothelial type)和血絨毛膜型(haemo-chorial type)。除上皮絨毛模型胎盤動(dòng)物外,其它動(dòng)物胚胎均需侵入子宮壁,與母體血管建立緊密聯(lián)系。動(dòng)物胚胎的侵入方式大體歸為以下幾類(圖4)[15]。
圖4 不同物種的胚胎植入方式
雖然附植不同時(shí)期的細(xì)胞事件已經(jīng)比較清楚[15,27],但對于附植過程分子調(diào)控機(jī)理的研究相對滯后,并且這個(gè)非常復(fù)雜的過程也存在物種差異,因此在哺乳動(dòng)物中建立一個(gè)統(tǒng)一的模型是不現(xiàn)實(shí)的。為深入研究附植機(jī)理,有必要搞清哪個(gè)信號(hào)通路是決定性的,哪個(gè)是互補(bǔ)或?qū)沟?,他們之間是如何相互調(diào)節(jié)的,哪個(gè)信號(hào)通路在正常妊娠時(shí)并無太大作用,而在某些應(yīng)激情況下是重要的。對這些問題的探究對解決女性生殖健康問題同樣有益。
研究顯示,白血病抑制因子(leukemia inhibitory factor,LIF)、同源框蛋白Hoxa10、Wnt等局部分泌的信號(hào)分子與卵巢釋放的激素以自分泌、旁分泌和臨分泌的方式介導(dǎo)胚胎和子宮的相互作用。
3.1.1 雌激素和孕酮
卵巢釋放的孕酮和雌激素[16]是決定子宮接受能力的重要激素。孕酮對所有哺乳動(dòng)物附植和妊娠都非常重要,而雌激素卻存在種間差異。例如孕酮和雌激素是小鼠和大鼠附植的必要因素,而豬、豚鼠和倉鼠的附植則不需要卵巢分泌的雌激素。雖然小鼠和人雌激素對于附植非常重要,但其在小鼠和人胚胎附植過程中的作用尚不十分清楚[30]。雌激素和孕酮對子宮的影響是通過各自核受體(雌激素受體ER和孕激素受體PR)實(shí)現(xiàn)的。選擇性刪除ER和PR不同亞型的研究顯示,Erα-/-子宮發(fā)育不全,不能支持附植[31],而Erβ-/-子宮仍然可以發(fā)生附植。有趣的是在人工誘導(dǎo)蛻膜化的Erα-/-小鼠模型中,單靠P4就能使子宮發(fā)生蛻膜反應(yīng),說明ERα對于胚胎粘附可能是必要的,而對于后續(xù)的蛻膜化并無作用[32,33]。正常子宮中表達(dá)PRA和PRB,缺失PRA和PRB小鼠則表現(xiàn)卵巢和子宮功能異常,進(jìn)而產(chǎn)生雌性不育[34]。
3.1.2 細(xì)胞因子
細(xì)胞因子LIF是白細(xì)胞介素6家族成員,可與白細(xì)胞介素6信號(hào)傳感器gp130共同結(jié)合到LIF受體上,對子宮附植準(zhǔn)備非常重要。LIF最先在妊娠第4天的小鼠子宮腺體中表達(dá),然后在附著期囊胚周圍的基質(zhì)細(xì)胞中表達(dá)[35,36],表明 LIF有起始子宮準(zhǔn)備和后續(xù)粘附兩重功能。Lif-/-小鼠囊胚始終處于休眠期而不能附植。目前僅gp130對LIF功能的必要性得到驗(yàn)證[37],而妊娠過程中LIF行使功能的分子機(jī)制尚不清楚。
3.1.3 同源框蛋白
同源框轉(zhuǎn)錄因子對于子宮的接受能力和植入非常重要。B型同源框基因Hoxa10和Hoxa11在接受期小鼠子宮基質(zhì)細(xì)胞中表達(dá),并一直持續(xù)到附植后的蛻膜化過程,暗示這兩種同源框基因在子宮接受期、植入和蛻膜化過程中功能的重疊[38~41]。大多數(shù) Hoxa10-/-雌鼠由于基質(zhì)細(xì)胞增殖的減弱及后續(xù)蛻膜化的失敗導(dǎo)致不育[38,40]。而 Hoxa10 對于子宮接受能力并非必不可少,因?yàn)镠oxa10-/-小鼠囊胚可與子宮發(fā)生粘附,而Hoxa10在Lif-/-小鼠中表達(dá)正常。相比之下,Hoxa11-/-小鼠子宮發(fā)育不正常,腺體較少,比Hoxa10-/-小鼠表型更不正常。更重要的是,Hoxa11-/-小鼠子宮不表達(dá)Lif,說明Hoxa11對于子宮接受和后續(xù)的植入能力都至關(guān)重要[42]。人子宮分泌期Hoxa10和 Hoxa11都上調(diào)表達(dá)[43]。不同于Hox,Hmx3屬于另一同源框基因家族,在子宮肌層表達(dá),基因打靶實(shí)驗(yàn)顯示,Hmx3-/-小鼠胚胎不能發(fā)生附植,原因尚不清楚[44]。同源框基因Msx1僅在接受期子宮上皮中表達(dá),但囊胚粘附期或子宮非接受期不表達(dá)[45],Lif-/-小鼠 Msx1的持續(xù)表達(dá)更證實(shí)了其在子宮接受期的重要性。然而,Msx1在接受期人子宮內(nèi)膜卻下調(diào)表達(dá)[46]。
3.1.4 形成素
妊娠過程中 hedgehog(HH),WNT和BMP(bone-morphogenetic-protein,骨形成蛋白)等形成素備受關(guān)注。子宮中Ihh(Indian hedgehog)、Ptc(HH-binding protein/receptor Patched)及轉(zhuǎn)錄因子Gli1-3等HH信號(hào)通路成員[47,48]參與了子宮接受過程,妊娠第 4天,子宮上皮細(xì)胞中Ihh的表達(dá)依賴于孕酮,同時(shí)基質(zhì)中 Ptc、Gli1和 Gli2上調(diào)表達(dá)。WNT4和BMP2則在附植和附植后發(fā)揮了重要作用。sfrp4是WNT的拮抗劑,與anti-BMP在接受期子宮基質(zhì)中表達(dá)[49]。Wnt4和Bmp2在這一時(shí)期并不表達(dá),而一旦胚胎附著到子宮上,它們都被激活,同時(shí)其拮抗劑立即消失[49]。Lif-/-小鼠子宮中 sfrp4顯著地下調(diào),說明WNT信號(hào)通路成員對于附植前子宮的準(zhǔn)備非常重要[45]。Wnt2缺失的小鼠胎出現(xiàn)胎盤缺陷,主要表現(xiàn)為胎盤組織形態(tài)異常,包括水腫、組織結(jié)構(gòu)破壞和積血[50]。Wnt7a在成年雌性動(dòng)物子宮腔上皮表達(dá),其功能的缺失導(dǎo)致生殖道發(fā)育的不正常及Hoxa10和Hoxa11的缺失。Wnt7a-/-雌性小鼠子宮缺乏腺體,并且子宮基層組織異常,導(dǎo)致不育,說明Wnt7a對正常構(gòu)建子宮細(xì)胞具有重要作用[51]。
妊娠時(shí),子宮和胚胎通過分泌信號(hào)分子相互傳遞信息完成母胎對話,這些信號(hào)分子主要通過旁分泌(Paracrine)、臨分泌(Juxtacrine)和自分泌(Autocrine)3種方式進(jìn)行傳遞。旁分泌的特點(diǎn)是,發(fā)出信號(hào)的細(xì)胞會(huì)分泌一種特異分子,通過某些方式傳遞給受體細(xì)胞。信號(hào)的發(fā)出者和接受者不必接觸,但必須是異種細(xì)胞。而臨分泌中,信號(hào)的發(fā)出者和接受者相互臨近,細(xì)胞發(fā)出的表面信號(hào)分子直接被接受細(xì)胞表面的相應(yīng)受體所識(shí)別和接受,類似于抗原-抗體反應(yīng),不需要特異的信號(hào)傳遞。自分泌則是細(xì)胞分泌的信號(hào)分子再傳遞給自身的一種信息傳遞方式,一般靠此種方式進(jìn)行信號(hào)放大。
HB-EGF(Heparin binding epidermal growth factor-like growth factor)是已驗(yàn)證的在小鼠胚胎和子宮上皮發(fā)生粘附之前表達(dá)的基因,并通過旁分泌、臨分泌及自分泌方式調(diào)節(jié)胚胎和子宮的相應(yīng)生理過程,HB-EGF通路調(diào)節(jié)機(jī)制見圖5。
圖5 HB-EGF信號(hào)通路總覽
小鼠囊胚一般在妊娠第4.5天進(jìn)行附植,在妊娠第4天早上(9時(shí))切除卵巢則會(huì)導(dǎo)致胚胎進(jìn)入休眠狀態(tài)不發(fā)生附植,這一狀態(tài)被稱作延遲附植,持續(xù)注射孕酮后可維持這一狀態(tài),如果給小鼠注射雌激素,胚胎會(huì)迅速被激活重新發(fā)生附植[53]。正常情況下也會(huì)發(fā)生延遲附植,例如,小鼠產(chǎn)后排卵并交配,卵子受精發(fā)育到囊胚,但由于母鼠處于哺乳期,仔鼠吮吸乳頭的刺激使囊胚處于休眠期,直到哺乳期過后才會(huì)起始附植。利用基因芯片對休眠期和激活胚胎進(jìn)行的轉(zhuǎn)錄譜分析表明,細(xì)胞周期、能量代謝、細(xì)胞信號(hào)尤其是HB-EGF信號(hào)通路等許多功能基因都存在差異表達(dá)[54]。
小鼠延遲附植模型對于研究母胎對話機(jī)制,分析基因功能非常重要,與胚胎移植等相結(jié)合,可以建立“休眠胚胎-體外激活-胚胎移植”模型,從而分析某些物質(zhì)對于胚胎激活是否有作用。具體而言:利用延遲附植模型獲取休眠狀態(tài)囊胚,用未知功能物質(zhì)處理胚胎,再將胚胎移植到假孕受體中,如果胚胎發(fā)生附植,則說明該未知功能物質(zhì)可以激活胚胎發(fā)生植入(圖 6)[54]。
圖6 “休眠胚胎-體外激活-胚胎移植”模型
母胎對話是諸多基因共同協(xié)調(diào)進(jìn)行的結(jié)果,很難劃分出某一特定基因并對其進(jìn)行功能研究。Paria等2001年建立的磁珠模型解決了這一問題[49]。Paria首先選取和囊胚直徑一樣大小的磁珠,然后和純化的目的蛋白溶液浸潤,使蛋白吸附到磁珠之上,在合適的時(shí)間將磁珠移植到小鼠子宮中(方法與囊胚移植相同),分析子宮后續(xù)的基因表達(dá)及組織學(xué)變化情況(圖7)[17]。該模型可用于研究特定基因(蛋白)在胚胎附植時(shí)的功能,而屏蔽了其他因素的干擾,為體內(nèi)研究通路機(jī)制提供了途徑。
圖7 磁珠移植
基因敲除模型是研究基因功能的一種常規(guī)模型。2006年,Wang向轉(zhuǎn)基因小鼠(LacZ ROSA26 reporter mice,帶有 LoxP位點(diǎn)的LacZ失活基因)的子宮中注射一定劑量的ADV-Cre(攜帶Cre重組酶的腺病毒),使子宮中特異組織表達(dá)Cre重組酶,從而證明該方法能使子宮特異組織轉(zhuǎn)基因[55]。Qinghua Liu等利用CHK1敲除鼠研究了該基因在圍附植期的功能,發(fā)現(xiàn)Chk1-/-小鼠發(fā)生圍附植期胚胎丟失[56]。Yoon Jeon等為研究TopBP1基因功能,構(gòu)建了條件敲除的TopBP1缺陷小鼠。TopBP1在染色體附植與DNA損傷應(yīng)答中起重要作用。作者發(fā)現(xiàn)TopBP1缺陷的小鼠傾向于在圍附植期發(fā)生死亡,表明該基因?qū)υ缙谂咛グl(fā)育中的細(xì)胞增殖起著重要作用[57]。
針對胚胎與母體子宮對話分子機(jī)制的探索和研究將有助于體外胚胎生產(chǎn)體系的優(yōu)化和完善,提高體外胚胎妊娠效率,從而減少人工輔助生殖的早期胚胎丟失和后代健康缺陷,改善優(yōu)良種畜的育種和擴(kuò)繁效率、促進(jìn)地方品種和稀缺良種的保種等[1~4]。然而目前為止,利用上述技術(shù)對附植過程的認(rèn)識(shí)主要集中在特定的基因或通路。隨著基因芯片、轉(zhuǎn)錄組測序、蛋白質(zhì)譜等高通量測序手段的應(yīng)用,人們可以遴選出更多的候選基因和通路,并研究其在母胎對話和附植過程中的作用。更重要的是,這些高通量技術(shù)手段結(jié)合生物信息學(xué)分析,可以更加完整的描述附植過程中各個(gè)基因/蛋白間的協(xié)調(diào)和互作關(guān)系,為母胎對話機(jī)制的研究提供詳盡的參考。近年來,利用人[58,59]、小鼠[9]、豬[60]、牛[61]、羊[62]等物種的早期胚胎或子宮內(nèi)膜已經(jīng)建立了大量的轉(zhuǎn)錄組和蛋白質(zhì)組數(shù)據(jù)庫。此外,近年來,甲基化、miRNA等表觀修飾在胚胎附植和母胎對話過程同樣扮演著重要的角色。Julie Borgel和 Zachary D.Smith等先后建立了小鼠附植前后胚胎的甲基化組數(shù)據(jù)庫[63,64]。Shi- Jun Hu 和 Ren -Wei Su等分別證實(shí)了子宮內(nèi)膜miRNA的異常表達(dá)是導(dǎo)致小鼠胚胎附植延遲的重要原因[65,66]。隨著信息分析技術(shù)不斷發(fā)展,將轉(zhuǎn)錄組或蛋白質(zhì)組等基因(蛋白)表達(dá)數(shù)據(jù)與甲基化或miRNA數(shù)據(jù)進(jìn)行整合分析,為遴選附植前母胎對話的關(guān)鍵表觀因子或位點(diǎn),真正深入理解調(diào)控胚胎附植的分子基礎(chǔ)提供了很好的思路。
[1]Fernandez-Gonzalez R,de Dios H J,Lopez-Vidriero I,et al.Analysis of gene transcription alterations at the blastocyst stage related to the long-term consequences of in vitro culture in mice.Reproduction,2009,137(2):271-283.
[2]Fauque P,Mondon F,Letourneur F,et al.In vitro fertilization and embryo culture strongly impact the placental transcriptome in the mouse model.PLoS One,2010,5(2):e9218.
[3]Bauer B K,Isom S C,Spate L D,et al.Transcriptional profiling by deep sequencing identifies differences in mRNA transcript abundance in in vivo-derived versus in vitro - cultured porcine blastocyst stage embryos.Biol Reprod,2010,83(5):791 -798.
[4]Kepkova K V,Vodicka P,Toralova T,et al.Transcriptomic analysis of in vivo and in vitro produced bovine embryos revealed a developmental change in cullin 1 expression during maternal-to-embryonic transition.Theriogenology,2011,75(9):1582-1595.
[5]Wrenzycki C,Herrmann D,Lucas- Hahn A,et al.Gene expression patterns in in vitro-produced and somatic nuclear transfer-derived preimplantation bovine embryos:relationship to the large offspring syndrome?Anim Reprod Sci,2004,82-83:593-603.
[6]Lazzari G,Wrenzycki C,Herrmann D,et al.Cellular and molecular deviations in bovine in vitro-produced embryos are related to the large offspring syndrome.Biol Reprod,2002,67(3):767-775.
[7]National Institutes of Health.Stem Cells:Scientific Progress and Future Research Directions.Stem Cell Information[online],http://stemcells.nih.gov/info/scireport(2001).
[8]Hamatani T,Carter M G,Sharov A A,et al.Dynamics of global gene expression changes during mouse preimplantation development. Dev Cell,2004,6(1):117-131.
[9]Wang Q T,Piotrowska K,Ciemerych M A,et al.A genome-wide study of gene activity reveals developmental signaling pathways in the preimplantation mouse embryo.Dev Cell,2004,6(1):133 -144.
[10]Wang S,Cowan C A,Chipperfield H,et al.Gene expression in the preimplantation embryo:in-vitro developmental changes. Reprod Biomed Online,2005,10(5):607-616.
[11]Kageyama S,Gunji W,Nakasato M,et al.Analysis of transcription factor expression during oogenesis and preimplantation development in mice.Zygote,2007,15(2):117-128.
[12]Goossens K,Van Soom A,Van Poucke M,et al.I-dentification and expression analysis of genes associated with bovine blastocyst formation. BMC Dev Biol,2007,7:64.
[13]Sheth B,Nowak R L,Anderson R,et al.Tight junction protein ZO-2 expression and relative function of ZO-1 and ZO -2 during mouse blastocyst formation.Exp Cell Res,2008,314(18):3356-3368.
[14]Foygel K,Choi B,Jun S,et al.A novel and critical role for Oct4 as a regulator of the maternal-embryonic transition.PLoS One,2008,3(12):e4109.
[15]Carson D D,Bagchi I,Dey S K,et al.Embryo implantation.Dev Biol,2000,223(2):217 -237.
[16]Dey S K,Lim H,Das S K,et al.Molecular cues to implantation.Endocr Rev,2004,25(3):341 -373.
[17]Paria B C,Reese J,Das S K,et al.Deciphering the cross- talk of implantation:advances and challenges.Science,2002,296(5576):2185 -2188.
[18]Red-Horse K,Zhou Y,Genbacev O,et al.Trophoblast differentiation during embryo implantation and formation of the maternal- fetal interface.J Clin Invest,2004,114(6):744 -754.
[19]Paria B C,Huet - Hudson Y M,Dey S K.Blastocyst's state of activity determines the“window”of implantation in the receptive mouse uterus.Proceedings of the National Academy of Sciences,1993,90(21):10159-10162.
[20]Finn C A,Martin L.Patterns of cell division in the mouse uterus during early pregnancy.J Endocrinol,1967,39(4):593-597.
[21]Zhinkin L N,Samoshkina N A.DNA synthesis and cell proliferation during the formation of deciduomata in mice.J Embryol Exp Morphol,1967,17(3):593-605.
[22]Marcus G J.Hormonal control of proliferation in the guinea- pig uterus.J Endocrinol,1974,63(1):89-97.
[23]Marcus G J.Mitosis in the rat uterus during the estrous cycle,early pregnancy,and early pseudopregnancy.Biol Reprod,1974,10(4):447-452.
[24]Wang H,Dey S K.Roadmap to embryo implantation:clues from mouse models.Nat Rev Genet,2006,7(3):185-199.
[25]Welsh A O,Enders A C.Chorioallantoic placenta formation in the rat.III.Granulated cells invade the uterine luminal epithelium at the time of epithelial cell death.Biol Reprod,1993,49(1):38 -57.
[26]Tung H N,Parr M B,Parr E L.The permeability of the primary decidual zone in the rat uterus:an ultrastructural tracer and freeze-fracture study.Biology of Reproduction,1986,35(4):1045-1058.
[27]Enders A C,Schlafke S.A morphological analysis of the early implantation stages in the rat.American Journal of Anatomy,1967,120(2):185 -225.
[28]楊利國.動(dòng)物繁殖學(xué).第二版.北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2010.
[29]Yoon S J,Choi D H,Lee W S,et al.A molecular basis for embryo apposition at the luminal epithelium.Mol Cell Endocrinol,2004,219(1-2):95-104.
[30]Simon C,Dominguez F,Valbuena D,et al.The role of estrogen in uterine receptivity and blastocyst implantation.Trends Endocrinol Metab,2003,14(5):197-199.
[31]Lubahn D B,Moyer J S,Golding T S,et al.Alteration of reproductive function but not prenatal sexual development after insertional disruption of the mouse estrogen receptor gene.Proc Natl Acad Sci U S A,1993,90(23):11162-11166.
[32]Curtis S W,Clark J,Myers P,et al.Disruption of estrogen signaling does not prevent progesterone action in the estrogen receptor alpha knockout mouse uterus.Proc Natl Acad Sci U S A,1999,96(7):3646-3651.
[33]Paria B C,Tan J,Lubahn D B,et al.Uterine decidual response occurs in estrogen receptor-alpha-deficient mice.Endocrinology,1999,140(6):2704 -2710.
[34]Lydon J P,DeMayo F J,F(xiàn)unk C R,et al.Mice lacking progesterone receptor exhibit pleiotropic reproductive abnormalities.Genes Dev,1995,9(18):2266-2278.
[35]Song H,Lim H,Das S K,et al.Dysregulation of EGF family of growth factors and COX-2 in the uterus during the preattachment and attachment reactions of the blastocyst with the luminal epithelium correlates with implantation failure in LIF-deficient mice.Mol Endocrinol,2000,14(8):1147 -1161.
[36]Stewart C L,Kaspar P,Brunet L J,et al.Blastocyst implantation depends on maternal expression of leukaemia inhibitory factor.Nature,1992,359(6390):76 -79.
[37]Ernst M,Inglese M,Waring P,et al.Defective gp130-mediated signal transducer and activator of transcription(STAT)signaling results in degenerative joint disease,gastrointestinal ulceration,and failure of uterine implantation.J Exp Med,2001,194(2):189-203.
[38]Benson G V,Lim H,Paria B C,et al.Mechanisms of reduced fertility in Hoxa-10 mutant mice:uterine homeosis and loss of maternal Hoxa-10 expression.Development,1996,122(9):2687 -2696.
[39]Hsieh - Li H M,Witte D P,Weinstein M,et al.Hoxa 11 structure,extensive antisense transcription,and function in male and female fertility.Development,1995,121(5):1373 -1385.
[40]Lim H,Ma L,Ma W G,et al.Hoxa-10 regulates uterine stromal cell responsiveness to progesterone during implantation and decidualization in the mouse.Mol Endocrinol,1999,13(6):1005 -1017.
[41]Satokata I,Benson G,Maas R.Sexually dimorphic sterility phenotypes in Hoxa10-deficient mice.Nature,1995,374(6521):460-463.
[42]Gendron R L,Paradis H,Hsieh - Li H M,et al.Abnormal uterine stromal and glandular function associated with maternal reproductive defects in Hoxa-11 null mice.Biol Reprod,1997,56(5):1097 -1105.
[43]Taylor H S,Arici A,Olive D,et al.HOXA10 is expressed in response to sex steroids at the time of implantation in the human endometrium.J Clin Invest,1998,101(7):1379-1384.
[44]Wang W,Van De Water T,Lufkin T.Inner ear and maternal reproductive defects in mice lacking the Hmx3 homeobox gene.Development,1998,125(4):621-634.
[45]Daikoku T,Song H,Guo Y,et al.Uterine Msx-1 and Wnt4 signaling becomes aberrant in mice with the loss of leukemia inhibitory factor or Hoxa-10:evidence for a novel cytokine-h(huán)omeobox-Wnt signaling in implantation. Mol Endocrinol,2004,18(5):1238-1250.
[46]Riesewijk A,Martin J,van Os R,et al.Gene expression profiling of human endometrial receptivity on days LH+2 versus LH+7 by microarray technology.Mol Hum Reprod,2003,9(5):253-264.
[47]Takamoto N,Zhao B,Tsai S Y,et al.Identification of Indian hedgehog as a progesterone-responsive gene in the murine uterus. Mol Endocrinol,2002,16(10):2338-2348.
[48]Matsumoto H,Zhao X,Das S K,et al.Indian hedgehog as a progesterone-responsive factor mediating epithelial-mesenchymal interactions in the mouse uterus.Dev Biol,2002,245(2):280 -290.
[49]Paria B C,Ma W,Tan J,et al.Cellular and molecular responses of the uterus to embryo implantation can be elicited by locally applied growth factors.Proc Natl Acad Sci U S A,2001,98(3):1047-1052.
[50]Monkley S J,Delaney S J,Pennisi D J,et al.Targeted disruption of the Wnt2 gene results in placentation defects.Development,1996,122(11):3343 -3353.
[51]Parr B A,McMahon A P.Sexually dimorphic development of the mammalian reproductive tract requires Wnt-7a.Nature,1998,395(6703):707 -710.
[52]Lim H J,Dey S K.HB - EGF:a unique mediator of embryo-uterine interactions during implantation.Exp Cell Res,2009,315(4):619 -626.
[53]Yoshinaga K,Adams C E.Delayed implantation in the spayed,progesterone treated adult mouse.J Reprod Fertil,1966,12(3):593 -595.
[54]Hamatani T,Daikoku T,Wang H,et al.Global gene expression analysis identifies molecular pathways distinguishing blastocyst dormancy and activation.Proc Natl Acad Sci U S A,2004,101(28):10326 -10331.
[55]Wang H,Xie H,Zhang H,et al.Conditional gene recombination by adenovirus-driven Cre in the mouse uterus.Genesis,2006,44(2):51 -56.
[56]Sakaki- Yumoto M,Kobayashi C,Sato A,et al.The murine homolog of SALL4,a causative gene in Okihiro syndrome,is essential for embryonic stem cell proliferation,and cooperates with Sall1 in anorectal,heart,brain and kidney development.Development,2006,133(15):3005-3013.
[57]Jeon Y,Ko E,Lee K Y,et al.TopBP1 deficiency causes an early embryonic lethality and induces cellular senescence in primary cells.J Biol Chem,2011,286(7):5414-5422.
[58]Fang H,Yang Y,Li C,et al.Transcriptome analysis of early organogenesis in human embryos.Dev Cell,2010,19(1):174 -184.
[59]Haouzi D,Dechaud H,Assou S,et al.Transcriptome analysis reveals dialogues between human trophectoderm and endometrial cells during the implantation period.Hum Reprod,2011,26(6):1440 -1449.
[60]Samborski A,Graf A,Krebs S,et al.Deep sequencing of the porcine endometrial transcriptome on day 14 of pregnancy.Biol Reprod,2013,88(4):84.
[61]Mansouri - Attia N,Aubert J,Reinaud P,et al.Gene expression profiles of bovine caruncular and intercaruncular endometrium at implantation.Physiol Genomics,2009,39(1):14 -27.
[62]Gray C A,Abbey C A,Beremand P D,et al.Identification of endometrial genes regulated by early pregnancy,progesterone,and interferon tau in the ovine uterus.Biol Reprod,2006,74(2):383 -394.
[63]Borgel J,Guibert S,Li Y,et al.Targets and dynamics of promoter DNA methylation during early mouse development.Nat Genet,2010,42(12):1093 -1100.
[64]Smith Z D,Chan M M,Mikkelsen T S,et al.A unique regulatory phase of DNA methylation in the early mammalian embryo. Nature,2012,484(7394):339-344.
[65]Hu S J,Ren G,Liu J L,et al.MicroRNA expression and regulation in mouse uterus during embryo implantation.J Biol Chem,2008,283(34):23473 -23484.
[66]Su R W,Lei W,Liu J L,et al.The integrative analysis of microRNA and mRNA expression in mouse uterus under delayed implantation and activation.PLoS One,2010,5(11):e15513.
S814.3
A
1005-2739(2013)03-0003-10
2013-03-19
陶俐 (1989-),在讀碩士研究生,專業(yè)方向:動(dòng)物遺傳育種與繁殖。