張婷婷,仝莉,肖君華,李凱,周宇荀
(東華大學(xué)生物科學(xué)與技術(shù)研究所,上海 201620)
性發(fā)育(puberty)是哺乳動物個體性成熟并獲得生殖能力的過程,以哺乳動物生殖及內(nèi)分泌系統(tǒng)中的下丘腦-垂體-性腺軸(HPGA)[1]的再次激活為標(biāo)志,受到遺傳、環(huán)境等多種因素的影響,但其確切的分子機(jī)制尚不明確。
近年來,很多人利用小鼠對性發(fā)育機(jī)制進(jìn)行研究[2]。2004 年,PaLmert[3]運(yùn)用染色體替換(chromosome substitution strains,CSS)技術(shù)來研究雌性小鼠的性發(fā)育機(jī)制[4,5]。他們通過雌鼠陰道口開啟時間有差異的兩個近交系A(chǔ)/J和C57BL/6J(B6)構(gòu)建染色體替換系[6,7],觀察發(fā)現(xiàn),當(dāng) A/J小鼠的 6號或13號染色體替換進(jìn)B6小鼠的基因組后,產(chǎn)生的替換品系雌鼠的陰道口開啟時間比B6明顯提前,而X染色體的替換沒有上述的表型差異。2006年,Thomas等在 PaLmert前期研究結(jié)果的基礎(chǔ)上,在6號染色體替換系小鼠中構(gòu)建了同類系小鼠,利用連鎖分析在6號染色體遠(yuǎn)端確定了一個與陰道口開啟相關(guān)的 QTL位于 D6Mit59至末端的區(qū)段內(nèi)(60-75cM)[8]。2008年,本實驗室利用 C3H 和 B6雌鼠性發(fā)育啟動時間差異較大的小鼠品系開展了性發(fā)育啟動相關(guān)基因的研究,在X染色體上發(fā)現(xiàn)了一段與性發(fā)育相關(guān)的 QTL,并將此 QTL定位到(DXMit68-rs29053133)2.5cM 的區(qū)段內(nèi)[9]。
利用上述實驗結(jié)果,分析 A/J,C3H和 B6小鼠在X染色體 DXMit68-rs29053133區(qū)段內(nèi)的 DNA序列,發(fā)現(xiàn)A/J與 C3H約有96%的同源性,而與 B6有80%的序列不一致。是否A/J與C3H較小的序列差異對性發(fā)育的表型差異做出了貢獻(xiàn)?為了驗證我們的推測,將A/J與 C3H小鼠進(jìn)行了6次回交,將A/J的這段序列替換到C3H的X染色體上,觀察替換雌鼠的陰道口開啟時間[10],卵巢形態(tài),生長曲線與親本C3H是否有差異,以確定兩親本之間的序列差異是否影響這一表型;另外,利用小鼠全基因組掃描芯片觀察替換小鼠的背景純化程度,并通過11個SNP位點進(jìn)一步對替換區(qū)段精確定位,最終確認(rèn)X染色體 rs13483712和 rs29038106之間(ChrX:9129480-ChrX:69503547)的區(qū)段,沒有與性發(fā)育相關(guān)的候選基因。
其研究結(jié)果將從基因水平揭示性發(fā)育啟動的個體差異機(jī)理,有助于對個體發(fā)育過程以及相關(guān)神經(jīng)內(nèi)分泌系統(tǒng)作用機(jī)理的研究,并藉此為切入點為各類性發(fā)育疾病的治療提供理論基礎(chǔ);同時,對哺乳動物性發(fā)育啟動調(diào)控機(jī)制的了解,可以幫助人們對畜牧品種進(jìn)行有效改良,達(dá)到縮短生產(chǎn)周期、提高產(chǎn)量的目的,具有明顯而重要的現(xiàn)實與理論意義。
SPF級8周齡A/J小鼠雌雄各5只,由上海西普爾-必凱實驗動物有限公司繁殖飼養(yǎng)供應(yīng)【SCXK(滬)2008-0016】,SPF級 8周齡 C3H 小鼠雌雄各 5只,由中科院上海生命科學(xué)研究院上海實驗動物中心所提供【SCXK(滬)2007-0005】。實驗在東華大學(xué)實驗動物設(shè)施內(nèi)【SYXK(滬)2008-0059】進(jìn)行。
利用A/J與C3H小鼠進(jìn)行雜交,得到F1代,繼續(xù)與C3H小鼠回交產(chǎn)生各種雜合子,通過分型,篩選出的XAXC繼續(xù)與C3H回交4代后,觀察F6代雌鼠的性發(fā)育表型(見圖1)。
圖1 染色體替換體系Fig.1 The chromosome substitution system
鑒定不同品系小鼠性發(fā)育啟動的時間需要一個快速便捷而且可靠的方法,目前公認(rèn)的研究小鼠性發(fā)育的性狀鑒定指標(biāo)之一是雌性小鼠陰道口開啟(vaginal opening,VO)時間的觀察[11]。自雌鼠個體斷奶之日開始,每天監(jiān)測其性發(fā)育的情況,觀察雌鼠陰道是否開啟,并稱量體重,記錄發(fā)育時體重及發(fā)育天數(shù)。通過雌鼠三種基因型 XAXA,XCXC,XAXC陰道口開啟觀察,進(jìn)行均值分析。
自個體出生次日起直至所有雌鼠進(jìn)入有規(guī)律的動情周期的第68天,每隔兩天對小鼠稱重,對F6代三種基因型雌鼠制作生長曲線,并對其體重進(jìn)行均值分析。
卵泡的發(fā)育是一個以形態(tài)變化為特征的生長過程。在卵泡的成熟發(fā)育過程中,卵母細(xì)胞周圍形成卵泡腔,并逐漸變大,直至包圍在卵母細(xì)胞周圍,最終卵母細(xì)胞從卵泡中排出[12,13]。在雌鼠發(fā)育過程中卵巢的形態(tài)隨之發(fā)生著相應(yīng)的變化。本實驗中,我們對A/J,C3H,XAXC20日齡與45日齡雌鼠卵巢進(jìn)行切片制作[14],觀察三種基因型在不同時間段卵巢的形態(tài)[15]。
1.4.1 基因組DNA的提取
DNA提取采用鼠尾裂解法提取方法[16]。以0.8%瓊脂糖凝膠電泳確定DNA質(zhì)量和濃度,-20℃保存。
1.4.2 PCR引物設(shè)計
所有新設(shè)計的引物均用 Primer3在線軟件(http://frodo.wi.mit.edu/primer3/)設(shè)計,并由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。用來分型的位點為 rs29058196 和 YG-atp11c-gata,前者:上游引物CCAAATTCAGGACCTCGTGT,下游引物:TCCTT-GAAAGGCATAAAATACTCA,產(chǎn)物大小:163 bp;后者:上游引物:FAM-CCTCAGAAAGGAGGTGT,下游引物:CAGTGTTCCCCAGCTTTCTC,產(chǎn)物大小:245 bp(見表1)。
表1 測序引物Tab.1 The sequencing primers
1.4.3 PCR
PCR反應(yīng)終體積(15 μL)包括3.4 μL雙蒸水,1.5 μL 10 × PCR buffer(含 34 mmol/L Mg2+),3 μL dNTPs(2.5 mmol/L),2.4 μL 上下游引物(2 μmol/L),1U TaqDNA 聚合酶(1 μL)和 3 μL DNA 模板(10~15 ng/μL)。PCR反應(yīng)程序為:93℃變性90 s,93℃ 變性 30 s,57℃ 退火 30 s,65℃ 延伸 2 min,40 個循環(huán);65℃保持10 min。反應(yīng)產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測特異性。PCR產(chǎn)物4℃保存。
1.4.4 LDR-PCR 分型
LDR-PCR 反應(yīng)終體積(10 μL)包括雙蒸水:4 μL,10 × LDR buffer:1 μL,Probe(位點特異探針、通用熒光探針、通用模板各 1 μmol/L,TaqDNA ligase(40 units/μL):0.1 μL,PCR 產(chǎn)物:4 μL。LDR 反應(yīng)程序為94℃ 30 s,60℃ 2 min,共35個循環(huán);10℃forever。LDR結(jié)束后,取1μL LDR產(chǎn)物在377測序儀上進(jìn)行變性聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測。電泳結(jié)束后,利用軟件提取泳道數(shù)據(jù)。LDR探針為:rs29058196 與 YG-atp11c-gata,前者 探針序列為:rs29058196_modify GTGTAAAGTAGAGACAAGGTTT TTTCGCAAACCTGTACTC、rs29058196_CTTTTTCAGATCAACAATCATCG、rs29058196_TTTTTTTTCAGGATCAAAACATGCA,產(chǎn)物大小為:81(A/J)/83(C3H);后者探針將其PCR產(chǎn)物直接在377測序儀上進(jìn)行電泳檢測,產(chǎn)物大小為:246(A/J)/242(C3H),設(shè)計的探針由上海英駿生物技術(shù)有限公司合成。
為了檢測小鼠回交后X染色體替換進(jìn)入的A/J區(qū)段以及替換后的基因背景是否單一,本研究對替換系的雜合子C3HC3H—XAXC進(jìn)行全基因組芯片掃描。為了更進(jìn)一步縮小替換區(qū)段的距離,本研究在基因芯片初步定位的前期工作基礎(chǔ)上選取X染色體ChrX:9129480-ChrX:132751198區(qū)段作為測序?qū)ο蟆腘CBI(National Center for Biotechnology Information)網(wǎng)站進(jìn)入小鼠基因組的數(shù)據(jù)庫,選取在此區(qū)段內(nèi)A/J和C3H品系小鼠中表達(dá)不同的SNP位點,共計選取SNP位點11個(見表2),并對其位點引物設(shè)計(見表1),PCR產(chǎn)物由生工生物工程(上海)有限公司利用測序儀器ABI-PRISM3730型全自動序列分析儀進(jìn)行測序。
表2 本實驗中選擇的SNP位點Tab.2 SNP markers selected in this study
2.1.1 陰道口開啟時間
對F6代各同類系雌性小鼠陰道口開啟年齡進(jìn)行均值分析。對發(fā)育啟動時各同類系小鼠平均體重以及各自的標(biāo)準(zhǔn)差進(jìn)行分析,并對各特異性區(qū)段小鼠個數(shù)以及籠數(shù)進(jìn)行統(tǒng)計(見表3)。
表3 各品系陰道口開啟時間Tab.3 Timing of vaginal opening(VO)in the mouse strains
如表3所示,A/J純系與C3H純系陰道口開啟時間有顯著性差異 P=0.034091(P<0.05);而純合子 C3HC3H與雜合子 C3HC3H-XAXC陰道口開啟時間沒有顯著性差異 P=0.6431(P>0.05),發(fā)育體重統(tǒng)計學(xué)分析與陰道口開啟時間一致。
2.1.2 生長曲線
對F6代各特異性區(qū)段雌性小鼠及純系A(chǔ)/J小鼠自出生次日起直至全部進(jìn)入動情周期的第68天每隔兩天記錄一次體重,并對其進(jìn)行均值分析。
圖2 各品系生長曲線Fig.2 Growth curves of the mice of different strains
如圖2所示,A/J純系相對生長速度比較緩慢,而C3H與C3H-XAXC的生長趨勢基本相同。這和2008年本實驗室報道相符[9],這一區(qū)段沒有與體重相關(guān)的調(diào)控基因。
2.1.3 卵巢切片結(jié)果
如圖 3所示(封二),20日齡時,A/J-1大部分處于次級卵母細(xì)胞時期,而 XAXC-2和 C3H-3大部分處于初級卵母細(xì)胞時期,45日齡時,A/J-4有小部分處于次級卵母細(xì)胞時期,大部分處于黃體時期,同樣 XAXC-5和 C3H-6多處于黃體時期。
A/J與XAXC和 C3H在20日齡時卵巢形態(tài)有著明顯的區(qū)別,而XAXC與C3H在20日齡時沒有顯著差異;45日齡時三者卵巢形態(tài)差別不大,發(fā)育基本成熟,產(chǎn)生黃體,并具有生殖能力。
對替換系雜合子 C3HC3H—XAXC的1到19號以及X染色體進(jìn)行全基因組掃描,共掃描1448個位點,純和位點1431個,雜合位點17個,其中一個雜合子在X染色體上。
掃描結(jié)果顯示各染色體雜合子只占全基因組掃描位點的1.17%,雜合度只有0.22,說明替換系絕大部分以C3H為背景。其中6號染色體的雜合子排除了2006年,TD Krewson定位的 QTL:D6Mit59至末端區(qū)段內(nèi)(60-75cM)的作用。在掃描的位點中,X染色體第一個點 ChrX:9129480是一個雜合子,ChrX:132751198以后發(fā)生了重組。陰影部分為C3H背景,其中黑色部分為本實驗室之前所發(fā)現(xiàn)的與性發(fā)育有關(guān)的 QTL,從而初步確定了一個范圍(Rs:13483712-Rs:3697188)為替換進(jìn)入的 A/J區(qū)段,隨后繼續(xù)在這段中選取SNP位點測序進(jìn)一步縮小區(qū)段(見表4,圖4)。
在ChrX:9129480-ChrX:1327511之間平均選取11個位點,找出這11個位點的 SNP,設(shè)計引物,對純系 A/J,C3H以及 F6代替換系 C3HC3H—XAXC做PCR,并對PCR產(chǎn)物進(jìn)行測序,結(jié)果如下。
測序結(jié)果顯示,我們找出了相鄰較近的一個雜合子ChrX69503547與一個純合子ChrX:71294513,為了進(jìn)一步縮小陰影部分的范圍,在這兩個點之間平均找到 ChrX:70009137,ChrX:70275426,ChrX:70739765三個位點繼續(xù)測序,但是測序結(jié)果顯示這三個位點A/J與C3H是無差異的,所以將區(qū)段邊界定位到 ChrX:69503547-ChrX:71294513之間,從而得出 A/J替換到 C3H中的位置:ChrX:9129480-ChrX:69503547,最終將其范圍縮小到了10~60cM之內(nèi)(見表5,圖5)。
表4 基因芯片數(shù)據(jù)Tab.4 Data obtained with gene chip assay
圖4 X染色體替換Fig.4 X chromosome replacement
表5 SNP位點的測序Tab.5 Sequencing of the SNP loci
圖5 測序邊界Fig.5 Sequencing boundary
本實驗選擇A/J和C3H近交系小鼠作為構(gòu)建特異區(qū)段替換小鼠的親本,是因為PaLmert等人在A/J與 B6 X染色體替換小鼠中,未發(fā)現(xiàn)與性發(fā)育有關(guān)的QTL;而本課題組用B6和C3H近交系小鼠構(gòu)建的F2代家系中,發(fā)現(xiàn)了一段與性發(fā)育有關(guān)的QTL,因此,在這一 QTL中,A/J和 C3H的序列差異很有可能是導(dǎo)致小鼠性發(fā)育表型差異的原因。
表型結(jié)果顯示,在不同特異性區(qū)段中,其X染色體上目標(biāo)QTL[17]為 A/J特異性區(qū)段小鼠的三種表型鑒定指標(biāo)(陰道口開啟,卵巢切片,體重)在該QTL中無顯著差異,證明 A/J和 C3H在這一 QTL中染色體的序列差異,沒有引起相關(guān)性狀的顯著差異。我們推測造成這種現(xiàn)象的原因有三種:首先是因為環(huán)境的影響[18],由于在不同的實驗中,小鼠的飼養(yǎng)環(huán)境,季節(jié),參與比較的小鼠每窩只數(shù)和母鼠各不相同,使實驗結(jié)果不太一致[19-21]。其次,小鼠的基因背景的不同,PaLmert等[22]的研究是以B6為背景,而本研究以C3H為背景,在不同的基因背景下,可能存在不同的基因直接相互作用,也導(dǎo)致了性狀的差異。第三,因為A/J和C3H在這一區(qū)段中序列很相似,而與B6差距很大,可能AJ和C3H小部分不一致的序列內(nèi)的基因是不發(fā)揮作用的。
本實驗對特異性區(qū)段替換小鼠將X染色體定位于 ChrX:9129480-ChrX:69503547區(qū)段內(nèi)。結(jié)果顯示,A/J和C3H在這個QTL區(qū)段中有序列差異的基因不是在這兩個品系小鼠中引起性發(fā)育表型差異的候選基因[23-25]。根據(jù) NCBI數(shù)據(jù)庫信息,此目標(biāo)QTL區(qū)段內(nèi)共有123個基因,其中111個基因 A/J和C3H在這一區(qū)段中沒有序列上的差異,而12個基因有序列差異,它們分別是:DynLt3、Srpx、Rpgr、Srpx、Gm14493、Mid1ip1、SLc9a7、Dock11、ELf4、Enox2、Gm15482、Gabre,這些序列的差異沒有引起相關(guān)性狀的明顯差異,所以我們排除了這些基因參與性發(fā)育啟動的調(diào)控。
注:a. A/J 20日齡;b.XAXC 20日齡;c. C3H 20日齡;d. A/J 45日齡;e. XAXC 45日齡;f. C3H 45日齡的卵巢切片。圖3 卵母細(xì)胞形態(tài)Note: a. A/J 20 days; b. XAXC 20 days; c. C3H 20 days; d. A/J 45 days; e. XAXC 45 days; f. C3H 45 days.Fig.3 Morphology of the oocytes in the ovarian tissues.
[1]羅小平,王慕逖.性早熟診斷與治療的現(xiàn)狀和進(jìn)展[J].臨床兒科雜志,2002,20(9):515-517.
[2]Han SK,Abraham IM,Herbison AE.Effect of GABA on GnRH neurons switches from depolarization to hyperpolarization at puberty in the female mouse[J].Endocrinology,2002 ,143(4):1459-66.
[3]Krewson TD,Supelak PJ,Hill AE,et al.Chromosomes 6 and 13 harbor genes that regulate pubertal timing in mouse chromosome substitution strains[J].Endocrinology,2004,145(10):4447-4451.
[4]Singer JB,Hill AE,Burrage LC,et al.Genetic dissection of complex traits with chromosome substitution strains of mice[J].Science,2004,304:445-448.
[5]Nadeau JH,Singer JB,Matin A,et al.Analysing complex genetic traits with chromosome substitution strains[J].Nat Genet,2000,24:221-225.
[6]Brockmann GA,Bevova MR.Using mouse models to dissect the genetics of obesity[J].Trends Genet,2002,18:367 -376.
[7]Wang X,Ishimori N,Korstanje R,et al.Identifying novel genes for atherosclerosis through mouse-h(huán)uman comparative genetics[J].Human Comp Genet,2005,77:1 - 15.
[8]Nathan BM,Hodges CA,Supelak PJ,et al.A quantitative trait locus on chromosome 6 regulates the onset of puberty in mice[J].Endocrinology,2006,147(11):5132 -5138.
[9]Zhu W,F(xiàn)an Z,Zhang C,et al.A dominant X-linked QTL regulating pubertal timing in mice found by whole genome scanning and modified interval-specific congenic strain analysis[J].PLoS ONE,2008,3(8):e3021.
[10]Smyth C,Wilkinson M.A critical period for glutamate receptormediated induction of precocious puberty in female rats[J].Neuroendocrinology,1994,6(3):275-284.
[11]Chehab FF,Mounzih K,Lu R,et al.Early onset of reproductive function in normal female mice treated with leptin [J].Science,1997,275(5296):88-90.
[12]盧錦,朱艷.卵巢發(fā)育及其調(diào)節(jié)因素的研究進(jìn)展[J].醫(yī)學(xué)綜述,2008,14(4):507-509.
[13]孫理蘭,谷朝勇.原始卵泡形成與早期卵泡發(fā)育的遺傳調(diào)控[J].生物技術(shù)通訊,2008,19(1):120-124
[14]楊捷頻.常規(guī)石蠟切片方法的改良[J].生物學(xué)雜志,2006,23(1):45-46.
[15]Elizabeth A,Aaron M,Hsueh JW.Initial and cyclic recruitment of ovarian follicles[J].Endocr Rev,2000,21(2):200 -214.
[16]黃培堂譯,Sambrook J,Russell DW編著.分子克隆實驗指南[M].第3版.北京科學(xué)出版社.2002
[17]Nelson JF,Karelus K,F(xiàn)elicio LS,et al.Genetic influences on the timing of puberty in mice[J].Biol Reprod,1990,42(4):649-655.
[18]Urbanski HF,Ojeda SR.Activation of luteinizing hormone-releasing hormone release advances the onset of female puberty [J].Neuroendocrinology,1987,46(3):273-276.
[19]Prevot V,Rio C,Cho GJ,et al.Normal female sexual development requires neuregulin-erbB receptor signaling in hypothalamic astrocytes[J].J Neurosci,2003,23(1):230 - 913.
[20]Yura S,Ogawa Y,Sagawa N,et al.Accelerated puberty and late-onset hypothalamic hypogonadism in female transgenic skinny mice overexpressing leptin [J].J CLin Invest,2000,105(6):749-755.
[21]Ahima RS,Dushay J,F(xiàn)Lier SN,et al.Leptin accelerates the onset of puberty in normal female mice [J].J Clin Invest,1997,99(3):391-395.
[22]Flint J,Valdar W,Shifman S,et al.Strategies for mapping and cloning quantitative trait genes in rodents[J].Nat Rev Genet,2005,6:271-286.
[23]Peters LL,RobLedo RF,Bult CJ,et al.The mouse as a model for human biology:a resource guide for complex trait analysis[J].Nat Rev Genet,2007,8:58 - 59.
[24]Waterston RH,Lindblad TK,Birney E,et al.Initial sequencing and comparative analysis of the mouse genome [J].Nature,2002,420(6915):520-562.
[25]Su AI,Wiltshire T,Batalov S,et al.A gene atlas of the mouse and human protein-encoding transcriptomes[J].PNAS,2004,101:6062-606.