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    尿素包合法富集純化杜仲籽油α-亞麻酸的工藝優(yōu)化

    2013-05-17 01:35:44孫蘭萍趙大慶
    食品工業(yè)科技 2013年11期
    關(guān)鍵詞:亞麻酸籽油杜仲

    孫蘭萍,許 暉,馬 龍,趙大慶

    (1.蚌埠學(xué)院應(yīng)用化學(xué)與環(huán)境工程系,安徽蚌埠233000;2.蚌埠學(xué)院生物與食品工程系,安徽蚌埠233000)

    杜仲是我國(guó)特有的木本植物和經(jīng)濟(jì)林樹(shù)種。杜仲籽是杜仲種植業(yè)的副產(chǎn)品,我國(guó)現(xiàn)有杜仲種植面積超過(guò)30余萬(wàn)公頃,杜仲籽資源十分豐富。杜仲籽的含油量一般在27%~33%,杜仲籽油中富含多不飽和脂肪酸,其中α-亞麻酸更是達(dá)61%~63%[1],是迄今發(fā)現(xiàn)的一種與蘇籽油成分相仿的,高α-亞麻酸含量的天然植物油。在國(guó)外α-亞麻酸含量較多的亞麻籽油和紫蘇籽油已進(jìn)入保健食品市場(chǎng)。德國(guó)、美國(guó)、日本等國(guó)也將α-亞麻酸及其衍生物作為藥物或食品添加劑,用來(lái)預(yù)防和治療高血壓、高血脂、癌癥等多種疾病。綜上所述,從杜仲籽中提取杜仲籽油,再對(duì)其中的α-亞麻酸進(jìn)行純化富集,對(duì)杜仲深加工及杜仲資源綜合開(kāi)發(fā)利用具有重大意義。α-亞麻酸的富集純化方法主要有低溫結(jié)晶法、尿素包合法、分子蒸餾法、銀離子絡(luò)合法、柱色譜法、吸附分離法、超臨界流體精餾法等[2]。其中,尿素包合法工藝簡(jiǎn)單,操作簡(jiǎn)便,包合過(guò)程在低溫和惰性氣氛下進(jìn)行,確保了α-亞麻酸的生理活性。本實(shí)驗(yàn)以尿素包合法富集純化杜仲籽油α-亞麻酸,采用二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計(jì),分析建立α-亞麻酸純度的二次多元回歸方程預(yù)測(cè)模型,以期為高含量α-亞麻酸的工業(yè)化生產(chǎn)提供理論依據(jù)。

    表1 二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計(jì)中各變量的編碼及因素水平Table 1 Codes and actual levels of independent variables in quadratic rotation-orthogonal combination design

    1 材料與方法

    1.1 材料與儀器

    杜仲籽油(α-亞麻酸含量58.86%)五臺(tái)縣五臺(tái)山沙棘制品有限公司(超臨界CO2萃取獲得);α-亞麻酸甲酯對(duì)照品 Sigma公司;NaOH、KOH、石油醚(30~60℃)、正己烷、尿素、無(wú)水乙醇、無(wú)水甲醇、95%乙醇、濃鹽酸、NaCl、無(wú)水硫酸鈉 均為分析純。

    SP-6800A氣相色譜儀 山東魯南瑞虹化工儀器有限公司;UV1102紫外可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海天美科學(xué)儀器有限公司;RE52CS旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 蘇州江東精密儀器有限公司;SHB-ⅢA循環(huán)水式多用真空泵 河南太康科教器材廠;FA2004電子天平 上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司;DZF-6051型真空干燥箱 上海三發(fā)科學(xué)儀器有限公司;DK-98-1型恒溫水浴鍋 天津市泰斯特儀器有限公司;冰箱。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 杜仲籽油混合脂肪酸的制備[3-8]稱取一定量的杜仲籽油,按1∶6(V/V)比例加入1.0mol/L的NaOH-乙醇溶液,置于500mL三口燒瓶中,在60℃的水浴中加熱回流(N2保護(hù)),磁力攪拌1h,得皂化液,加入少量石油醚萃取除去不皂化物,冷卻至室溫后置于冰箱中,使皂析出,過(guò)濾得皂化物,加入適量水使生成的少量皂完全溶解,用6.0mol/L的HC1溶液酸化混合液至 pH2~3,加入石油醚,充分?jǐn)嚢?,靜置分層,分取上層石油醚相,水層加石油醚萃取3次,合并有機(jī)相。有機(jī)相以5%NaCl水溶液水洗至中性,加入無(wú)水硫酸鈉脫水,抽濾,旋蒸,回收石油醚,得到杜仲籽油混合脂肪酸。

    1.2.2 α-亞麻酸含量的檢測(cè)方法——?dú)庀嗌V分析法[4,9-12]采用氣相色譜法測(cè)定樣品中的脂肪酸組成,以峰面積歸一化法計(jì)算α-亞麻酸的純度。

    1.2.2.1 氣相色譜條件 HP-WAX柱(30m×0.25mm,0.5μm);載氣為高純氮?dú)?,氮?dú)饬魉?5mL/min;檢測(cè)器為氫火焰離子化檢測(cè)器(FID),氫氣流速30mL/min,空氣流速 300mL/min;柱溫:起始溫度200℃,恒溫2min,以15℃/min程序升溫至260℃,保持5min;進(jìn)樣器溫度為260℃;檢測(cè)器溫度為260℃;分流比為 50∶1;進(jìn)樣量 1.0μL。

    1.2.2.2 杜仲籽油甲酯化 稱取約0.2g杜仲籽油置于25mL具塞試管中,加入2mL石油醚-苯(V∶V=1∶1)溶解,再加入0.2 mol/L KOH-甲醇溶液 5mL,于50℃水浴中震蕩反應(yīng)30min,冷卻,加入2mL飽和NaCl溶液,混勻后靜置10min分層,取上清液,加入少量無(wú)水硫酸鈉,離心,取上清液。

    1.2.2.3 混合脂肪酸甲酯化 取混合脂肪酸樣品0.2g,置于25mL具塞試管中,加入0.2mol/L KOH-甲醇溶液5mL,于50℃水浴中震蕩反應(yīng)30min,冷卻,加入石油醚5mL、飽和 NaCl溶液2mL,震蕩10min,靜置分層,取上清液,加入無(wú)水硫酸鈉少許,離心,取上清液。

    1.2.3 杜仲籽油 α- 亞麻酸尿素包合方法[4-6,8,13-15]按實(shí)驗(yàn)方案預(yù)先設(shè)定的比例,將一定量的尿素和95%乙醇加入到500mL三口燒瓶中,于60℃水浴中磁力攪拌并加熱回流,至尿素溶解完全后,加入一定量的已在60℃水浴中預(yù)熱過(guò)的杜仲籽油混合脂肪酸(N2保護(hù)),反應(yīng)混合物于60℃加熱回流并磁力攪拌至變成澄清透明溶液后,于室溫下冷卻30 min,后在預(yù)先設(shè)定的溫度下進(jìn)行包合反應(yīng)。包合一定的時(shí)間后取出迅速減壓抽濾,用95%的乙醇清洗結(jié)晶體,濾液移入分液漏斗,加入適量石油醚,用10%的HC1溶液酸化濾液至pH2~3,再加入適量水,充分萃取,分取有機(jī)相,用石油醚多次萃取水相,棄去水層,合并有機(jī)相,有機(jī)相以5%NaCl水溶液水洗至中性,加入少量無(wú)水硫酸鈉脫水,抽濾,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)回收溶劑,得到富集的不飽和脂肪酸。

    1.2.4 杜仲籽油α-亞麻酸尿素包合工藝的優(yōu)化根據(jù)前期單因素實(shí)驗(yàn)的結(jié)果,分別選取尿素與脂肪酸質(zhì)量比、95%乙醇與脂肪酸質(zhì)量比、包合溫度以及包合時(shí)間為4個(gè)實(shí)驗(yàn)因素,以α-亞麻酸純度為考察指標(biāo),采用二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計(jì),設(shè)計(jì)4因素4水平的二次正交旋轉(zhuǎn)組合實(shí)驗(yàn),以優(yōu)化確定最佳尿素包合工藝參數(shù)。確定尿素與脂肪酸質(zhì)量比(X1)、95%乙醇與脂肪酸質(zhì)量比(X2)、包合溫度(X3)以及包合時(shí)間(X4)的零水平分別為 3∶1、8∶1、0℃ 和 16h。二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計(jì)中各變量的編碼和相應(yīng)的因素水平值見(jiàn)表1。采用DPS 7.05數(shù)據(jù)處理軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,并進(jìn)行工藝參數(shù)優(yōu)化。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)方案及結(jié)果如表2所示。

    2.2 回歸模型方程的建立與顯著性檢驗(yàn)

    采用DPS 7.05數(shù)據(jù)處理軟件對(duì)表2中的實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行二次多項(xiàng)式逐步回歸分析,計(jì)算出回歸模型方程的各項(xiàng)系數(shù),從而得到α-亞麻酸純度(Y)的回歸模型方程如下:

    表2 二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)方案及結(jié)果Table 2 Quadratic rotation-orthogonal combination experimental design scheme and results

    為檢驗(yàn)回歸模型方程(1)的有效性,按F1=失擬均方/誤差均方,F(xiàn)2=回歸均方/剩余均方,進(jìn)行二次F檢驗(yàn)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果方差分析如表3所示。

    由表3可知,回歸模型方程的失擬性檢驗(yàn)F1=2.57135 <F0.05(10,11)=2.85 及 F0.01(10,11)=4.54,失擬不顯著,說(shuō)明所建立的二次回歸模型是適當(dāng)?shù)模P头匠膛c實(shí)際情況擬合較好;回歸方程顯著性檢驗(yàn)F2=25.02630>F0.01(14,21)=3.07及 F0.05(14,21)=2.20,檢驗(yàn)極顯著,說(shuō)明該模型方程與實(shí)際情況吻合很好,模型成立。對(duì)回歸系數(shù)進(jìn)行顯著性檢驗(yàn),在α=0.05顯著水平剔除不顯著項(xiàng)后,得到簡(jiǎn)化后的回歸模型方程為:

    2.3 回歸模型方程的解析

    2.3.1 單因素效應(yīng)分析 采用降維分析法,將回歸得到的簡(jiǎn)化模型方程(2)的四個(gè)因素中任意三個(gè)固定在零水平,對(duì)單因素進(jìn)行效應(yīng)分析,結(jié)果見(jiàn)表4及圖1。

    表4 單因素效應(yīng)分析Table 4 Effective analysis of single factor

    圖1 各單因素與α-亞麻酸純度(%)關(guān)系曲線Fig.1 The relationship curves of single factors to the purity of α-linolenic acid(%)

    由表4及圖1可知,尿素與脂肪酸的質(zhì)量比(X1)、95%乙醇與脂肪酸的質(zhì)量比(X2)以及包合時(shí)間(X4)3個(gè)影響因素在-2到2水平上變化時(shí),α-亞麻酸純度首先隨著因素水平值的增加而增加,至最大值后,又隨著因素水平值的進(jìn)一步增加而有所減小;而包合溫度(X3)影響因素在-2到-1水平上時(shí),隨著因素水平值的增加,α-亞麻酸純度呈小幅度緩慢上升,包合溫度變化對(duì)α-亞麻酸純度的影響不太明顯,在-1到2水平上時(shí),隨著包合溫度因素水平值的增加,α-亞麻酸純度則明顯下降。上述各單因素變化趨勢(shì)與前期單因素實(shí)驗(yàn)的結(jié)果基本吻合。

    此外,由圖1可知,在處于-2~2水平區(qū)間時(shí),各影響因素 X1、X2、X3、X4與 α-亞麻酸純度關(guān)系曲線中,包合溫度(X3)與α-亞麻酸純度的關(guān)系曲線最接近線性關(guān)系,表明包合溫度(X3)對(duì)α-亞麻酸純度的影響最為顯著,與由表3中F值導(dǎo)出的結(jié)論一致。由表3中F值大小可知,各影響因素 X1、X2、X3、X4對(duì)α-亞麻酸純度影響的主次順序依次為:包合溫度(X3)>95%乙醇與脂肪酸的質(zhì)量比(X2)>尿素與脂肪酸的質(zhì)量比(X1)>包合時(shí)間(X4)。

    表3 二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果方差分析Table 3 Variance analysis for the experimental results of quadratic rotation-orthogonal combination design

    表5 各變量Xi取值頻率分布Table 5 Probability distribution of each variable Xi

    2.3.2 各因素之間的兩兩交互作用效應(yīng)分析 將回歸得到的簡(jiǎn)化模型方程(2)的四個(gè)因素中任意兩個(gè)固定在零水平,考察四個(gè)因素中兩兩間的交互作用,可分別做出其相應(yīng)的響應(yīng)面圖。

    觀察各相應(yīng)面圖并結(jié)合表 3中 X1X2,X1X3,X1X4,X2X3,X2X4,X3X4各項(xiàng) p 值的大小可知,回歸得到的模型方程(1)中,具有顯著性(p<0.05)的交互作用項(xiàng)僅有X1X3,見(jiàn)圖2。由圖2可知,在尿素與脂肪酸的質(zhì)量比(X1)一定時(shí),隨著包合溫度(X3)的逐漸升高,α-亞麻酸純度先短暫小幅度緩慢上升后即大幅度明顯下降,表明包合溫度的改變對(duì)α-亞麻酸純度的影響顯著,隨著包合溫度的升高,α-亞麻酸純度整體上呈下降趨勢(shì)。而在一定包合溫度下,隨著尿素與脂肪酸質(zhì)量比的增加,α-亞麻酸的純度也相應(yīng)增加,但α-亞麻酸的純度增至最大值后,隨著尿素與脂肪酸質(zhì)量比的進(jìn)一步增大,α-亞麻酸的純度則反而有所下降。當(dāng)尿素與脂肪酸的質(zhì)量比(X1)位于-1.5~1.5 水平,包合溫度(X3)位于-2~-0.5 水平時(shí),α-亞麻酸的純度相對(duì)較高。

    2.4 包合工藝參數(shù)的優(yōu)化

    為了獲得最佳包合工藝參數(shù),對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行頻數(shù)分析。選取α-亞麻酸純度大于78.01%的139個(gè)方案進(jìn)行頻數(shù)分析,得到95%的置信區(qū)間如表5所示。

    圖2 尿素與脂肪酸的質(zhì)量比(X1)與包合溫度(X3)的交互作用Fig.2 The interaction of urea-fatty acid ratio(X1)and inclusion temperature(X3)

    由表5可知,尿素包合法富集純化α-亞麻酸的最佳包合工藝參數(shù)范圍分別為:尿素與脂肪酸質(zhì)量比為2.936∶1~3.143∶1,95% 乙醇與脂肪酸質(zhì)量比為9.118∶1~9.76∶1,包合溫度為-10.75~-7.81℃,包合時(shí)間為16.656~17.816h。在此包合參數(shù)范圍內(nèi),富集純化獲得的α-亞麻酸的純度均大于78.01%??紤]到生產(chǎn)實(shí)際的可操作性,可將最佳包合工藝條件定為:尿素與脂肪酸質(zhì)量比為3∶1,95%乙醇與脂肪酸質(zhì)量比為9∶1,包合溫度為-9.0℃,包合時(shí)間為17.0h。

    2.5 回歸模型方程的驗(yàn)證

    為檢驗(yàn)二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計(jì)分析得到的回歸模型方程的可靠性,選取優(yōu)化獲得的最佳包合工藝參數(shù)進(jìn)行3組平行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),并在對(duì)應(yīng)條件下用回歸方程(2)求出α-亞麻酸純度的理論預(yù)測(cè)值,與實(shí)驗(yàn)實(shí)測(cè)值比較。結(jié)果見(jiàn)表6。

    由表6可知,實(shí)驗(yàn)實(shí)測(cè)值與理論預(yù)測(cè)值相比,其平均絕對(duì)誤差僅為-0.98%。驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,利用二次正交旋轉(zhuǎn)組合設(shè)計(jì)回歸得到的模型方程是可靠的,其擬合結(jié)果具有一定的實(shí)踐指導(dǎo)意義。

    表6 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 6 Results of validation expertments

    3 結(jié)論

    3.1 杜仲籽油富含α-亞麻酸,是α-亞麻酸的理想來(lái)源。本研究首次嘗試?yán)枚胖僮延蜕a(chǎn)高α-亞麻酸含量的產(chǎn)品,為α-亞麻酸保健品的生產(chǎn)及杜仲籽的深加工及綜合利用提供了新的途徑。

    3.2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,尿素包合法富集純化杜仲籽油α-亞麻酸的最佳工藝條件是:尿素與脂肪酸質(zhì)量比為3∶1,95%乙醇與脂肪酸質(zhì)量比為9∶1,包合溫度為-9.0℃,包合時(shí)間為17.0h。最佳包合工藝條件下,α-亞麻酸的純度可達(dá) 82.63%,與理論預(yù)測(cè)值83.61%相比僅相差-0.98%。

    3.3 本純化富集工藝簡(jiǎn)單,條件溫和,且所用試劑價(jià)廉易得,均可回收再利用,較適合于工業(yè)化大規(guī)模生產(chǎn),但若要進(jìn)一步提高α-亞麻酸純度,獲得高純度的α-亞麻酸,生產(chǎn)中還需將不同純化方法進(jìn)行組合優(yōu)化。

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