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    石榴F3’H基因PCR反應體系的研究

    2013-04-29 05:32:47陶吉寒招雪晴等
    湖北農(nóng)業(yè)科學 2013年9期
    關(guān)鍵詞:石榴

    陶吉寒 招雪晴等

    摘要:從石榴(Punica granatum L.)泰山紅品種的花瓣中提取總RNA并反轉(zhuǎn)錄得到cDNA。設(shè)計簡并引物對石榴類黃酮3-羥化酶(F3H)基因進行PCR擴增,篩選合適的引物及退火溫度。結(jié)果表明,適合石榴F3H基因擴增的正反向引物分別為5′-CGTNGAYGTBGTBGTBGCSKCVTC-3′,5′-TCHCCDGCWATGGCCCAHAYRTT-3′。PCR反應程序為94 ℃預變性5 min;94 ℃變性40 s,54 ℃退火45 s,72 ℃延伸60 s,共35個循環(huán);72 ℃保溫10 min。

    關(guān)鍵詞:石榴(Punica granatum L.);F3H基因;PCR

    中圖分類號:S685.99 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2013)09-2168-03

    石榴(Punica granatum L.)為石榴科落葉灌木或小喬木,在中國已有兩千多年的栽培歷史,在長期的自然選擇和人工栽培過程中形成了豐富的遺傳多樣性[1,2]。石榴不僅是人們喜愛的傳統(tǒng)水果,也是一種優(yōu)良的園林綠化樹種。石榴花朵艷麗,其花瓣有單瓣、復瓣、重瓣、臺閣等不同花型,紅、粉紅、白、黃等不同花色[3],觀賞價值極高。目前對石榴AFLP[1,2]、ISSR[4]、RAPD[5]、SARP[6]等分子標記的研究較多,而對控制石榴花色形成相關(guān)基因的報道較少。類黃酮3-羥化酶(F3H)屬于細胞色素P450單加氧酶家族,在花色苷生物合成途徑中發(fā)揮重要作用,具有催化多種依賴NADPH或NADH的底物氧化反應的功能[7],可將4,5,7-三羥基黃烷酮(Naringenin)和二氫堪非醇(Dihydrokaempferol, DHK)分別轉(zhuǎn)化成圣草酚(Eriodictyol)和二氫櫟精(Dihydroquercetin,DHQ)后形成不同顏色的花色苷,使植物表現(xiàn)出不同的花色[8],克隆F3H基因可為研究石榴的花色形成提供分子基礎(chǔ)。本研究以石榴泰山紅品種的花瓣為材料,對F3H基因的PCR擴增條件進行優(yōu)化,從而建立高效特異的石榴F3H基因PCR擴增體系,為后續(xù)石榴花色形成機理研究奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    于2012年5~6月從山東省果樹研究所石榴種質(zhì)資源圃采集泰山紅石榴的花瓣,放入液氮速凍后放入-80 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2 方法

    2 結(jié)果與分析

    2.1 總RNA的提取結(jié)果

    2.2 引物對的篩選

    2.3 退火溫度的優(yōu)化

    3 討論

    PCR是基因分離、克隆和核酸序列分析等分子生物學研究的基礎(chǔ),影響PCR產(chǎn)物特異性和得率的因素很多[9],如退火溫度、退火和延伸時間、引物和酶的濃度、Mg2+的濃度等,所以對不同的基因來說,應根據(jù)實際情況對PCR條件進行優(yōu)化。

    目前石榴F3H基因序列還沒有報道,因而無法獲得該基因的特異引物。簡并PCR技術(shù)利用引物序列的6個簡并性堿基,擴增位點多,沒有物種特異性,與DNA的復雜程度無關(guān)[10]。本研究以GenBank中登錄的其他物種的F3H基因保守區(qū)域的核苷酸序列為參考,設(shè)計不同的簡并引物進行PCR擴增,由于引物的簡并性,使得擴增的特異性有所降低,因而必須對使用的引物進行篩選,以獲得最佳擴增引物。

    在PCR擴增過程中,退火溫度取決于引物長度、序列、堿基組成和引物的濃度[11]。較高的退火溫度會使模板復性的準確性提高,從而提高擴增的特異性,但是溫度過高會使得引物與模板親和力變小,以致不能結(jié)合,得不到擴增產(chǎn)物;而溫度過低又有可能出現(xiàn)非特異性擴增。另外,由于理論預測與實驗差別較大,所以不同的引物適宜的退火溫度不同,在PCR擴增時有必要進行最佳退火溫度的確定。

    本研究在對PCR引物進行篩選時,發(fā)現(xiàn)F1R2和F2R2這兩對引物均能擴增得到目的片段,其中F1R2引物在50 ℃的退火溫度下的PCR擴增產(chǎn)物具有特異性,但產(chǎn)量很低,不利于后續(xù)實驗的進行。而F2R2引物在50 ℃的退火溫度下有非特異性擴增產(chǎn)物,通過提高退火溫度減少非特異性擴增,取得了較好的擴增效果。實驗結(jié)果表明,適合石榴花瓣F3H基因PCR擴增的正反向引物分別為5′-CGTNGAYGTBGTBGTBGCSKCVTC-3′,5′-TCHCCD

    GCWATGGCCCAHAYRTT-3′,PCR反應程序為:94 ℃預變性5 min;94 ℃變性40 s,54 ℃退火45 s,72 ℃延伸60 s,共35個循環(huán);72 ℃保溫10 min。

    參考文獻:

    [1] 苑兆和,尹燕雷,朱麗琴,等.山東石榴品種遺傳多樣性與親緣關(guān)系的熒光AFLP分析[J]. 園藝學報,2008,35(1):107-112.

    [2] YUAN Z, YIN Y, QU J, et al. Population genetic diversity in Chinese pomegranate (Punica granatum L.) cultivars revealed by fluorescent-AFLP markers[J]. Journal of Genetics and Genomics, 2007,34(12):1061-1071.

    [3] 汪小飛,周耘峰,黃 埔,等.石榴品種數(shù)量分類研究[J]. 中國農(nóng)業(yè)科學,2010,43(5):1093-1098.

    [4] 趙麗華,李名揚,王先磊,等. 石榴種質(zhì)資源遺傳多樣性及親緣關(guān)系的ISSR分析[J]. 果樹學報,2011,28(1):66-71.

    [5] 張四普.石榴優(yōu)異資源的調(diào)查收集和RAPD鑒定方法的研究[D].鄭州:河南農(nóng)業(yè)大學,2004.

    [6] 張四普,汪良駒,曹尚銀,等.23個石榴基因型遺傳多樣性的SRAP分析[J].果樹學報,2008,25(5):655-660.

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    [11] SAIKI R K. The design and optimization of the PCR[A]. ERLICH H A. PCR Technology: Principles and Applications for DNA Amplification[M]. New York: Stockton Press,1989.

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