丁健峰,孫永海,付天宇,謝高鵬
(吉林大學(xué)生物與農(nóng)業(yè)工程學(xué)院,長(zhǎng)春130022)
臨床醫(yī)學(xué)證明,威脅人類(lèi)健康和生命的四十多種疾病都與人體缺硒有關(guān)[1-4]。硒不能在人體內(nèi)生物合成,必需從體外攝入。我國(guó)東北、西北、西南等所屬的15個(gè)省(市、區(qū))土壤含硒量低于臨界值的0.127mg/kg,其不同程度缺硒的縣(市)占全國(guó)縣(市)總數(shù)的72%[5]。目前,補(bǔ)硒劑主要有兩類(lèi),一類(lèi)是無(wú)機(jī)硒,如亞硒酸鈉、硒酸鈉;另一類(lèi)是有機(jī)硒,如有機(jī)硒制劑、富硒地區(qū)出產(chǎn)的食物。而無(wú)機(jī)硒均有劇毒,一般僅用于醫(yī)藥品而不用于食品,其使用范圍和劑量都受到限制。研究表明,有機(jī)硒化合物毒性遠(yuǎn)低于無(wú)機(jī)硒化合物,且生物利用率更高[6]。所以,只有將無(wú)機(jī)硒轉(zhuǎn)化為有機(jī)硒,才具有普遍的食用和保健價(jià)值。
食用菌富集的有機(jī)態(tài)微量元素易于人體的吸收利用;且富集的微量元素穩(wěn)定性良好,便于貯存、運(yùn)輸,可以避免其中的某些營(yíng)養(yǎng)成分損失;攝取的微量元素在限制范圍內(nèi),亦對(duì)人體無(wú)毒副作用[7]。目前人們已利用食用菌為載體培育出富硒靈芝、富硒金針菇、富硒平菇、富硒香菇和富硒猴頭菌等。
但國(guó)內(nèi)未見(jiàn)有關(guān)富硒羊肚菌菌絲深層發(fā)酵的報(bào)道。羊肚菌的子實(shí)體和菌絲體均含有豐富的營(yíng)養(yǎng)成分,其氨基酸含量為食用菌之首,共含有19種氨基酸,是一種高營(yíng)養(yǎng)低熱量的高級(jí)營(yíng)養(yǎng)滋補(bǔ)佳品[8]。
鑒于無(wú)機(jī)硒轉(zhuǎn)化為有機(jī)硒的必要性及羊肚菌的藥用保健價(jià)值,本文采用羊肚菌菌絲體作為載體進(jìn)行富硒培養(yǎng),采用響應(yīng)曲面法建立富硒羊肚菌深層發(fā)酵條件的數(shù)學(xué)模型,優(yōu)化富硒羊肚菌菌絲的深層發(fā)酵條件。
1.1.1 供試菌種
粗柄羊肚菌926號(hào):購(gòu)于四川綿陽(yáng)食用菌研究所。
1.1.2 藥品及試劑
土豆、酵母膏、蛋白胨、亞硒酸鈉、葡萄糖、硫酸鎂、磷酸氫二鉀、鹽酸、甲苯、硫酸、瓊脂粉、硝酸、高氯酸、EDTA、鄰苯二胺、硒標(biāo)準(zhǔn)溶液(濃度為100μg/ml購(gòu)于天津市風(fēng)船化學(xué)試劑科技有限公司)。
1.1.3 培養(yǎng)基
斜面培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g/L,葡萄糖20 g/L,瓊脂15 g/L,KH2PO43g/L,MgSO41.5 g/L,水1000 mL,pH值自然。將土豆切成小塊煮沸約30 min煮至熟而不爛為止,四層紗布過(guò)濾,再配以其它藥品,定容、混合均勻,分裝后,121℃滅菌30 min,擺斜面放涼備用。
發(fā)酵培養(yǎng)基:馬鈴薯10%,蔗糖3%,蛋白胨0.1%,酵母膏0.5%,KH2PO40.05%,MgSO40. 05%。將土豆切成小塊煮沸約30 min煮至熟而不爛為止,四層紗布過(guò)濾,再配以其它藥品,定容、混合均勻,裝料量為100 mL/250mL,121℃滅菌30 min,放涼備用。
電子萬(wàn)用爐,天津市泰斯特儀器有限公司生產(chǎn);GB204型分析天平,瑞士METTLER TOLEDO公司生產(chǎn);SP-250C型恒溫恒濕箱,上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠(chǎng)生產(chǎn);DSX-280A型不銹鋼手提式滅菌器,上海市申安醫(yī)療器械廠(chǎng)生產(chǎn); PHS-3D型pH計(jì),上海精密科學(xué)儀器有限公司生產(chǎn);HZQ-C空氣浴振蕩器,哈爾濱市東明醫(yī)療儀器廠(chǎng)生產(chǎn);CSF-1A型超聲波發(fā)生器,上海超聲儀器廠(chǎng)生產(chǎn);UV2300分光光度計(jì),上海天美科學(xué)儀器有限公司生產(chǎn)。
1.3.1 富硒羊肚菌菌絲生物量的測(cè)定
菌絲生物量計(jì)算公式
式中:X為菌絲生物量,g/L;M為菌絲球干燥后的質(zhì)量,g;V為發(fā)酵液的體積,L。
1.3.2 硒含量的測(cè)定
硒含量的檢測(cè)采用鄰苯二胺紫外分光光度法[9],鄰苯二胺在酸性介質(zhì)中與亞硒酸鹽反應(yīng)生成3,4-苯并-1,2,5-重氮苤硒腦,用甲苯萃取,利用紫外分光光度計(jì)在335nm處測(cè)定萃取液的吸光度。
樣品處理:精確稱(chēng)取一定量的樣品,研磨后放入磨口三角瓶中,加入濃硫酸10.0 mL,潤(rùn)濕樣品,再加入濃硝酸-高氯酸(2:1)混合酸20.0 mL,放置過(guò)夜[10]。次日水浴加熱至棕黃色的NO2氣體產(chǎn)生,溶液變?yōu)樽攸S色后,繼續(xù)加熱,到白煙除盡為止,加入10.0 mL(濃鹽酸:蒸餾水=1:9)的鹽酸,繼續(xù)加熱5分鐘,即達(dá)到消化終點(diǎn)。取10. 0mL消化液與錐形瓶中,加水30.0mL,分別加入5%EDTA 2.0 mL和1%鄰苯二胺2.0 mL,用HCI調(diào)節(jié)溶液pH至2.0,混勻后室溫避光放置60 min,加入10.0 mL甲苯,大力振蕩4min,移入分液漏斗中靜置4 min。在335 nm波長(zhǎng)下測(cè)定試液的吸光度,以空白樣做對(duì)比,測(cè)定試液的吸光度,對(duì)比標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)求出硒濃度。
硒標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)的制作:配置濃度為0.00,3.00,6.00,9.00,12.00,15.00,18.00,21.00μg/ml的硒標(biāo)準(zhǔn)溶液,測(cè)定各標(biāo)準(zhǔn)溶液的吸光度。以硒含量為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn),標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)見(jiàn)圖1。
圖1 硒含量的標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)Fig.1 Calibration curve of selenium
標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)方程為
式中:x為吸光度,A;Y為硒含量,μg/ml。
硒含量的測(cè)定與計(jì)算:將樣品消化后的待測(cè)液以適當(dāng)倍數(shù)稀釋?zhuān)瑯訔l件下測(cè)定其吸光度。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線(xiàn)得出測(cè)試液的硒濃度。
1.4.1 單因素試驗(yàn)
研究發(fā)酵時(shí)間(2、3、4、5、6 d)、培養(yǎng)溫度(22、24、26、28、30℃)、硒濃度(20、50、80、110、140μg/ml)以及搖床轉(zhuǎn)速(60、80、100、120、140 r/min)4個(gè)主要因素對(duì)富硒羊肚菌菌絲生物量和硒含量的影響情況。
1.4.2 響應(yīng)面分析法優(yōu)化發(fā)酵條件
根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,使用Design-Expert數(shù)據(jù)分析軟件設(shè)計(jì)試驗(yàn),利用響應(yīng)面分析法確定富硒羊肚菌的最佳發(fā)酵條件,做出二次回歸方程、響應(yīng)面立體圖和等高線(xiàn)圖,確定最佳的發(fā)酵條件。
2.1.1 發(fā)酵時(shí)間對(duì)富硒羊肚菌菌絲生物量的影響
羊肚菌進(jìn)行深層發(fā)酵培養(yǎng)時(shí),菌種接入一天后開(kāi)始緩慢生長(zhǎng),到第五天末開(kāi)始出現(xiàn)自溶現(xiàn)象,隨著發(fā)酵的繼續(xù)進(jìn)行,菌絲體干重略有減少,如圖2所示。
圖2 發(fā)酵時(shí)間對(duì)羊肚菌菌絲生物量的影響Fig.2 Effect of time speed on M orchella esculentam ycelia biomass
2.1.2 培養(yǎng)溫度對(duì)富硒羊肚菌菌絲生物量的影響
選擇5個(gè)培養(yǎng)溫度梯度培養(yǎng),富硒羊肚菌菌絲生物量的變化如圖3所示。由圖3可知,羊肚菌在22~30℃這一較大的溫度范圍內(nèi)都可以生長(zhǎng),26℃菌絲體生長(zhǎng)最好,但是隨著溫度的進(jìn)一步升高,得到的菌絲生物量明顯降低。
圖3 培養(yǎng)溫度對(duì)羊肚菌菌絲生物量的影響Fig.3 Effect of culture tem perature on M orchella esculentam ycelia biomass
2.1.3 硒濃度對(duì)富硒羊肚菌菌絲生物量的影響
本試驗(yàn)中,對(duì)硒的富集情況進(jìn)行了初步的研究。從圖4可以看出,硒對(duì)羊肚菌菌絲體的生長(zhǎng)影響比較大,低濃度的硒對(duì)羊肚菌的生長(zhǎng)有促進(jìn)作用,但當(dāng)硒的濃度超過(guò)80μg/m l時(shí),隨著培養(yǎng)基中硒濃度的增加,菌絲生物量是逐漸降低的。
2.1.4 搖床轉(zhuǎn)速對(duì)富硒羊肚菌菌絲生物量的影響
選擇5個(gè)轉(zhuǎn)速梯度培養(yǎng),富硒羊肚菌菌絲生物量的變化如圖5所示。從圖5中可以看出,在中等轉(zhuǎn)速100 r/min下所得到的菌絲生物量較高,且在80 r/min到120 r/min之間的轉(zhuǎn)速對(duì)羊肚菌菌絲生物量無(wú)顯著影響。因此,本試驗(yàn)選擇搖床轉(zhuǎn)速為100 r/min。
圖4 硒濃度對(duì)羊肚菌菌絲生物量的影響Fig.4 Effect of Se concentration on M orchella esculenta m ycelia biomass
圖5 搖床轉(zhuǎn)速對(duì)羊肚菌菌絲生物量的影響Fig.5 Effect of shaking speed on M orchella esculenta mycelia biomass
選取發(fā)酵時(shí)間(X1)、培養(yǎng)溫度(X2)、硒濃度(X3)作為試驗(yàn)因子,富硒羊肚菌菌絲生物量(Y1)、硒含量(Y2)為響應(yīng)值,利用響應(yīng)面分析法優(yōu)化富硒羊肚菌發(fā)酵條件。其試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素編碼如表1所示,Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果如表2所示。
表3可見(jiàn)該模型的方差分析,該模型極顯著(P<00001),一次項(xiàng)中X1、X3達(dá)到了極顯著水平(P<0.01);二次項(xiàng)中X1、X2、X3對(duì)菌絲生物量的影響都是極顯著(P<0.01);交互項(xiàng)中X1和 X3、X2和X3對(duì)菌絲生物量有顯著性(R<0.25)影響,而X1和X2交互作用不顯著。
表1 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)因素編碼Table 1 Factors and levels of Box-Behnken design
表2 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 2 Results of Box-Behnken design
表3 回歸方程各項(xiàng)的方差分析Table 3 Coefficients of themodel and ANOVA
表4 模型可信度分析Table 4 Reliability of the model
建立二次響應(yīng)面模型,以菌絲生物量為響應(yīng)值Y(g/L),經(jīng)二次回歸擬合后得到響應(yīng)函數(shù),即回歸方程為:
通過(guò)模型可信度分析表可以看出,在用公式(3)描述各個(gè)因素與響應(yīng)值之間的關(guān)系時(shí),線(xiàn)性關(guān)系顯著(R2=0.9990)。由模型的方差分析表可以得到,模型的顯著水平P<0.0001,此時(shí)回歸方差模型是極其顯著的,這種試驗(yàn)方法是可靠的。通過(guò)表4的模型可信度分析可以看出各個(gè)因素值和響應(yīng)值之間的關(guān)系可以用此模型來(lái)函數(shù)化,可以用此回歸方程來(lái)對(duì)試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析預(yù)測(cè)。
通過(guò)回歸方程來(lái)繪制分析圖,以考察所擬合響應(yīng)曲面的形狀,響應(yīng)曲面立體分析圖和相應(yīng)等高線(xiàn)圖見(jiàn)圖6。
從圖6中可以看出,溫度和時(shí)間對(duì)菌絲生物量的影響都不太顯著,兩個(gè)曲面都比較平緩。等高線(xiàn)圖表明沿時(shí)間軸線(xiàn)等高線(xiàn)密集,說(shuō)明時(shí)間對(duì)響應(yīng)值的影響比溫度顯著。等高線(xiàn)成橢圓形說(shuō)明兩者交互作用顯著。
圖7顯示,硒濃度對(duì)菌絲生物量的影響顯著,曲面較陡,隨著硒濃度高于80μg/mL后曲面相對(duì)變緩,可能已經(jīng)達(dá)到羊肚菌的富集能力極限,時(shí)間對(duì)于菌絲生物量的影響不顯著,曲面平緩,等高線(xiàn)呈現(xiàn)出橢圓形,說(shuō)明交互作用較強(qiáng),影響顯著。
從圖8中可以看出,硒濃度對(duì)菌絲生物量的影響顯著,曲面較陡,溫度對(duì)菌絲生物量的影響不太顯著,曲面相對(duì)緩和。由溫度和硒濃度的交互作用等高線(xiàn)可知,沿硒濃度軸線(xiàn)等高線(xiàn)密集,而溫度軸向等高線(xiàn)較稀疏,說(shuō)明硒濃度對(duì)響應(yīng)值峰值影響比溫度大,等高線(xiàn)呈橢圓形說(shuō)明,兩者交互作用顯著,影響顯著。
圖6 Y=f(X1,X2)響應(yīng)面立體圖和等高線(xiàn)圖ig.6 Three-dimensional response surface graphs and the contour p lots of extraction time versus ultrosonic power according to Y=f(X1,X2)
圖7 Y=f(X1,X3)響應(yīng)面立體圖和等高線(xiàn)圖Fig.7 Three-dimensional response surface graphs and the contour plots of extraction time versus ultrosonic power according to Y=f(X1,X3)
為了進(jìn)一步驗(yàn)證試驗(yàn)結(jié)果,在優(yōu)化的反應(yīng)條件下進(jìn)行重復(fù)試驗(yàn)三次,得到菌絲生物量為10. 339 g/L,得到驗(yàn)證值與實(shí)際值的相對(duì)誤差僅為0. 60%?;貧w方程所得硒產(chǎn)量的預(yù)測(cè)值與驗(yàn)證試驗(yàn)的平均值相接近,說(shuō)明回歸方程能夠較真實(shí)地反映篩選因素對(duì)富硒羊肚菌菌絲生物量的影響,應(yīng)用響應(yīng)面法可以達(dá)到優(yōu)化富硒羊肚菌深層發(fā)酵條件的目的。
圖8 Y=f(X2,X3)響應(yīng)面立體圖和等高線(xiàn)圖Fig.8 Three-dimensional response surface graphs and the contour plots of extraction time versus ultrosonic power according to Y=f(X2,X3)
本試驗(yàn)利用單因素試驗(yàn),研究了發(fā)酵時(shí)間、硒濃度、培養(yǎng)溫度、搖床轉(zhuǎn)速對(duì)富硒羊肚菌菌絲生物量的影響,利用響應(yīng)曲面法對(duì)富硒羊肚菌菌絲深層發(fā)酵的條件進(jìn)行了優(yōu)化,確定最佳發(fā)酵條件為培養(yǎng)溫度25.73℃、發(fā)酵時(shí)間為5.22 d、硒濃度為86.67μg/ml在此條件下富硒羊肚菌菌絲生物量的理論值達(dá)10.512 g/L,硒含量達(dá)到18.8μg/ m l,實(shí)際菌絲生物量的達(dá)到10.339 g/L、硒含量達(dá)到18.6μg/ml。
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