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    補腎填精法對骨折后不同時相骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞增殖影響的實驗研究

    2013-03-29 03:40:38羅毅文胡年宏
    江蘇中醫(yī)藥 2013年6期
    關(guān)鍵詞:白兔骨髓分化

    王 斌 羅毅文 胡年宏

    (廣州中醫(yī)藥大學(xué)附屬骨傷科醫(yī)院,廣東 廣州 510240)

    骨修復(fù)過程類似于胚胎期的骨形成,存在兩種骨化形式,軟骨內(nèi)成骨和膜內(nèi)成骨,均需要骨折局部聚集數(shù)量足夠的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(marrow mesenchymal stem cells,MSCs)[1]。我們以往的實驗及臨床研究發(fā)現(xiàn)中藥骨康方具有補腎壯骨、填精養(yǎng)髓、健脾益氣的作用,骨康含藥血清能促進體外分離骨髓源性骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)增殖和成骨分化[2-3],對骨質(zhì)疏松性骨折有良好的治療作用[4]。為進一步證實骨康方具有修復(fù)骨損傷的效應(yīng),本實驗觀察骨康方對大白兔骨折后不同時相BMSCs增殖能力的影響,為中醫(yī)藥促進骨折早期愈合及與時間相關(guān)性機制提供理論和實驗依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 實驗動物及分組 4周齡新西蘭白兔20只,清潔級,雌雄不限,體重0.8~1.0kg,由廣州中醫(yī)藥大學(xué)動物實驗中心提供。20只白兔按隨機數(shù)字表法分成4組,即正常對照組、骨折模型組、中藥治療組、西藥治療組,每組5只。4組標(biāo)記后分籠喂養(yǎng),均予以普通飼料及潔凈自來水飼養(yǎng),溫度維持在24℃左右。

    1.2 橈骨骨折模型制作 正常對照組不作骨折處理。骨折模型組進行右側(cè)橈骨旋轉(zhuǎn)扭轉(zhuǎn)性骨折損傷處理,具體操作方式見文獻[5]。中藥治療組作上述骨折損傷處理后灌胃中藥骨康方。西藥治療組作上述骨折損傷處理后灌胃鈣爾奇D。對動物采用針筒灌藥,正常對照組和骨折模型組灌胃等量生理鹽水。每日給藥1次,連續(xù)給藥21d。

    1.3 主要試劑 IMDM干粉、胎牛血清、0.25%胰酶、青霉素和鏈霉素(美國Gibcol公司),PBS緩沖液粉劑(武漢博士德公司),Percoll梯度分離液(美國Pharmacia公司),噻唑藍MTT(上海申能博采生物科技有限公司),二甲基亞砜(DMSO廣州威佳科技公司)。

    1.4 藥物制備及給藥量

    1.4.1 補腎填精法方藥(骨康方) 骨康方由補骨脂、制淫羊藿、肉蓯蓉、熟地黃、白芍、黃芪、菟絲子、丹參、當(dāng)歸、大棗組成。將中藥制成粗粉,首煎將中藥粗粉置8倍溫水中浸泡0.5h,沸騰后文火煎煮4h,注意均勻攪拌,取汁后經(jīng)3層紗布過濾;第2次和第3次煎煮均分別以6倍水文火煎煮2h,取汁,合并3次藥液,置水浴箱內(nèi)濃縮至每毫升含生藥量1.43g(此藥物濃度是按人日用劑量,經(jīng)人-兔體表面積比值折算成相當(dāng)于人臨床劑量,濃縮8倍而成。由廣州中醫(yī)藥大學(xué)附屬骨傷科醫(yī)院制劑室提供,批號:960211)。藥液常溫冷卻后,置4℃冰箱內(nèi)保存?zhèn)溆?。根?jù)臨床用藥劑量及新藥研究中動物用藥劑量要求,生藥按劑量9.6g/kg(根據(jù)以往實驗高劑量組增殖、誘導(dǎo)效果最佳[2-3])配制,相當(dāng)于臨床劑量的20倍,藥物以蒸餾水定容至所需濃度。

    1.4.2 西藥 鈣爾奇D(由Wyeth惠氏制藥有限公司提供,批號0501125,每片600mg),根據(jù)“人和動物體表面積折算比率表”進行計算,兔的劑量約為28mg/kg。將鈣爾奇D以蒸餾水定容至所需濃度。

    1.5 BMSCs的分離 將4組白兔分別給予3g/L苯巴比妥腹腔注射麻醉,術(shù)區(qū)剃毛、消毒,鋪洞巾,用骨髓穿刺針在T0(創(chuàng)前)、T7(創(chuàng)后第 7 天)、T14(創(chuàng)后第 14 天)、T21(創(chuàng)后第 21 天)分別無菌抽取右側(cè)橈骨骨折部位的骨髓液,緩慢注入含4mL淋巴細(xì)胞分層液試管內(nèi),2000r/min離心 25min,吸取中間單個核細(xì)胞層,用pH值為7.2的 Hank’s液洗 2次。

    1.6 BMSCs流式細(xì)胞儀檢測 取洗滌后的分離液離心后去上清液,加入1mL磷酸鹽緩沖液稀釋,計算濃度。取含1×106個細(xì)胞的液體,離心去上清加100μL磷酸鹽緩沖液重懸,再分別加入熒光抗體CD44-FITC及CD45-RPE 各 10μL,避光孵育 30min,加磷酸鹽緩沖液洗滌2次,去上清加500μL 1%多聚甲醛重懸固定,冰盒保存,送流式細(xì)胞實驗室檢測。含CD44-FITC陽性而CD45-PE陰性的細(xì)胞定為BMSCs,由此測得的該細(xì)胞數(shù)值即為BMSCs構(gòu)成比(BMSCs占總細(xì)胞數(shù)的構(gòu)成比),通過多個構(gòu)成比求其平均值。

    1.7 BMSCs的培養(yǎng) 用含體積分?jǐn)?shù)為10%小牛血清的DMEM作為培養(yǎng)液(含青霉素100U/mL、鏈霉素100g/mL、兩性霉素 B 0.25g/mL),將細(xì)胞密度調(diào)至 2×109/L,接種于培養(yǎng)瓶中,置于37℃恒溫,含體積分?jǐn)?shù)為5%CO2的飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。第3天換液1次,棄除未貼壁細(xì)胞,以后隔天換液,待融合成單層細(xì)胞后,傳代培養(yǎng)。

    1.8 形態(tài)學(xué)觀察 通過倒置相差顯微鏡連續(xù)觀察BMSCs的生長情況,觀察細(xì)胞在不同時間段的形態(tài)學(xué)變化。觀察樣本量為6孔。

    1.9 四甲基偶氮唑鹽檢測(MTT法) 取生長良好的P3代細(xì)胞消化后制成細(xì)胞懸液,計數(shù)后將BMSCs以2×104細(xì)胞/孔的密度接種于6孔培養(yǎng)板中(孔內(nèi)各置一無菌蓋玻片),每孔加入1g/L四甲基偶氮唑鹽溶液,0.5mL/孔。細(xì)胞繼續(xù)于37℃避光孵育4h,棄去培養(yǎng)液,每孔加入150μL二甲基亞砜,振蕩培養(yǎng)板直至紫色結(jié)晶完全溶解。于48h時進行MTT檢測,用酶標(biāo)儀測定490nm波長的吸光度(A)值。

    2 結(jié)果

    2.1 骨康方對兔骨折端BMSCs構(gòu)成比的影響 除T0外,與正常對照組比較,同一時相其他各組兔骨折端BMSCs構(gòu)成比顯著升高(P<0.05,P<0.01)。中藥治療組不同時相(T7、T21)BMSCs 構(gòu)成比顯著高于其他 3 組(P<0.01)。見表1。

    2.2 各組兔骨折端BMSCs形態(tài)學(xué)觀察 原代及傳代培養(yǎng):原代培養(yǎng)細(xì)胞48h首次換液,BMSCs呈短梭形貼壁生長,并逐漸呈現(xiàn)集落生長,12~14d達到融合生長,融合成片的細(xì)胞排列有一定的方向性,呈漩渦狀排列,細(xì)胞呈梭形或橢圓形等,見圖1-A。傳代細(xì)胞2~4h迅速貼壁,伸展,細(xì)胞呈均勻生長,細(xì)胞形態(tài)更加單一,5~6h鋪滿瓶底。倒置相差顯微鏡下,剛接種的骨髓中體積較大的單個核細(xì)胞呈球形,懸浮于培養(yǎng)液中。8~10h開始逐漸沉降貼壁,48h少數(shù)貼壁細(xì)胞呈成纖維細(xì)胞樣外形,以后細(xì)胞呈克隆均勻分布生長,形態(tài)均一,呈長梭形,見圖1-B。生長期細(xì)胞分裂相多見,細(xì)胞突起互相連接,增殖速度快,兩三天即可傳代,見圖1-C。

    表1 各組兔不同時相骨折端BMSCs構(gòu)成比()

    表1 各組兔不同時相骨折端BMSCs構(gòu)成比()

    注:與同時相正常對照組比較,△P<0.05,△△P<0.01;與同時相中藥治療組比較,**P<0.01。

    組別 動物數(shù)(只)T21 T0正常對照組5 T7 T14 12.684±1.58412.714±1.168** 12.616±1.233**11.328±1.041**骨折模型組 12.668±2.101 14.262±2.094△** 25.474±2.371△△ 26.894±2.355△△**5中藥治療組 5 12.622±1.793 22.572±3.876△△ 28.332±2.125△△ 36.016±2.324△△西藥治療組 5 12.290±1.378 16.693±1.357△** 26.736±2.670△△ 27.424±2.550△△**

    2.3 骨康方對兔骨折端BMSCs增殖能力的影響 中藥治療組不同時相BMSCs增殖能力均顯著高于其他3組(P<0.01)。見表2。

    表2 各組兔不同時相骨折端BMSCs增殖OD值()

    表2 各組兔不同時相骨折端BMSCs增殖OD值()

    注:與正常對照組同時相比較,△△P<0.01;與同時相中藥治療組比較,*P<0.05,**P<0.01。

    組別 動物數(shù)(只)T21 T0正常對照組5 T7 T14 0.418±0.0300.436±0.030** 0.451±0.050**0.448±0.050**骨折模型組 0.462±0.060 0.465±0.020** 0.474±0.040** 0.586±0.020**5中藥治療組 5 0.493±0.040 0.804±0.050△△ 0.962±0.040△△ 1.133±0.020△△西藥治療組 5 0.496±0.030 0.502±0.040** 0.538±0.010** 0.932±0.020*△△

    3 討論

    骨折的愈合實質(zhì)上是骨損傷后的再生過程,也是骨組織的形成過程。現(xiàn)多認(rèn)為,在骨折愈合中直接參與骨折修復(fù)的細(xì)胞主要是BMSCs,這種未分化細(xì)胞具有增殖和自我更新的能力,并且有向骨、脂肪、軟骨組織分化的潛能,因此BMSCs的增殖對骨折愈合具有促進作用[6]。BMSCs的增殖和向成骨細(xì)胞方向分化不僅有利于骨折的愈合,更有利于進行BMSCs的自體移植,無免疫原性且不牽涉到倫理問題,如果利用這一特性對其進行強化干預(yù)則有利于增進骨折的愈合速度,尤其有利于骨折后出現(xiàn)的骨缺損、骨不連及骨折制動后出現(xiàn)的骨質(zhì)疏松等難治性骨科疾病的治療。

    中醫(yī)理論認(rèn)為,腎藏精,生髓主骨,腎中精氣的盛衰能夠決定骨骼的強弱,影響骨的代謝。補腎中藥對BMSCs的體外培養(yǎng)及分化已有相當(dāng)?shù)难芯縖7],但如何提高骨折后不同時相體內(nèi)BMSCs的增殖和促進骨化尚未見報道。本課題前期實驗研究表明骨康含藥血清對BMSCs增殖和成骨分化作用大都基于體外的細(xì)胞培養(yǎng)[2-3],組織細(xì)胞的生存環(huán)境在很大程度上有異于體內(nèi),因此運用整體動物口服補腎填精中藥骨康后對BMSCs增殖的影響,更接近于臨床試驗。本實驗研究結(jié)果發(fā)現(xiàn):白兔在右側(cè)橈骨旋轉(zhuǎn)扭轉(zhuǎn)性骨折損傷后1周內(nèi)出現(xiàn)BMSCs構(gòu)成比增加,并持續(xù)至第3周;而沒有骨折損傷刺激的白兔BMSCs處于比較低水平的構(gòu)成比狀態(tài),兩者比較有顯著性差異(P<0.05或P<0.01)。因此,骨損傷刺激可誘導(dǎo)活體內(nèi)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的增殖,這與謝明等[8]研究結(jié)果一致。兔骨折端BMSCs構(gòu)成比在不同處理方法下不同處理時相變化的趨勢不同,其中中藥治療組不同時相(T7、T21)BMSCs構(gòu)成比顯著高于其他 3 組(P<0.01)。因此,運用中藥骨康干預(yù)骨折損傷白兔有利于增加BMSCs構(gòu)成比,尤其是對骨折損傷后第3周仍有較強的促進BMSCs增殖作用。

    中藥對骨折愈合具有明顯促進作用,特別對于骨延遲愈合和不愈合具有較高的治愈率[9-10]。目前研究大多集中在中藥作用于骨折局部的宏觀水平,而對其促進骨折愈合的細(xì)胞學(xué)及分子學(xué)機制研究較少。眾所周知,骨折愈合是一個復(fù)雜而有序的病理過程,涉及一系列細(xì)胞的募集、增殖及分化。因此BMSCs的增殖對骨折愈合具有促進作用。細(xì)胞增殖在時間上以48h最理想,本實驗運用MTT法檢測各組骨折后BMSCs培養(yǎng)48h時的增殖效應(yīng),發(fā)現(xiàn)骨折模型兔骨折端BMSCs增殖能力在不同處理方法下不同處理時相變化的趨勢不同,其中中藥治療組不同時相BMSCs增殖能力顯著高于其他 3組(P<0.05,P<0.01),并隨著治療時間的推移呈現(xiàn)逐漸增加的趨勢,這表明中藥骨康具有促進BMSCs增殖的能力,且發(fā)揮增殖作用有一定的時效關(guān)系。

    綜上所述,中藥骨康方有利于骨折后白兔體內(nèi)BMSCs構(gòu)成比增加,對BMSCs增殖有明顯的促進作用。由此,我們可以推測,骨康方可以通過在增殖高峰時刻刺激體內(nèi)BMSCs增殖,不斷增加BMSCs數(shù)量,從而增加軟骨細(xì)胞、成骨細(xì)胞轉(zhuǎn)化數(shù)量[11],促進骨折愈合康復(fù)的速度,縮短康復(fù)時間,其機理還有待進一步研究探討。

    [1]Sundeep Khosla,Jennifer J,Westendorf,et al.Concise Review:Insights from Normal Bone Remodeling and Stem Cell-Based Therapies for Bone Repair.Stem Cells,2010,28(12):2124

    [2]王斌,羅毅文,胡年宏.骨康方對大鼠MSCs體外向成骨細(xì)胞分化和 ALP 的影響.中國中醫(yī)骨傷科雜志,2007,15(12):5

    [3]王斌,羅毅文,胡年宏.骨康方含藥血清誘導(dǎo)大鼠骨髓基質(zhì)細(xì)胞向成骨細(xì)胞方向分化的實驗研究.中國中醫(yī)骨傷科雜志,2007,l5(11):32

    [4]莊洪.骨康對骨質(zhì)疏松性骨折愈合過程Ⅰ、Ⅱ型膠原及CTGF表達的影響.中國優(yōu)秀博碩士學(xué)位論文全文數(shù)據(jù)庫(博士),2005

    [5]Farso Nielsen F,Karring T,Gogolewski S.Biodegradable guide for bone regeneration.Polyurethane membranes tested in rabbit radius defects.Acta Orthop Scand,1992,63(1):66

    [6]Xuesong Han,Liu Liu,F(xiàn)uke Wang,et al.Reconstruction of tissue-engineered bone with bone marrow mesenchymal stem cells and partially deproteinised bone in Vitro.Cell Biology International,20 Aug 2012 as manuscript CBI,2011:1

    [7]范海蛟.補腎中藥對大鼠骨髓基質(zhì)干細(xì)胞增殖和分化的影響.廣州中醫(yī)藥大學(xué),2008

    [8]謝明,封衛(wèi)兵,劉艷萍,等.骨折后骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的增殖變化.中國臨床康復(fù),2008,10(29):56

    [9]王書湘.中醫(yī)辨證結(jié)合手術(shù)治療骨不連46例.河南中醫(yī),2011,31(8):903

    [10]康金平.中醫(yī)藥治療骨折研究進展.中醫(yī)藥臨床雜志,2012,24(5):476

    [11] 徐無忌.骨康對不同誘導(dǎo)條件下MSCs分化影響及BMP-2對成骨分化的作用.廣州中醫(yī)藥大學(xué),2008

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