氟伐他汀對高糖培養(yǎng)大鼠腎小球系膜細(xì)胞CTGFmRNA的影響及其作用機制的研究

王麗暉，吳廣禮，張麗霞，李 賽，黃旭東

氟伐他汀對高糖培養(yǎng)大鼠腎小球系膜細(xì)胞CTGFmRNA的影響及其作用機制的研究

王麗暉，吳廣禮，張麗霞，李 賽，黃旭東

目的探討高糖狀態(tài)下腎小球系膜細(xì)胞中結(jié)締組織生長因子(CTGF)mRNA的表達(dá)以及HMG-CoA還原酶抑制劑氟伐他汀對其的影響及作用機制。方法 體外培養(yǎng)大鼠腎小球系膜細(xì)胞，實驗分為4組:低糖組(LG組，5．5 mmol/L葡萄糖);低糖 +甘露醇組(LG+M組，5．5 mmol/L葡萄糖 +24．5 mmol/L甘露醇);高糖組(HG組，30 mmol/L葡萄糖);高糖+氟伐他汀組(HG+Flu組，30 mmol/L葡萄糖+10μmol/L氟伐他汀)。采用逆轉(zhuǎn)錄－聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)檢測CTGF和纖維粘連蛋白(FN)mRNA的表達(dá)，Western印跡檢測磷酸化p38絲裂原活化蛋白激酶(p-p38 MAPK)及其下游因子cAMP反應(yīng)元件結(jié)合蛋白1(p-CREB1)。結(jié)果 與LG+M組相比，HG組系膜細(xì)胞增殖明顯，p-p38 MAPK、p-CREB1表達(dá)明顯上調(diào)，CTGF和FNmRNA的表達(dá)增加。與HG組比較，HG+Flu組可抑制系膜細(xì)胞增殖，p-p38 MAPK、p-CREB1的表達(dá)明顯下調(diào)，CTGF和FNmRNA的表達(dá)降低。結(jié)論 高糖狀態(tài)下腎小球系膜細(xì)胞CTGFmRNA表達(dá)增強，p-p38 MAPK和p-CREB1表達(dá)明顯升高，氟伐他汀抑制腎小球系膜細(xì)胞CTGFmRNA和細(xì)胞外基質(zhì)的分泌可能部分是通過影響p38 MAPK及其下游核因子CREB1的激活而實現(xiàn)。

系膜細(xì)胞;HMG-CoA還原酶抑制劑;結(jié)締組織生長因子;p38絲裂原活化蛋白激酶;cAMP反應(yīng)元件結(jié)合蛋白1;氟伐他汀;大鼠，Wistar

結(jié)締組織生長因子(connective tissue growth factor，CTGF)作為轉(zhuǎn)化生長因子-β1(TGF-β1)的下游因子，是目前頗受關(guān)注的促進(jìn)細(xì)胞和組織纖維化的重要細(xì)胞因子，在腎小球硬化和腎間質(zhì)纖維化中發(fā)揮一定作用［1-4］。p38絲裂素活化蛋白激酶(p38 mitogen-activated Protein Kinase，p38 MAPK)途徑在高血糖和血管緊張素Ⅱ的作用下被激活，在糖尿病腎病的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮一定的作用，是近年來備受關(guān)注的細(xì)胞內(nèi)重要信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑［5］。以往研究表明，羥甲基戊二酰輔酶A(HMG-CoA)還原酶抑制劑洛伐他汀能夠抑制糖尿病大鼠腎組織細(xì)胞外基質(zhì)的蓄積，延緩糖尿病腎病的發(fā)展［6-7］，其非依賴降脂的抑制細(xì)胞增殖作用越來越受到人們的重視。為進(jìn)一步探討HMG-CoA還原酶抑制劑對糖尿病腎病可能的保護(hù)作用及機制，本實驗通過體外培養(yǎng)大鼠腎小球系膜細(xì)胞，觀察HMG-CoA還原酶抑制劑(Statins)氟伐他汀對高糖培養(yǎng)系膜細(xì)胞CTGF和細(xì)胞外基質(zhì)蛋白表達(dá)的影響，同時觀察p38 MAPK下游因子cAMP反應(yīng)元件結(jié)合蛋白1(cAMP response elementbingding protein，p-CREB1)的表達(dá)，以探討氟伐他汀可能的腎臟保護(hù)機制。

1 材料和方法

1.1 材料 氟伐他汀(粉劑)由北京諾華制藥有限公司饋贈。健康清潔級雄性Wistar大鼠，體重100～150 g，由河北省實驗動物中心提供，實驗動物合格證號701073。小鼠抗p-p 38 MAPK單克隆抗體，小鼠抗p-CREB1單克隆抗體，ECL增強化學(xué)發(fā)光試劑盒均購自Santa Cruz公司，RT-PCR試劑購自Promega公司產(chǎn)品，Ⅳ型膠原酶購自Sigma公司。辣根酶標(biāo)記羊抗小鼠或兔IgG由北京中山公司進(jìn)口分裝。聚偏二氟乙烯膜(PVDF)購自Milipore公司。

1.2 系膜細(xì)胞的分離培養(yǎng)和刺激實驗 Wistar大鼠乙醚麻醉后，無菌條件下取出腎臟(手術(shù)器械均經(jīng)200℃烘烤4 h消毒)，用4℃ D-Hanks液沖洗腎臟，去掉被膜，小心分離腎皮質(zhì)并將其剪成1～2 mm的3小塊。將腎皮質(zhì)碎塊用D-Hanks液洗滌2～3次，分別經(jīng)80、140和200目不銹鋼篩網(wǎng)，收集200目的腎小球，加入0．1%Ⅳ型膠原酶消化后，離心收集被消化的腎小球，加入PRMI1640完全培養(yǎng)液(含體積分?jǐn)?shù)0.2胎牛血清，2 mmol/L谷氨酰胺，100 kU/L青霉素，100mg/L鏈霉素，0.66 kU/L胰島素)，于37℃、5%CO2孵箱中培養(yǎng)，4～6 d首次換液。以后每2～3 d換液1次，約2～3周系膜細(xì)胞長滿培養(yǎng)瓶底，應(yīng)用相差倒置顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)。將第3代系膜細(xì)胞接種于24孔板，48 h后用PBS沖洗系膜細(xì)胞，乙醇固定30 min，再分別用兔抗大鼠結(jié)蛋白(desmin)、角蛋白、Ⅷ因子單克隆抗體為一抗，行SP法，DAB顯色，陽性信號呈棕黃色或褐色?？筪esmin抗體陽性，抗角蛋白、Ⅷ因子陰性表明所鑒定的細(xì)胞為系膜細(xì)胞。0．25%胰蛋白酶消化傳代，取4～10代細(xì)胞用于實驗研究。將細(xì)胞分為4組:低糖組(LG組，5．5 mmol/L葡萄糖);低糖+甘露醇組(LG+M 組，5．5 mmol/L 葡萄糖 +24．5 mmol/L甘露醇);高糖組(HG組，30 mmol/L葡萄糖);高糖+氟伐他汀組(HG+Flu組，30 mmol/L葡萄糖+10μmol/L氟伐他汀)。刺激48 h后收集細(xì)胞，分別提取蛋白、RNA及細(xì)胞上清液。

1.3 MTT法檢測系膜細(xì)胞增殖水平 取第4代系膜細(xì)胞應(yīng)用胰酶消化，加入含15%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液于離心管中，反復(fù)吹打，混勻，按每孔200μl，密度4000/孔接種于96孔板中。待系膜細(xì)胞貼壁24 h后，加無血清培養(yǎng)液200μl，同步24 h，使細(xì)胞同步于G0期。每6孔細(xì)胞為一組，按1．2的分組進(jìn)行刺激，刺激時間分別為12、24、48 h。此外，觀察不同氟伐他汀濃度(1、10、20μmol/L)對高糖狀態(tài)下系膜細(xì)胞增殖的影響，選擇刺激時間為48 h。將細(xì)胞置于 37℃、5%CO2孵箱培養(yǎng)，加入 MTT(5 g/L)，于4 h后每孔分別加入DMSO，用酶標(biāo)儀觀察，在490 nm波長處記錄A值。

1.4 逆轉(zhuǎn)錄－聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)檢測CTGF和纖維粘連蛋白(fibronectin，F(xiàn)N)mRNA的表達(dá)應(yīng)用Trizol試劑提取細(xì)胞總RNA，用紫外－可見分光光度儀測定其純度和含量。在逆轉(zhuǎn)錄酶催化下合成cDNA，以適量cDNA為模板在TaqDNA聚合酶催化下進(jìn)行PCR擴增。CTGF上下游引物:5'-GCCTCAAACTCCAAACACCATC-3'和5'-CAGCAAACACTTCCTCGTGGA-3'，擴增產(chǎn)物:252 bp。FN上下游引物:5'-CTGAACCAGCCTACGGATGACT-3'和 5'-CCGTCGTCATAACACGTTGCT-3'， 擴 增 產(chǎn) 物:305 bp。GAPDH上下游引物為:5'-TATCGGACGCCTGGTTAC-3'和 5'-CTGTGCCGTTGAACTTGC-3'，擴增產(chǎn)物為140 bp。所用引物均由上海生工生物公司合成。CTGF和FN的擴增條件為:預(yù)變性94℃、5 min，進(jìn)入循環(huán)，94℃、0 s，退火溫度分別為58℃和56．9℃、60 s，72℃、60 s，30 個循環(huán)后 72℃、8 min。將PCR產(chǎn)物在2%瓊脂糖凝膠中進(jìn)行電泳，置于凝膠圖像分析系統(tǒng)(UVP公司，美國)進(jìn)行吸光度掃描，以管家基因GAPDH作為內(nèi)參照校正，用目的基因吸光度與GAPDH吸光度的比值代表目的基因的相對表達(dá)含量。

1.5 Western印跡檢測p-p38 MAPK和p-CREB1的表達(dá) 細(xì)胞用冰冷PBS(1 mmol/L正釩酸鈉)沖洗2遍，加入細(xì)胞裂解液(20 mmol/L Tris HCl，2．5 mmol/L EDTA，體積分?jǐn)?shù)0．1甘油，質(zhì)量濃度10 g/L的SDS，體積分?jǐn)?shù)0．01的 TritonX100，質(zhì)量濃度50 g/L去氧膽酸鈉，10 mmol/L焦磷酸鈉，50 mmol/L氟化鈉，1 mmol/L正釩酸鈉，質(zhì)量濃度1 g/L苯甲基磺酰氟)，冰浴1 h，于4℃、14000 r/min 離心25 min，應(yīng)用Lowry法測定上清液蛋白濃度。取細(xì)胞裂解蛋白50μg，經(jīng)8%十二烷基硫酸鈉－聚丙烯酰胺(SDS PAGE)凝膠電泳后電轉(zhuǎn)移至PVDF膜;5%脫脂奶粉封閉PVDF膜2 h，加入小鼠抗p-p38 MAPK和抗p-CREB1單克隆抗體?？贵w經(jīng)過1∶200稀釋，4℃過夜，洗膜后加辣根過氧化物酶標(biāo)記的羊抗小鼠或兔抗體(1∶5000 稀釋)，37℃ 孵育 1．5 h，洗膜后加ECL試劑，然后將PVDF膜放入X光片暗盒、壓片、顯影、定影。用美國UVP公司LabWorks4．5分析系統(tǒng)軟件對Western條帶進(jìn)行定量分析，確定雜交條帶的吸光度值。

1.6 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 11．0統(tǒng)計軟件進(jìn)行統(tǒng)計分析，實驗數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示，組間比較采用方差分析，α=0．05為檢驗水準(zhǔn)。

2 結(jié)果

2.1 腎小球系膜細(xì)胞的鑒定 倒置相差顯微鏡下見系膜細(xì)胞呈梭形、不規(guī)則星形或樹枝狀，生長旺盛時多呈梭形。HE染色見系膜細(xì)胞胞漿向外伸出數(shù)個長短不一的突起，核清晰位于細(xì)胞中央，呈圓形或橢圓形(圖1)。染色顯示細(xì)胞胞漿結(jié)蛋白陽性(圖2)，角蛋白、Ⅷ因子陰性，從而證明這些細(xì)胞為系膜細(xì)胞而非腎小球上皮細(xì)胞或內(nèi)皮細(xì)胞。

圖1 大鼠腎小球系膜細(xì)胞(HE×200)圖2 結(jié)蛋白在大鼠腎小球系膜細(xì)胞中表達(dá)(DAB×200)

2.2 氟伐他汀對系膜細(xì)胞增殖的影響 LG組與LG+M組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P＞0.05);與LG+M組相比，高糖能夠促進(jìn)系膜細(xì)胞增殖，并隨時間延長更加明顯;10μmol/L氟伐他汀作用24 h和48 h后，能夠抑制高糖對系膜細(xì)胞的促增殖作用(表1)。1、10和20μmol/L氟伐他汀對高糖培養(yǎng)系膜細(xì)胞增殖都有抑制作用，并且隨藥物濃度的增加抑制作用更加明顯(表2)。2.3 RT-PCR檢測CTGF和FN mRNA的表達(dá) LG組與LG+M組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P＞0.05);與LG+M組相比，高糖刺激48 h可以使系膜細(xì)胞CTGF和FN mRNA升高(P＜0．05)，分別是LG組的2．31和3．42倍;與 HG 組相比，HG+Flu組 CTGF和FN mRNA的表達(dá)明顯降低(P＜0．05)，分別降低了34%和55%。見表3、圖3。

表1 不同刺激時間對4組大鼠腎臟系膜細(xì)胞增殖的影響(±s)

表1 不同刺激時間對4組大鼠腎臟系膜細(xì)胞增殖的影響(±s)

注:LG組，加入 5．5 mmol/L葡萄糖;LG+M組，加入5．5 mmol/L葡萄糖 +24．5 mmol/L 甘露醇;HG 組，加入30 mmol/L葡萄糖;HG+Flu組，加入30 mmol/L葡萄糖 +10μmol/L氟伐他汀。與 LG+M 組比較，a P＜0.05，b P＜0.01;與HG組比較，c P＜0.05

12 h 24 h 48 h LG組組別 孔數(shù) A值6 0．281 ±0．018 0．312 ±0．027 0．456 ±0．031 LG+M 組 6 0．267 ±0．019 0．337 ±0．030 0．473 ±0．021 HG 組 6 0．364 ±0．016a 0．481 ±0．057b 0．692 ±0．043b HG+Flu組 6 0．295 ±0．015c 0．354 ±0．043c 0．469 ±0．037c

表2 不同濃度氟伐他汀對4組大鼠腎臟系膜細(xì)胞增殖的影響(±s)

表2 不同濃度氟伐他汀對4組大鼠腎臟系膜細(xì)胞增殖的影響(±s)

注:HG組，加入30 mmol/L葡萄糖;HG+Flu組，加入30 mmol/L葡萄糖+氟伐他汀。與HG組比較，b P＜0．01

組別 Flu濃度(μmol/L) 孔數(shù) A值HG組6 0．350 ±0．023 HG+Flu 組 1 6 0．227 ±0．026b 10 6 0．174 ±0．018b 20 6 0．136 ±0．015－b

表3 4組大鼠腎臟系膜細(xì)胞中CTGF、FN mRNA的表達(dá)(±s)

表3 4組大鼠腎臟系膜細(xì)胞中CTGF、FN mRNA的表達(dá)(±s)

注:CTGF:結(jié)締組織生長因子;FN:纖維粘連蛋白;LG組，加入5．5 mmol/L葡萄糖;LG+M組，加入5．5 mmol/L葡萄糖+24．5 mmol/L甘露醇;HG組，加入30 mmol/L葡萄糖;HG+Flu組，加入30 mmol/L葡萄糖+10μmol/L氟伐他汀。與 LG+M 組比較，a P ＜0．05;與 HG 組比較，c P ＜0．05

組別 孔數(shù)CTGF FN LG組6 0．328 ±0．015 0．417 ±0．013 LG+M 組 6 0．321 ±0．011 0．415 ±0．015 HG 組 6 0．867 ±0．035a 0．953 ±0．025a HG+Flu 組 6 0．625 ±0．018c 0．641 ±0．024c

2.4 Western印跡檢測結(jié)果 LG組與LG+M組差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P＞0.05);與LG+M組相比，高糖組p-p38 MAPK和 p-CREB1表達(dá)上調(diào)(P＜0.01)。HG+Flu組p-p38 MAPK和p-CREB1表達(dá)下調(diào)(P＜0.01)。見圖4、表4。

圖3 4組大鼠腎臟系膜細(xì)胞結(jié)締組織生長因子和纖維粘連蛋白RT-PCR結(jié)果

圖4 4組大鼠腎臟系膜細(xì)胞中p38 MAPK、CREB1蛋白的表達(dá)

表4 4組大鼠腎臟系膜細(xì)胞中p38 MAPK，CREB1蛋白的表達(dá)(±s)

表4 4組大鼠腎臟系膜細(xì)胞中p38 MAPK，CREB1蛋白的表達(dá)(±s)

注:LG組，加入 5．5 mmol/L葡萄糖;LG+M組，加入5．5 mmol/L葡萄糖 +24．5 mmol/L 甘露醇;HG 組，加入30 mmol/L葡萄糖;HG+Flu組，加入30 mmol/L葡萄糖+10μmol/L氟伐他汀。與 LG+M組比較，a P＜0.05;與 HG組比較，c P ＜0．05

組別 孔數(shù)p-p38 MAPK p-CREB1 LG組6 0．213 ±0．015 0．239 ±0．014 LG+M 組 6 0．254 ±0．011 0．241 ±0．012 HG 組 6 0．541 ±0．032a 0．398 ±0．021a HG+Flu 組 6 0．228 ±0．008c 0．249 ±0．012c

3 討論

Statins是臨床上常用的降脂藥物，通過阻斷細(xì)胞內(nèi)甲羥戊酸代謝途徑，使細(xì)胞膽固醇和多種非甾醇異戊二烯產(chǎn)物的生成減少，從而降低膽固醇的產(chǎn)生。但是，近年來Statins非依賴降脂的腎臟保護(hù)作用得到人們的關(guān)注。主要表現(xiàn)在可以有效減輕腎臟細(xì)胞增殖肥大和細(xì)胞外基質(zhì)(extra cellular matrix，ECM)的積聚，減輕尿蛋白排泄量［8］。系膜細(xì)胞作為腎小球內(nèi)最活躍的固有細(xì)胞，能夠產(chǎn)生ECM、分泌細(xì)胞因子、吞噬和清除異物等多種功能，其功能異常與多種腎臟疾病的發(fā)生、發(fā)展有關(guān)。體外實驗結(jié)果表明，Statins可以抑制系膜細(xì)胞增殖，阻斷系膜細(xì)胞分泌ECM［9］。本實驗結(jié)果也表明氟伐他汀可以明顯抑制高糖作用48 h時FN分泌和mRNA的表達(dá)，可抑制高糖培養(yǎng)下系膜細(xì)胞分泌ECM。這與文獻(xiàn)報道一致［10-11］。本研究特意設(shè)立LG+M組，其滲透壓與HG組基本一致，進(jìn)一步除外高糖導(dǎo)致的高滲透壓對系膜細(xì)胞的影響。

CTGF是由349個氨基酸組成的相對分子質(zhì)量為34 000～38 000的富含半胱氨酸的分泌肽，被視為TGF-β1/Smad通路中的下游效應(yīng)介質(zhì)［12］。有研究表明，statins能夠減輕系膜細(xì)胞ECM的分泌，可能與其能夠減輕TGF-β1的表達(dá)有關(guān)［13］。在CTGF啟動子序列128～162位置上存在著一個重要的TGF-β1調(diào)控元件，TGF-β1通過調(diào)控CTGF啟動子內(nèi)TGF-β1反應(yīng)元件和Smad結(jié)合元件誘導(dǎo)CTGF的產(chǎn)生，在病理情況下，可誘發(fā)及增加Ⅰ型膠原等的合成，使ECM合成增加，從而導(dǎo)致纖維化［14］。本研究表明，高糖可以引起系膜細(xì)胞CTGF mRNA表達(dá)的升高，CTGFmRNA表達(dá)的增加，正是系膜細(xì)胞分泌ECM增多的原因之一，從而引起糖尿病腎小球的硬化。而氟伐他汀則能夠抑制高糖刺激下系膜細(xì)胞中促纖維化因子CTGF和FN mRNA的表達(dá)，提示氟伐他汀抑制系膜細(xì)胞ECM的分泌可能是通過抑制CTGF的表達(dá)來實現(xiàn)的。

p38 MAPK途徑是近年來倍受關(guān)注的一條細(xì)胞內(nèi)重要的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑，高糖刺激使之活化后可以激活多種核轉(zhuǎn)錄因子，影響目的基因的表達(dá)［15］。有研究認(rèn)為，無論在糖尿病腎病的早期還是發(fā)展階段，p38 MAPK可能均發(fā)揮重要作用［16］，影響TGF-β因子的合成［17］，促進(jìn)系膜細(xì)胞及腎小管細(xì)胞的凋亡等［18］。本實驗結(jié)果顯示高濃度葡萄糖能夠激活腎小球系膜細(xì)胞p38 MAPK和CREB1，使其磷酸化水平明顯增高，進(jìn)一步提示p38 MAPK信號途徑可能參與了糖尿病腎病的發(fā)病過程。但氟伐他汀可以明顯阻斷系膜細(xì)胞p38 MAPK和CREB1的磷酸化水平。提示氟伐他汀能夠阻斷高糖狀態(tài)下系膜細(xì)胞CTGFmRNA的表達(dá)，可能是通過阻斷p38 MAPK信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑，降低CTGF的表達(dá)，從而降低FN的表達(dá)來實現(xiàn)的。此外有研究表明，F(xiàn)N作為ECM的主要成分之一，同時又是CREB的作用底物，其啟動子在其序列的170 bp含有CRE，所以激活后的CREB可以結(jié)合在這個CRE上，導(dǎo)致FN mRNA表達(dá)增強［19］。氟伐他汀阻斷 p38 MAPK及其下游因子CREB1后，可以有效阻斷FN的合成。

綜上所述，氟伐他汀能夠產(chǎn)生腎臟保護(hù)作用，而這種作用可能是通過抑制p38 MAPK信號途徑的激活，進(jìn)一步抑制CTGF過度表達(dá)，減少細(xì)胞外基質(zhì)蛋白的生成，調(diào)節(jié)細(xì)胞的增殖狀態(tài)，從而產(chǎn)生明顯的腎臟保護(hù)作用。

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Effect and Functional Mechanisms of Fluvastatin on the Expressions of Connective Tissue Growth Factor m RNA in G lomerular Mesangial Cells Cultivated with High Concentration of Glucose in Rats

WANG Li-hui，WU Guang-li，ZHANG Li-xia，LISai，HUANG Xu-dong(Department of Nephrology，Bethune International Peace Hospital of PLA，Shijiazhuang 050082，China)

ObjectiveTo investigate the effectand functionalmechanisms of Fluvastatin on the expression of connective tissue growth factor(CTGF)mRNA and the activation of p38mitogen-activated protein Kinase(p38 MAPK)and cAMP response element－bingding protein1(CREB1)in glomerularmesangial cells cultivated with high concentration of glucose in rats．MethodsGlomerularmesangial cells in Wistar rats were cultured in vitro and divided into four groups:low glucose group(group LG，5．5mmol/L glucose)，low glucosewithmannitol group(group LG+M，5．5mmol/L glucose+24．5mmol/Lmannitol)，high glucose group(group HG，30mmol/L glucose)and high glucose with Fluvastatin group(group HG+Flu，30mmol/L glucose+10μmol/LFluvastatin)．Expressions of mRNA in CTGFand fibronectin(FN)were detected by reverse transcription and polymerase chain reaction(RT-PCR)．Expressions of phosphorylated p38(p-p38)mitogen activated protein kinase(MAPK)and p-CREB1 were detected by Western blotting．ResultsThe intercapillary cellmultiplication and expressions of p-p38MAPK，p-CREB1 andmRNA of CTGF and FN were significantly increased in group HG，compared with those in group LG+M．The intercapillary cellmultiplication could be inhibited，and expressions of p-p38 MAPK ，p-CREB1 and mRNA of CTGFand FN were significantly lower in group HG+Flu，compared with those in group HG．ConclusionThe expressions of CTGFmRNA，p-p38MAPK and p-CREB1may be significantly increased in glomerularmesangial cellsunder high concentration of glucose，and Fluvastatin can inhibit production of CTGF and extracellularmatrix(ECM)proteins partly by regulating the phosphorylation of p38MAPK and CREB1．

Mesangial cell;Hydroxymethylglutaryl-coA reductase inhibitors;Connective tissue growth factor;p38 mitogen activated protein kinase;cAMP response element－ bingding protein1;Fluvatatin;Rat，wistar

R-332;R963

A

2095-140X(2013)12-0057-05

10．3969/j．issn．2095-140X．2013．12．015

河北省科技攻關(guān)計劃課題資助項目(072761188)

050082石家莊，解放軍白求恩國際和平醫(yī)院腎臟病科

2013-08-19 修回時間:2013-09-24)