黃建文 綜 述 徐月敏 校 審
生長因子在泌尿系統(tǒng)組織工程中的可控釋放策略研究進展
黃建文 綜 述 徐月敏 校 審
外源性生長因子在泌尿系統(tǒng)組織工程研究中具有重要作用,但由于生長因子半衰期短,越來越多的研究利用各種控制釋放載體,使生長因子在體內以恒定的速率緩慢而持續(xù)地釋放,以保證其在支架材料中的含量,從而促進組織再生。本文就生長因子在泌尿系統(tǒng)組織工程中的控制釋放策略的最新進展進行綜述。
生長因子組織工程泌尿系統(tǒng)可控釋放
目前,泌尿系統(tǒng)的修復重建仍然是臨床的難題之一,多采用自體組織移植,雖然效果尚可[1-2],但是存在自身供區(qū)不足等問題。組織工程研究的進展,顯示了其在泌尿系統(tǒng)修復重建中的良好的應用前景。
以有的研究表明,將種子細胞復合支架材料或單純支架材料,用于部分膀胱或短段尿道的重建均能獲得良好效果,但在大面積膀胱和長段尿道重建中存在支架萎縮、纖維化等現(xiàn)象[3-4]。局部血供不佳是導致該現(xiàn)象的重要原因。構建部位的供血不足,最終將導致構建組織的壞死、纖維化,影響組織和器官的修復重建。
眾多的研究已明確了多種生長因子與血管形成相關,主要有血管內皮生長因子(VEGF)、堿性成纖維生長因子(b-FGF)、轉化生長因子(TGF)、血小板源性生長因子(PDGF)等。這些生長因子通過直接或間接作用,可促進泌尿系統(tǒng)重建時的血管形成,還可促進平滑肌的增殖和神經的再生[5-6]。研究表明,雖然天然脫細胞生物支架材料中存在多種生長因子(如VEGF、b-FGF等),但在支架脫細胞處理過程會出現(xiàn)生長因子活性降低和數(shù)量減少,不能保證天然脫細胞支架中含有足夠數(shù)量的活性生長因子[7-8]。因此,將外源性生長因子通過各種方法植入支架材料中,促進泌尿系組織的修復重建成為研究的重要方向。
外源性生長因子由于半衰期短、在體內擴散速度過快,難以在支架材料中持續(xù)保存,同時,擴散的生長因子會導致嚴重的副作用[9-10]。因此,越來越多的研究利用各種控制釋放載體,使生長因子在體內以一個恒定的速率緩慢、持續(xù)釋放,以保證其在支架材料中的含量,從而增加組織的再生。
凍干是生物材料處理過程中一種較常用的方法,能使生物材料更易保存、消毒和轉移[11]。凍干的生物材料在應用中應經過再水化處理,從而使得生長因子能更好地結合于生物材料。因為凍干狀態(tài)的生物材料更容易吸收水溶液,但再水化后其所吸收的水溶液能抑制其它水溶液的吸收和滲透[12]。由于溶液狀的生長因子往往不能獲得理想的生物活性,因此,在生長因子的治療應用中需要一種有效的裝載系統(tǒng),其中天然的細胞外基質(ECM)就是一種比較理想的裝載體[13-14]。Kanematsu等[15]通過膀胱脫細胞基質(BAMG)與堿性成纖維細胞生長因子(bFGF)再水化作用,將bFGF裝載于凍干的BAMG中,在體內、外觀察生長因子在支架中的釋放情況。結果顯示在復合支架植入老鼠皮下的4周內,bFGF緩慢釋放,而直接注射至皮下的bFGF在2 d后即沒有了bFGF的釋放;同時發(fā)現(xiàn),與凍干處理前的BAMG相比,凍干后的BAMG釋放的bFGF更少。這表明相關生長因子最好與凍存后再次水化的支架材料進行復合,可以盡可能減少支架結構的破壞并能保護所復合的生長因子的活性[12]。
Kanematsu等[12]應用再水化作用對復合生長因子HGF、VEGF、PDGF-BB、IGF-1和HB-EGF-BAMG的支架進行研究。結果顯示,所有生長因子均勻地分布在脫細胞基質中,從而防止了局部過高的生長因子濃度所導致的副作用;同時各種生長因子能伴隨著生物材料的逐漸降解而持續(xù)地釋放。所以,凍干的脫細胞基質能作為一種有效的、能提高生長因子活性的可控釋放載體,能促進血管的再生。
膠原具有抗原性小、生物降解性和相容性良好等優(yōu)點,在組織修復中得到廣泛的應用[16]。為了提高膠原支架在組織修復中的作用,往往將外源性生長因子結合至膠原支架中[17]。但是,生長因子吸附至膠原支架中的方法無法滿足組織修復的需要,因為生長因子快速擴散可導致活性降低或喪失[18]。所以,增加生長因子與支架的吸附能力,從而保持足夠的濃度顯得尤為重要。研究發(fā)現(xiàn),7個氨基酸系列多肽(即膠原結合域)通過結合天然生長因子的N末端,能增加生長因子與膠原支架的黏附能力,從而防止生長因子的快速擴散,并維持合適的濃度。以往的研究表明,表皮生長因子、轉化生長因子和堿性成纖維細胞生長因子通過來源于vWF的膠原肽修飾后,其組織修復效果優(yōu)于天然的生長因子。但是這些研究僅強調了支架中生長因子的可控釋放,缺乏組織再生的相關研究[19-23]。
Lin等[24]將來源于膠原酶的CBD(TKKTLRT)與血小板源性生長因子(PDGF-BB)的N末端結合,組成一種膠原靶向系統(tǒng),能特異性地結合至膠原支架中,并能保持生長因子的活性;在體內,與天然的PDGF支架相比,CBD-PDGF支架具有更佳的促細胞化和血管再生的能力。
來源于vWF或膠原酶的CBD主要用于研究藥物的可控釋放,但經CBD修飾的生長因子在支架中的發(fā)揮效果還不明了。Zhao等[25]將兩種來源不同的CBD引入至bFGF中。一種來源于vWF的CBD與bFGF結合(V-bFGF),另一種是來源于膠原酶的CBD與bFGF結合(C-bFGF),研究不同來源的CBD-bFGF在組織修復中的作用。結果顯示,兩種組合體都保留了生長因子的活性和結合膠原基質的特性。兩種組合體在結合膠原基質、促血管化和細胞化的作用方面均優(yōu)于天然的bFGF,但C-bFGF的作用優(yōu)于V-bFGF。表明CBD結合bFGF是一種能促進傷口愈合和組織再生的靶向治療系統(tǒng);C-bFGF賦予bFGF更高的膠原親和力,促進細胞化和血管化的作用優(yōu)于v-bFGF。
研究認為,CBD-生長因子/膠原系統(tǒng)在膀胱再生中可能具有促進組織再生的作用。Chen等[26]應用CBD-bFGF/膠原支架修復部分切除后的小鼠膀胱,并觀察修復術后膀胱組織和功能的修復情況。結果顯示,術后90 d,在支架與周圍膀胱組織的結合、支架的降解和細胞化、平滑肌再生和血管化、膀胱的順應性等方面,CBD-FGF/膠原支架組優(yōu)于FGF/膠原支架和PBS/膠原支架組。表明CBD-FGF/膠原支架能更好地促進膀胱的再生。膀胱的再生涉及多種生長因子,單一的生長因子不足以滿足膀胱再生的需要[27]。所以促進膀胱再生的最佳生長因子、最佳劑量和最佳的生長因子載體系統(tǒng)需要更進一步的研究。
由于外源性生長因子具有對熱和化學處理敏感、半衰期短、難以控制其在支架中的分布等不足[28]。將外源性的生長因子基因導入目的細胞并有效表達,已引起廣泛關注。
基因治療需要合適的載體,目前研究較多的是逆轉錄病毒載體或腺病毒載體[28-29]。通過載體介導能表達生長因子蛋白的基因,并轉染至種子細胞或支架中,使基因在局部持續(xù)、穩(wěn)定、緩慢、高效表達生長因子蛋白,并且有利于生長因子濃度的精確維持,更好地調控組織的修復和再生。
為了研究VEGF基因修飾后對血管再生的作用,Lwaguro等[30]應用VEGF基因修飾的血管內皮祖細胞(EPC)改善肢體缺血動物模型中的血管生成。結果顯示,VEGF基因修飾過的EPC能明顯改善缺血組織的血液供應,且達到同樣效果所需要的轉基因EPC數(shù)量較未轉基因的少30倍,提示聯(lián)合VEGF基因的EPC治療是一種更高效的促進血管再生的治療模式。Chen等[31]將復合VEGF基因修飾EPC的膀胱脫細胞基質(BAMG)用于膀胱組織的構建,采用含VEGF基因的腺病毒載體轉染自體外周血EPC,種植于同種異體豬BAMG,體外培養(yǎng)3 d后回植,結果顯示BAMG對EPC無細胞毒性;組織工程膀胱的功能和組織學檢查表明膀胱組織隨時間延長逐漸再生;與對照組相比,VEGF基因-EPC/BAMG組的血管密度增加明顯。
Guan等[29]借鑒VEGF在缺血性心肌病治療中所取得的經驗,應用VEGF165基因插入逆轉錄病毒載體pMSCV-GFP中,構建pMSCV-VEGF165-GFP載體,逆轉錄病毒載體轉染膀胱尿路上皮細胞(UC)后種植于同種異體兔動脈脫細胞基質中,研究基因治療在組織工程尿道中的應用。結果提示,基因修飾過的UC能同時表達VEGF和GFP蛋白,且細胞分泌VEGF呈時間依賴性;與僅以GFP修飾的細胞相比,VEGF修飾的UC增加血管形成更明顯,同時形成的尿道上皮層更光滑、排列更規(guī)則,與正常尿道相似。
病毒載體具有潛在的致癌毒性和免疫原性,所以相關研究開始聚焦于非病毒載體。研究發(fā)現(xiàn),非病毒轉基因載體能夠濃縮質粒,被細胞內吞并進入細胞核,從而使質粒表達基因產物[32]。林茂虎等[33-34]將VEGFl65 cDNA克隆于真核表達載體pcDNA3.1(-),構建真核表達質粒載體pcDNA3.1(-)/VEGFl65,并轉染入分離純化的鼠膀胱平滑肌細胞內。結果顯示,pcDNA3.1(-)/VEGF165轉染入鼠膀胱平滑肌細胞后,VEGF的表達增高,轉染后細胞上清液具有促使內皮細胞增殖的生物學活性。將平滑肌細胞植入小鼠體內,并以膀胱缺損自然愈合和單純植入小腸黏膜下組織(SIS)為對照進行觀察,發(fā)現(xiàn)術后2周轉染VEGF組中新生毛細血管數(shù)量和VEGF受體的陽性表達細胞數(shù)高于單純SIS植入組。
隨著納米和微米技術在醫(yī)學應用中的發(fā)展,納米和微米載體為外源性生長因子的可控釋放和活性保護提供了新的思路。該技術作為藥物的一種新型緩釋系統(tǒng),常采用微球或微囊的形式,具有明顯的優(yōu)勢:①可以實現(xiàn)生長因子的長期釋放,可控性強[35-36];②可以實現(xiàn)多種生長因子的同時或順序釋放[37-38];③可使外源性生長因子具有長期生物活性[39]。同時,納米和微米載體無免疫源性和毒性,具備較高的轉移效率。所以,納米和微米載體技術在骨骼、軟骨、皮膚、心瓣膜、血管和神經等組織的修復重建研究中應用廣泛。
Geng等[39]為了實現(xiàn)VEGF的長期持續(xù)釋放,制備了一種新型的VEGF-納米微球-熱敏感性水凝膠系統(tǒng),并將該系統(tǒng)植入BAMG內。通過體內、體外研究,研究者發(fā)現(xiàn)納米微球包裹的VEGF的生物活性得以保持,持續(xù)釋放時間超過60 d,未出現(xiàn)急性組織反應、炎癥和毒性反應。該新型生長因子釋放系統(tǒng)可能為泌尿系修復重建提供了一種前景良好的手段。
有研究報道,生物活性因子通過來源于α2-纖溶酶抑制劑的肽段能共價結合至纖維蛋白基質中[40]。因此,Lorentz等[41]將α2-纖溶酶抑制劑的8個氨基酸系列(α2PⅡ-8)結合胰島素樣生長因子-1(IGF-1)的N末端,形成變異體α2PⅡ-8-IGF-1,在凝血酶/XⅢa調控聚合反應時變異體共價結合在纖維蛋白基質中,評估α2PⅡ-8修飾的IGF-1在促進膀胱平滑肌再生中的作用。結果顯示,與天然IGF組相比,變異體α2PⅡ-8-IGF-1組更能促進膀胱平滑肌細胞的增殖,表明α2PⅡ-8-IGF/纖維蛋白基質能作為一種IGF的儲存體,延長IGF在基質內的儲存期,從而提高細胞增殖反應,為促進組織再生提供另一種有效選擇。
硫酸化氨基聚糖(GAG)通過與外源性生長因子的結合,可以作為生長因子在生物支架中的儲存體,增強生長因子在膀胱組織工程中的應用[42-43]。因此,研究GAG與外源性生長因子一起加入生物支架內,以促進組織的再生成為當前的研究熱點。
Loai等[44]應用透明質酸(HA)與VEGF結合至BAMG中,評估HA-VEGF-BAMG在膀胱組織工程中的作用。在促進膀胱組織再生和血管形成方面,HA-VEGF-BAMG組優(yōu)于BAMG組和HA-BAMG組、HA-BAMG組優(yōu)于BAMG組。HA作為GAG家族中的一員,不僅能降低支架的孔隙率和炎癥反應,而且具有高黏附性。所以,HA能作為生長因子的載體,有利于促進生長因子在組織再生中的作用。
綜上所述,外源性生長因子通過多種方式保持其持續(xù)、緩慢地釋放,有效地促進泌尿系組織、器官的再生和血管形成。但目前生長因子可控釋放的研究主要集中在短段尿道或部分膀胱修復重建中,尚不能保證這些可控釋放方式能滿足長段尿道或大面積膀胱缺損的組織再生需要。所以,保證生長因子釋放與組織修復的時間一致性尤為重要。同時,目前研究者主要研究單一生長因子在泌尿系組織修復重建中的作用,而正常組織再生往往需要在多種因子的相互作用下完成。所以,具有可以控制多種因子同時或順序釋放的可控性強的納米和微米載體技術有望成為極具前途的組織工程大面積缺損重建的重要技術。
促進外源性生長因子持續(xù)、緩慢、高表達的基因治療手段在泌尿系組織工程修復重建中具有重要的作用,但由于基因治療本身存在一些問題,如可控性差、致腫瘤性等。所以,基因治療需要進一步改進。如微囊化基因治療技術就是一種新的促進移植組織血管化和組織修復重建的手段[45],但這方面的研究還在探索中,尚需更進一步的研究。
[1]Zhong S,Zhu Z,Wang X,et al.Modified U-shaped ileal neobladder after radical cystectomy:Assessment of functional outcomes and complications in Chinese patients[J].Urol Oncol, 2012,[Epub ahead of print]
[2]Xu YM,Qiao Y,Sa YL,et al.Substitution urethroplasty of complex and long-segment urethral strictures:a rationale for procedure selection[J].Eur Urol,2007,51(4):1093-1098.
[3]El-Kassaby A,AbouShwareb T,Atala A.Randomized comparative studybetween buccal mucosal and acellular bladder matrix grafts in complex anterior urethral strictures[J].J Urol,2008,179(4): 1432-1436.
[4]Kanematsu A,Yamamoto S,Ogawa O.Changing concepts of bladder regeneration[J].Int J Urol,2007,14(8):673-678.
[5]Youssif M,Shiina H,Urakami S,et al.Effect of vascular endothelial growth factor on regeneration of bladder acellular matrix graft:histologic andfunctional evaluation[J].Urology, 2005,66(1):201-207.
[6]Kikuno N,Kawamoto K,Hirata H,et al.Nerve growth factor combined withvascularendothelialgrowthfactorenhances regeneration of bladder acellularmatrix graft in spinal cord injury-induced neurogenic rat bladder[J].BJU Int,2009,103(10): 1424-1428.
[7]Crapo PM,Gilbert TW,Badylak SF.An overview of tissue and whole organ decellularization processes[J].Biomaterials,2011,32 (12):3233-3243.
[8]Gilbert TW,Sellaro TL,Badylak SF.Decellularization of tissues and organs[J].Biomaterials,2006,27(19):3675-3683.
[9]Formiga FR,Pelacho B,Garbayo E,et al.Sustained release of VEGF through PLGA microparticles improves vasculogenesis and tissue remodeling in an acute myocardial ischemia-reperfusion model[J].J Control Release,2010,147(1):30-37.
[10]Nagase T,Hisatomi T,Koshima I,et al.Heterotopic ossification in the sacral pressure ulcer treated with basic fibroblast growth factor:coincidence or side effect[J]?J Plast Reconstr Aesthet Surg,2007,60(3):327-329.
[11]Skrabanja AT,de Meere AL,de Ruiter RA,et al.Lyophilization of biotechnology products[J].PDA J Pharm Sci Technol,1994,48 (6):311-317.
[12]Kanematsu A,Yamamoto S,Ozeki M,et al.Collagenous matricesas release carriers of exogenous growth factors[J].Biomaterials, 2004,25(18):4513-4520.
[13]Somers P,de Somer F,Cornelissen M,et al.Bioactive porcine matrices in heart valve tissue engineering[J].J Heart Valve Dis, 2012,21(4):535-543.
[14]Seif-Naraghi SB,Horn D,Schup-Magoffin PJ,et al.Injectable extracellular matrix derived hydrogel provides a platform for enhanced retention and delivery of a heparin-binding growth factor[J].Acta Biomater,2012,8(10):3695-3703.
[15]Kanematsu A,Yamamoto S,Ozeki M,et al.Bladder regeneration by bladder acellular matrix combined with sustained release of exogenous growth factor[J].J Urol,2003,170(4 Pt 2):1633-1638.
[16]Lee CH,Singla A,Lee Y.Biomedical applications of collagen[J]. Int J Pharm 2001,221(1-2):1-22.
[17]Chen RR,Mooney DJ.Polymeric growth factor delivery strategies for tissue engineering[J].Pharm Res,2003,20(8):1103-1112.
[18]Chen W,Shi C,Yi S,et al.Bladder regeneration by collagen scaffolds with collagen binding human basic fibroblast growth factor[J].J Urol,2010,183(6):2432-2439.
[19]Hall FL,Kaiser A,Liu L,et al.Design,expression,and renaturation of a lesion-targeted recombinantepidermal growth factor-von Willebrand factor fusion protein:efficacy in an animal model of experimental colitis[J].Int J Mol Med,2000,6(6):635-643.
[20]Andrades JA,Han B,Becerra J,et al.A recombinant human TGF-beta1fusionproteinwithcollagen-bindingdomain promotes migration,growth,and differentiation of bone marrow mesenchymal cells[J].Exp Cell Res,1999,250(2):485-498.
[21]Nishi N,Matsushita O,Yuube K,et al.Collagen-binding growth factors:Production and characterization of functional fusion proteins having a collagen-binding domain[J].Proc Natl Acad Sci USA,1998,95(12):7018-7023.
[22]Ishikawa T,Terai H,Yamamoto T,et al.Delivery of a growth factor fusion protein having collagen-binding activity to wound tissues[J].Artif Organs,2003,27(2):147-154.
[23]Andrades JA,Wu LT,Hall FL,et al.Engineering,expression, and renaturation of a collagen-targeted human bFGF fusion protein[J].Growth Factors,2001,18(4):261-275.
[24]Lin H,Chen B,Sun W,et al.The effect of collagen-targeting platelet-derived growth factor on cellularization andvascularization of collagen scaffolds[J].Biomaterials,2006,27(33):5708-5714.
[25]Zhao W,Chen B,Li X,et al.Vascularization and cellularization of collagen scaffolds incorporated with two different collagentargeting human basic fibroblast growth factors[J].J Biomed Mater Res A,2007,82(3):630-636.
[26]Chen W,Shi C,Yi S,et al.Bladder regeneration by collagen scaffolds with collagen binding human basic fibroblast growth factor[J].J Urol,2010,183(6):2432-2439.
[27]Frimberger D,Lin HK,Kropp BP.The use of tissue engineering and stem cells in bladder regeneration[J].Regen Med,2006,1(4): 425-435.
[28]Jabbarzadeh E,Starnes T,Khan YM,et al.Induction of angiogenesis in tissue-engineered scaffolds designed for bone repair:a combinedgene therapy-cell transplantation approach[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105(32):11099-11104.
[29]Guan Y,Ou L,Hu G,et al.Tissne engineering of urethra using human vascular endothelial growth factor gene-modified bladder urothelial cells[J].Artif Organs,2008,32(2):91-99.
[30]Lwaguro H,Yamaguchi J,KaIka C,et al.Endothelial progenitor cell vascular endothelial growth factor gene transfer for vascular regeneration[J].CircuIation,2002,105(6):732-738.
[31]Chen BS,Xie H,Zhang SL,et al.Tissue engineering of bladder using vascular endothelial growth factor gene-modified endothelial progenitor cells[J].Int J Artif Organs,2011,34(12):1137-1146.
[32]崔新愛,王玲,孔德領,等.組織工程中血管內皮生長因子的控制釋[J].中國生物醫(yī)學工程學報,2011,30(5):768-773.
[33]林茂虎,趙珊,苗芮,等.VEGFl65真核表達載體的構建及其在鼠膀胱平滑肌細胞的表達[J].南方醫(yī)科大學學報,2007,27(5):654-659.
[34]林茂虎.組織工程化膀胱體內血管化的實驗研究[D].西安:第四軍醫(yī)大學,2007.
[35]Daugherty AL,Rangell LK,Eckert R,et al.Sustained release formulations of rhVEGF165 produce a durable response in a murine model of peripheral angiogenesis[J].Eur J Pharm Biopharm, 2011,78(2):289-297.
[36]Golub JS,Kim YT,Duvall CL,et al.Sustained VEGF delivery via PLGA nanoparticles promotes vascular growth[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2010,298(6):H1959-H1965.
[37]Kempen DH,Lu L,Heijink A,et al.Effect of local sequential VEGF and BMP-2 delivery on ectopic and orthotopic bone regeneration[J].Biomaterials,2009,30(14):2816-2825.
[38]Basmanav FB,Kose GT,Hasirci V,et al.Sequential growth factor delivery from complexed microspheres for bone tissue engineering[J].Biomaterials,2008,29(31):4195-4204.
[39]Geng H,Song H,Qi J,et al.Sustained release of VEGF from PLGA nanoparticles embedded thermo-sensitive hydrogel in fullthicknessporcine bladder acellular matrix[J].Nanoscale Res Lett, 2011,6(1):312.
[40]Schense JC,Hubbell JA.Cross-linking exogenous bifunctional peptides into fibrin gels with factor XIIIa[J].Bioconjug Chem, 1999,10(1):75-81.
[41]Lorentz KM,Yang L,Frey P,et al.Engineered insulin-like growth factor-1 for improved smooth muscle regeneration[J]. Biomaterials,2012,33(2):494-503.
[42]Nomi M,Atala A,Coppi PD,et al.Principals of neovascularization for tissue engineering[J].Mol Aspects Med,2002,23(6):463-483.
[43]Cartwright L,Farhat WA,Sherman C,et al.Dynamic contrastenhanced MRI to quantify VEGF-enhanced tissue-engineered bladder graft neovascularization:Pilot study[J].J Biomed Mater Res A,2006,77(2):390-395.
[44]Loai Y,Yeger H,Coz C,et al.Bladder tissue engineering:tissue regeneration and neovascularization of HA-VEGF-incorporated bladder acellular constructs in mouse and porcine animal models [J].J Biomed Mater Res A,2010,94(4):1205-1215.
[45]韓焱福,劉軍,宋建星.微囊化基因工程細胞移植的研究進展[J].上海生物醫(yī)學工程,2007,28(3):161-164.
The Strategy of Controlled Release for Growth Factors in Urinary System Tissue Engineering
HUANG Jianwen,XU
Yueming.Department of Urology,Shanghai Sixth People's Hospital,Shanghai Jiaotong University Shool of Medicine, Shanghai 200233,China.Corresponding author:XU Yuemin(E-mail:xuyuemin@263.net).
【Summary】The exogenous growth factors play an important role in urinary system tissue engineering.However,because of the short half-life of growth factors,several release vehicles were studied to make growth factors release slowly and to keep suitable content in scaffold and improve tissue regeneration.This review covered the current research development in the strategy of controlled release of growth factors in urinary system tissue engineering.
Growth factors;Tissue engineering;Urinary system;Controlled release
Q813.1+2
B
1673-0364(2013)03-0173-04
2013年1月30日;
2013年3月16日)
200233上海市上海交通大學醫(yī)學院附屬第六人民醫(yī)院泌尿外科。
徐月敏(E-mail:xuyuemin@263.net)。
10.3969/j.issn.1673-0364.2013.03.016