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    槭樹(shù)葉片類黃酮糖基轉(zhuǎn)移酶基因RT—PCR擴(kuò)增體系優(yōu)化

    2013-01-01 00:00:00尹燕雷苑兆和招雪晴馮立娟楊尚尚李云
    山東農(nóng)業(yè)科學(xué) 2013年3期

    摘 要:以槭樹(shù)“秋天火焰”變色期秋季葉片為試材,采用改良CTAB法提取葉片總RNA,利用GenBank中相關(guān)物種的UFGT基因序列設(shè)計(jì)特異引物,進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增并對(duì)RT-PCR反應(yīng)體系中的引物、退火溫度和循環(huán)次數(shù)進(jìn)行優(yōu)化,建立了槭樹(shù)葉片UFGT基因的RT-PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系。

    關(guān)鍵詞:槭樹(shù);UFGT;RT-PCR

    中圖分類號(hào):Q781文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)號(hào):A文章編號(hào):1001-4942(2013)03-0001-04

    彩葉樹(shù)種的葉色表達(dá)是遺傳因素和外部環(huán)境(光照、溫度、水分和礦物質(zhì)營(yíng)養(yǎng))共同作用的結(jié)果,二者通過(guò)改變樹(shù)種葉片中各種色素的種類、含量以及分布形成了多彩的葉片。彩葉樹(shù)種葉片呈現(xiàn)彩色的直接原因就是葉片中的色素種類和比例發(fā)生了變化。類黃酮糖基轉(zhuǎn)移酶(UDP glucose-flavonoid-3-o-glycosyltranferase,UFGT) 是花青苷合成途徑的最后一個(gè)酶,它使不穩(wěn)定的花青素轉(zhuǎn)變成穩(wěn)定的花青苷[1],并且該酶催化多種花青苷,甚至可以催化黃酮醇的糖苷化。Boss等以黑色果皮的Shiraz葡萄品種的幾種不同組織為試材,檢測(cè)花青苷生物合成的幾個(gè)相關(guān)基因的表達(dá)情況,發(fā)現(xiàn)只有UFGT基因在果皮上特異表達(dá),而其它的基因在各組織中均有表達(dá);UFGT基因在有色葡萄中表達(dá),而在白葡萄皮中不表達(dá),說(shuō)明UFGT基因是葡萄皮著色的關(guān)鍵基因[2,3]。

    槭樹(shù)是重要的秋季色葉樹(shù)種,在世界各地園林景觀中廣泛應(yīng)用。目前對(duì)其研究主要集中在栽培[4]、酶活性[5]、光合日變化[6,7]等方面,關(guān)于槭樹(shù)葉色表達(dá)相關(guān)基因克隆方面的研究則較少。本研究以槭樹(shù)秋季葉片為試材,對(duì)擴(kuò)增UFGT基因的RT-PCR反應(yīng)體系進(jìn)行優(yōu)化,從而建立起高效特異的槭樹(shù)葉片UFGT基因擴(kuò)增PCR體系。

    1 材料與方法1.1 材料

    試驗(yàn)于2011年11月在山東省果樹(shù)研究所進(jìn)行,以槭樹(shù)品種“秋天火焰”(Acer×freemanii‘Autumn Blaze’)的秋季變色葉片為試材,采自山東省果樹(shù)研究所彩葉樹(shù)種種質(zhì)資源圃。于11月份采集葉片,迅速放入液氮中冷凍,帶回實(shí)驗(yàn)室放入-80℃冰箱中備用。1.2 試劑

    CTAB、SDS、EDTA、NaCl、PVP、LiCl、DEPC、Tris堿、巰基乙醇、蛋白胨、酵母提取物、氨芐青霉素、瓊脂糖、瓊脂粉等為進(jìn)口分析純?cè)噭?;異戊醇、氯仿、無(wú)水乙醇等為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?;PCR kit、cDNA kit;PCR引物合成由上海生工生物技術(shù)公司進(jìn)行。玻璃器皿于180℃烘烤8 h,塑料制品等用0.1% DEPC水浸泡過(guò)夜后高壓滅菌。

    由于RNA在RNA酶的作用下非常容易降解,RNA 提取中所用的溶液除Tris外,均用0.1% DEPC水處理并高壓滅菌,含Tris的溶液用經(jīng)高壓滅菌的DEPC水直接配制。1.3 RT-PCR體系的建立

    1.3.1 RNA提取及反轉(zhuǎn)錄 總RNA提取參考招雪晴等[8]的方法,采用改良CTAB法提取,將提取到的總RNA用cDNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)RNA的完整性,采用Nanodrop紫外分光光度計(jì)測(cè)量OD值。

    1.3.2 UFGT基因的引物設(shè)計(jì) 根據(jù)GenBank中(www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank)登錄的相關(guān)物種的UFGT基因的保守序列設(shè)計(jì)6對(duì)簡(jiǎn)并引物。

    1.3.3 PCR 反應(yīng)體系優(yōu)化 (1)引物篩選:以反轉(zhuǎn)錄后的cDNA為模板,采用不同的引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,以篩選最佳引物。采用25 μl的反應(yīng)體系:10×PCR buffer 2.5 μl,dNTP 2 μl,上下游引物各2 μl,cDNA 2 μl,Taq酶 0.2 μl,滅菌蒸餾水 14.3 μl。反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性40 s,56℃退火20 s, 72℃延伸20 s,35個(gè)循環(huán);72℃保溫10 min。

    (2)最佳退火溫度的確定:反應(yīng)體系不變,采用篩選出的引物,設(shè)置不同的退火溫度(50、51、56、58、60、63、65℃)進(jìn)行梯度PCR,以確定最佳的退火溫度。

    (3)PCR反應(yīng)體系的進(jìn)一步優(yōu)化:確定了最佳引物和最佳退火溫度后,通過(guò)縮短變性時(shí)間、減少循環(huán)次數(shù)等措施進(jìn)一步對(duì)得到的PCR反應(yīng)體系進(jìn)行優(yōu)化。

    2 結(jié)果與分析2.1 總RNA的制備

    利用改良的CTAB法提取槭樹(shù)葉片的RNA,如圖1所示,測(cè)量其OD值,結(jié)果為2.01,表明蛋白污染少;用1%的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳檢測(cè),28S、18S、5S條帶較清晰,沒(méi)有降解現(xiàn)象。說(shuō)明所提取的RNA純度和完整性較好,無(wú)DNA污染,符合cDNA合成的要求。

    2.3 PCR 反應(yīng)體系優(yōu)化

    2.3.1 最佳篩選引物 對(duì)設(shè)計(jì)的6對(duì)引物進(jìn)行常規(guī)PCR擴(kuò)增,篩選最佳的引物序列。由圖2看出,引物1的條帶明顯,適宜進(jìn)一步做體系優(yōu)化。

    1~6:引物1~6擴(kuò)增條帶;7:內(nèi)參基因Actin

    圖2 “秋天火焰”6對(duì)引物電泳圖

    2.3.2 確定退火溫度 分別設(shè)50、51、56、58、60、63、65℃ 7個(gè)退火溫度,將不同退火溫度的PCR 產(chǎn)物于1.0%瓊脂糖凝膠中進(jìn)行電泳檢測(cè)后發(fā)現(xiàn): 當(dāng)退火溫度為50℃和51℃時(shí)出現(xiàn)特異性條帶 (見(jiàn)圖3)。表明50℃和51℃均適合‘秋天火焰’槭樹(shù)UFGT基因PCR擴(kuò)增。

    圖3 “秋天火焰”槭樹(shù)葉片不同退火溫度的PCR電泳圖

    2.3.3 PCR體系優(yōu)化 將PCR反應(yīng)循環(huán)中的變性時(shí)間縮短為30 s,循環(huán)次數(shù)改為30次,PCR檢測(cè)結(jié)果顯示,可得到UFGT基因片段的特異擴(kuò)增條帶。此改進(jìn)措施可使PCR反應(yīng)時(shí)間節(jié)省30 min左右,反應(yīng)效率提高。

    3 結(jié)論與討論

    PCR技術(shù)靈敏度高、特異性強(qiáng)、操作簡(jiǎn)便,是現(xiàn)代分子生物學(xué)家必不可少的研究工具。PCR擴(kuò)增引物的合理設(shè)計(jì)與PCR反應(yīng)體系的建立是克隆基因片段或全長(zhǎng)序列成功的關(guān)鍵。其中,PCR反應(yīng)體系的組分以及Taq聚合酶、模板cDNA濃度、Mg2+濃度、變性劑等都是重要的影響因素[9]。3.1 反應(yīng)模板

    成功的cDNA合成來(lái)自高質(zhì)量的RNA,因而,提取的總RNA質(zhì)量對(duì)整個(gè)PCR反應(yīng)有重要影響[10]。本試驗(yàn)中,采用改良CTAB法提取的葉片總RNA質(zhì)量較好,可作為槭樹(shù)葉片總RNA提取的常規(guī)方法。3.2 引物

    PCR引物設(shè)計(jì)的好壞,是能否獲得高質(zhì)量PCR產(chǎn)物的關(guān)鍵。設(shè)計(jì)的上游引物和下游引物必須與目的基因片段3′末端高度同源互補(bǔ)[11]。由于在GenBank中無(wú)法獲得槭樹(shù)UFGT基因的特異性引物,故以GenBank中登錄的梨[12]等UFGT基因?yàn)閰⒖?,依?jù)保守區(qū)堿基序列設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物,然后進(jìn)行PCR擴(kuò)增。由于設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物堿基序列的不確定性,引物特異性會(huì)有所降低,使PCR擴(kuò)增的難度加大,反應(yīng)底物濃度以及其它條件都要摸索。最終篩選出引物1適合進(jìn)行下一步的體系優(yōu)化。

    3.3 退火溫度

    退火溫度是影響RT-PCR特異性的較重要因素,與引物的長(zhǎng)度和G+C 的含量密切相關(guān)[13]。若溫度過(guò)高,設(shè)計(jì)引物與模板DNA 親和力較小,得不到擴(kuò)增產(chǎn)物;溫度過(guò)低會(huì)引起非特異性擴(kuò)增,因此,一般是在引物Tm值允許范圍內(nèi),選擇較高的退火溫度,這樣可提高RT-PCR反應(yīng)的特異性。本研究結(jié)果表明,“秋天火焰”槭樹(shù)適宜的退火溫度是50℃和51℃。

    3.4 循環(huán)次數(shù)

    PCR循環(huán)次數(shù)決定PCR擴(kuò)增程度,主要取決于模板DNA的濃度。一般選在30~40次之間,PCR循環(huán)次數(shù)越多,非特異性產(chǎn)物隨之增多。在試驗(yàn)中,為提高PCR反應(yīng)效率,30個(gè)循環(huán)便可達(dá)到較理想的擴(kuò)增效果。

    綜上所述,槭樹(shù)葉片UFGT基因的最佳PCR體系為:10×PCR buffer 2.5 μl,dNTP 2 μl,上下游引物各2 μl,Taq酶 0.2 μl,cDNA 2 μl,滅菌蒸餾水 14.3 μl。反應(yīng)條件為:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性30 s,51℃退火20 s,72℃延伸20 s,30個(gè)循環(huán);72℃保溫10 min。

    參 考 文 獻(xiàn):

    [1] Lister C E, Lancaster J E.Phenylalanine ammonialyase (PAL) activity and its relationship to anthocyanin and flavoniod levels in New Zealand-grown apple cultivars[J].Journal of the American Society for Horticulture Science, 1996,12(2): 281-285.

    [2] Boss P K,Davies C,Robinson S P.Analysis of the expression anthocyanin pathway genes in developing Vitis vinifera L.cv.Shiraz grape berries and the implications for pathway regulation[J].Plant Physiol., 1996, 111: 1059-1066.

    [3] Boss P K, Davies C, Robinson S P.(下轉(zhuǎn)第6頁(yè))

    山 東 農(nóng) 業(yè) 科 學(xué) 2013,45(3):4~6Shandong Agricultural Sciences

    山 東 農(nóng) 業(yè) 科 學(xué)第45卷第3期方志軍等:玉米器官大小相關(guān)基因SMO2的鑒定和特征分析

    收稿日期:2012-09-21

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